June 15th, 2020
Prezentowany tutaj jest protokół oceny dwukomorowej funkcji serca u myszy poprzez generowanie pętli ciśnienie-objętość (PV) z prawej i lewej komory u tego samego zwierzęcia za pomocą zamkniętego cewnikowania klatki piersiowej. Nacisk kładziony jest na techniczny aspekt chirurgii i pozyskiwania danych.
Protokół ten pozwala na kompleksową i solidną charakterystykę funkcji serca, a także ilościowe określenie funkcji skurczowej i rozkurczowej w lewej i prawej komorze myszy. Technika ta proponuje globalną charakterystykę funkcji serca u myszy, ponieważ proponuje kategoryzację lewą i prawą u tego samego zwierzęcia. Na początek odizoluj prawą tętnicę szyjną przez rozwarstwienie, aby przemieścić bocznie mięsień gnykowy mostka, aby odsłonić i wyizolować prawą tętnicę szyjną.
Następnie użyj kleszczy, piasku, rozwarstwienia, aby odizolować tętnicę szyjną od nerwu błędnego i wprowadzić trzy chirurgiczne szwy 4-0 pod tętnicą, ale nie nerwem. W celu izolacji prawej żyły szyjnej należy przemieścić bocznie gruczoły podżuchwowe i ślinianki przyuszne. Aby uwidocznić prawą żyłę szyjną i użyj kleszczy, aby tępo wypreparować i odsłonić prawą żyłę szyjną.
Ostrożnie wypreparuj żyłę, aby usunąć otaczającą powięź i przełóż kleszcze pod żyłą szyjną. Przełóż szew chirurgiczny pod żyłą i przywiąż szew do czaszkowej strony żyły. Użyj zacisku hemostatycznego, aby delikatnie naciągnąć szew w kierunku głowy i przełóż dwa dodatkowe szwy pod żyłą szyjną.
Użyj drugiego zacisku, aby delikatnie pociągnąć najbardziej dystalny szew w kierunku ogonowym i zrobić luźny węzeł w środkowym szwie. Następnie umieść kilka kropli podgrzanej soli fizjologicznej na naczyniu w miejscu przewidywanej wenotomii. W celu cewnikowania prawej komory umieść mysz pod mikroskopem stereoskopowym i zidentyfikuj żyłę szyjną.
Delikatnie zastosuj doskonałą trakcję do żyły i włóż zakrzywioną igłę o rozmiarze 30 między czaszkę a szwy pod kątem 140 stopni. Aby upewnić się, że igła wchodzi w sposób koncentryczny. Po wprowadzeniu należy przesunąć igłę, aby rozszerzyć wenotomię i wprowadzić sześciomilimetrową końcówkę cewnika pod igłę do wenotomii.
Po wprowadzeniu cewnika do prawej komory należy monitorować klasyczny przebieg ciśnienia w prawej komorze na monitorze ciągłym, aby potwierdzić prawidłowe ustawienie cewnika. W razie potrzeby delikatnie obracaj trzon cewnika, aż do uzyskania optymalnego umieszczenia cewnika wzdłuż osi prawej komory. Aby zapewnić prawidłowe ułożenie cewnika w prawej i lewej komorze serca, należy uważnie przeczytać i zinterpretować ciśnienie, objętość, wielkość, fazy, ślady, w tym samym czasie, gdy przesuwasz cewnik.
Po uzyskaniu sygnału pętli optymalnej wielkości ciśnienia naciśnij Enter na konsoli, aby wykonać skanowanie linii bazowej i monitorować tętno. Aby wygenerować pętle objętości ciśnienia, zmień parametr osi X z wielkości na objętość, pozostawiając ciśnienie jako oś Y. Gdy sygnał pętli objętości ciśnienia jest optymalny.
Nagrywaj przez 30 sekund. Po zakończeniu analizy zatrzymaj nagrywanie. Następnie umieść usunięty cewnik w roztworze chlorku sodu heparyny.
W celu cewnikowania lewej komory delikatnie podnieś prawą tętnicę szyjną kleszczami i zawiąż szew czaszkowy, zamykając w ten sposób tętnicę. Użyj zacisku hemostatycznego, aby delikatnie nałożyć przyczepność czaszkową na naczynie i użyj zacisku, aby pociągnąć najbardziej dystalny szew w kierunku ogonowym. Wykonaj luźny węzeł na środkowym szwie i dodaj kilka kropli podgrzanej soli fizjologicznej na naczynie w miejscu przewidywanej arteriotomii.
Użyj mikroskopu, aby ustawić ostrość na odcinku czaszki między szwem ogonowym a środkowym i delikatnie nałóż lepszą trakcję na tętnicę. Po wprowadzeniu cewnika, jak pokazano dla prawej komory, potwierdzono, że zapis kanału ciśnieniowego pokazuje typowy ślad aorty, wprowadzenie cewnika do lewej komory będzie widoczne po nagłym spadku na rynku ciśnienia rozkurczowego z aorty. Aby ustabilizować ciśnienie w lewej komorze, użyj pętli objętości ciśnienia, aby potwierdzić prawidłowe ułożenie cewnika w lewej komorze.
Zatrzymaj nagrywanie i wyjmij cewnik. Umieścić cewnik w roztworze heparyny chlorku sodu i zawiązać szew ogonowy. Następnie wyczyść cewnik detergentem enzymatycznym.
Na tym rysunku można zaobserwować reprezentatywne optymalne pętle ciśnienia generowane przez cewnik prawidłowo wprowadzony przez żyłę szyjną i wysunięty do prawej komory. Niewłaściwe ułożenie w prawej komorze objawia się pojawieniem się wadliwych pętli objętości ciśnienia. Optymalne wsteczne umieszczenie cewnika w poprzek zastawki aortalnej do lewej komory również skutkuje specyficznym wzorcem pętli ciśnienia.
Objawia się to wadliwymi pętlami w przypadku nieprawidłowo umieszczonego cewnika. Technika ta pozwala na uzyskanie kompleksowych wartości ciśnienia skurczowego lewej i prawej komory. Dostarcza również parametrów rozkurczowych i dostarcza informacji o wielu zaawansowanych pomiarach kurczliwości i lusitropii.
Technika ta ułatwia również ocenę sprawności lewej i prawej komory oraz obciążenia następczego fazy komory. Technika ta może być stosowana do oceny funkcji prawej i lewej komory w chorobach sercowo-naczyniowych. Na przykład można go wykorzystać do oceny funkcji prawej komory w odpowiedzi na zwiększone obciążenie następcze w nadciśnieniu płucnym.
Ogólna praktyka, dobre pole eliminacji, dobre narzędzie chirurgiczne, utrzymanie nawilżenia żyły kątowej tętnicy szyjnej jest kluczem do sukcesu tej procedury.
Ten protokół szczegółowo opisuje metodę oceny dwukomorowej czynności serca u myszy poprzez generowanie pętli ciśnienie-objętość (PV) za pomocą kateteryzacji z zamkniętą klatką piersiową. Nacisk kładzie na technikach chirurgicznych i pozyskiwaniu danych niezbędnych do dokładnych pomiarów.
Assessing biventricular cardiac function in preclinical models is critical for de-risking cardiovascular drug candidates by providing mechanistic insights into systolic and diastolic performance. Closed-chest pressure-volume loop acquisition in mice enables physiologically relevant hemodynamic profiling that mirrors clinical catheterization, supporting translational confidence in target validation and lead optimization. This approach reduces biological ambiguity in early discovery by delivering quantitative, replicable data on ventricular interdependence and contractility.
The method integrates into the discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical efficacy testing, providing functional cardiac phenotyping at each stage.