9 kwietnia 2020
Tutaj opisujemy łatwy w użyciu test na inwazję glejaka. Ten test jest odpowiedni dla komórek macierzystych podobnych do glejaka. Opisano również makro Fidżi do łatwego ilościowego określania inwazji, migracji i proliferacji.
Dwuwymiarowe hodowle komórkowe nie naśladują odpowiednio wzrostu guza in vivo. Aby ulepszyć, opracowano procedury 3D wykorzystujące sferoidy. Nasz test sferoidy glejaka 3D jest szczególnie dobrze przystosowany do badania inwazji guza mózgu do zdrowego środowiska guza mózgu.
Trójwymiarowe modele hodowli mogą być wykorzystane do podsumowania wielokomórkowej architektury, heterogeniczności i stanu metabolicznego nowotworów, co pozwala na bardziej rygorystyczną ocenę działania leków. Należy pamiętać, aby nie dotykać dna studzienki ani całkowicie usunąć supernatant, utrzymywać żel na lodzie i szybko dodać komórki do żelu. Aby wygenerować sferoidy guza o jednolitej wielkości, najpierw umyj interesującą nas hodowlę komórek nowotworowych pięcioma mililitrami PBS i potraktuj komórki 0,5 do jednego mililitra enzymu dysocjacyjnego.
Po pięciu minutach w temperaturze 37 stopni Celsjusza zatrzymaj reakcję za pomocą czterech do 4,5 mililitra PBS i przenieś oderwane komórki do 15-mililitrowej stożkowej probówki zawierającej 10 mililitrów kompletnej pożywki wzrostowej. Po zliczeniu ponownie zawiesić komórki w ilości od 10 do 6 komórek na osiem mililitrów kompletnej pożywki wzrostowej uzupełnionej dwoma mililitrami o stężeniu 2% metylocelulozy i przenieść zawiesinę do sterylnego pojemnika systemowego. Następnie dodaj 100 mikrolitrów komórek do każdej studzienki 96-dołkowej okrągłej płytki dolnej i umieść płytkę w inkubatorze z 5% dwutlenkiem węgla o temperaturze 37 stopni Celsjusza na trzy do czterech dni.
Aby przeprowadzić test inwazji, gdy komórki nowotworowe utworzą sferoidy o jednolitej wielkości, przenieś każdą strukturę komórkową do probówki o pojemności 500 mikrolitrów i przemyj sferoidy raz 200 mikrolitrami PBS. Po drugim płukaniu ostrożnie przenieś sferoidy do 100 mikrolitrów świeżo przygotowanej matrycy kolagenowej i dodaj każdą zawiesinę sferoidalną do środka każdej studzienki 96-dołkowej płytki o płaskim dnie. Po 30-minutowej inkubacji w temperaturze 37 stopni Celsjusza dodaj 100 mikrolitrów kompletnej pożywki wzrostowej na wierzch żelu w każdym dołku.
Pamiętaj, aby umieścić wszystkie sferoidy w środku każdej studzienki, aby uzyskać najlepsze obrazowanie inwazji komórek nowotworowych. Aby przeprowadzić test migracji, gdy komórki nowotworowe utworzą sferoidy o jednolitej wielkości, pokryj sześciodołkową płytkę 0,2 miligrama na mililitr Matrigelu w pożywce wzrostowej przez 30 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Pod koniec inkubacji usunąć Matrigel i dodać dwa mililitry kompletnej pożywki wzrostowej do każdej studzienki.
Przenieść sferoidy z okrągłej płytki dolnej w objętości 50 mikrolitrów do indywidualnych dołków sześciodołkowej płytki i umieścić płytkę w inkubatorze do hodowli komórkowych na 24 godziny. Następnego dnia zabarwić sferoidy 10 nanogramami na mililitr Hoechst przez 30 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. W celu uzyskania obrazu po teście inwazji lub migracji, umieść płytkę na stoliku mikroskopu konfokalnego Brightfield wyposażonego w kamerę wideo i uzyskaj obrazy w odpowiednim okresie eksperymentalnym.
Aby przeanalizować obrazy w sposób półautomatyczny, zaimportuj obrazy do Fidżi i kliknij Wtyczki, Makra, Interaktywny interpreter. Skopiuj i wklej dostosowaną fioletową pętlę. Zachowaj fioletowe zdania i w razie potrzeby dodaj interesujące Cię zielone zdania.
Następnie, aby zmierzyć powierzchnię każdej sferoidy, kliknij przycisk Analizuj i mierz. Aby zmierzyć niedotlenienie w różnych obszarach struktury sferycznej, można zastosować barwienie anhydrazą węglanową IX w celu określenia aktywności hipoksji. W tej reprezentatywnej analizie zaobserwowano więcej komórek dodatnich anhydrazy węglanowej IX w centrum sferoidalnym.
Niedotlenione komórki znajdujące się w rdzeniu sferoidalnym są zwykle bardziej glikolityczne niż komórki otaczające rdzeń. Mitochondria można obrazować za pomocą mikroskopii elektronowej w celu dalszej analizy. Średnica sferoidy jest bezpośrednio skorelowana z gęstością komórek, które tworzą strukturę komórkową 3D, a makra Fidżi mogą być używane do ilościowego określania proliferacji, inwazji lub migracji komórek w obrębie każdej sferoidy lub migracji komórek w obrębie każdej sferoidy.
Wzrost rdzenia sferoidalnego odzwierciedla stymulację proliferacji komórek. Po zahamowaniu kompleksu I mitochondrialnego łańcucha oddechowego, zdecydowana większość produkcji ATP w mitochondriach jest zagrożona, zmniejszając proliferację o 20% po 72 godzinach. Leczenie chlorowodorem zwiększa inwazję kolagenu typu I w ciągu 24 godzin, ale zmniejsza obszar migracji sferoidów 1,5-krotnie w porównaniu z kontrolnymi sferoidami nieleczonymi.
Jak oceniono za pomocą obrazowania na żywo, sferoidy wykazują wysoką dynamikę wewnętrzną i poruszają się szybko. Rozmiar sferoid powinien być względnie jednolity i należy zachować ostrożność, aby manipulować sferoidami do środka studzienek w celu uzyskania najlepszych wyników obrazowania. Metoda ta może być również stosowana do badania proliferacji, migracji i śmierci komórek nowotworowych, a także ekspresji macierzy zewnątrzkomórkowej, receptorów komórkowych lub białek wewnątrzkomórkowych będących przedmiotem zainteresowania.
Sferoidy mogą być również zamknięte w kapsułkach, a wpływ zwiększonego napięcia powierzchniowego komórek można badać po wyjęciu kapsułek.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia test inwazji oparty na trójwymiarowych sferoidach glejaka opracowany dla komórek macierzystych glejaka. Test ten umożliwia badanie inwazji guza do zdrowej tkanki mózgowej, zapewniając dokładniejszy model warunków in vivo.
Ten trójwymiarowy (3D) model sferoidów glejaka wielopostaciowego wypełnia krytyczną lukę w onkologii przedklinicznej, zapewniając fizjologicznie istotny system do badania inwazji nowotworu i odpowiedzi na leki. Umożliwia on bardziej predykcyjną ocenę kandydatów terapeutycznych w porównaniu z tradycyjnymi kulturami 2D, wspierając wczesną walidację celów oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesach rozwoju leków w neuroonkologii. Test ten zwiększa ciągłość translacyjną, łącząc wyniki in vitro z interakcjami w mikrośrodowisku nowotworu przypominającym warunki in vivo.
Analiza ta integruje się z procesem badawczym – od walidacji celu po optymalizację związku wiodącego, zapewniając system istotny z punktu widzenia choroby do badań mechanistycznych i oceny fenotypowej przed badaniami in vivo.