5 maja 2020
Prezentujemy model choroby niedokrwiennej serca za pomocą kardiomiocytów pochodzących z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych, wraz z metodą ilościowej oceny uszkodzeń tkanek spowodowanych niedokrwieniem. Model ten może stanowić użyteczną platformę do badań przesiewowych leków i dalszych badań nad chorobą niedokrwienną serca.
Badania nad chorobami serca są często przeprowadzane u małych i ssaków, takich jak gryzonie. Jednak fizjologia ludzkiego serca znacznie różni się od fizjologii serca gryzonia. Nasz protokół wykorzystuje kardiomiocyty zróżnicowane z ludzkich komórek iPS do modelowania choroby niedokrwiennej serca oraz do ilościowego określenia uszkodzeń i upośledzenia funkcjonalnego kardiomiocytów niedokrwiennych.
Protokół ten może stanowić wygodną metodę spersonalizowanych badań przesiewowych leków przy użyciu komórek iPS pochodzących od indywidualnych pacjentów, odpowiednie obchodzenie się z komórkami iPS, takie jak stosowanie świeżej pożywki, oraz powolna i punktowa zmiana pożywki ma kluczowe znaczenie dla zapewnienia pomyślnego różnicowania w funkcjonalne kardiomiocyty. Procedurę zademonstruje wraz z Yun Liu, Yin Liang i Mengxue Wang Chen Wang, doktorant z laboratorium. Aby indukować indukowane przez człowieka różnicowanie pluripotencjalnych komórek macierzystych w komórkach serca, najpierw pokryj studzienki 96-dołkowej płytki hodowlanej 100 mikrolitrami 1,675 mikrograma na mililitr lamininy w PBS.
Po 30-minutowej inkubacji w temperaturze 37 stopni Celsjusza, zobacz trzy razy od 10 do czwartego komórek macierzystych w 200 mikrolitrach pożywki podtrzymującej IPS uzupełnionej 10 mikromolowym Y27632 do każdej studzienki i włóż płytkę do inkubatora kultur komórkowych. Po 24 godzinach zastąp super środki 200 mikrolitrami pożywki wzrostowej IPS na dołek i włóż płytkę do inkubatora kultur komórkowych na dodatkowe dwa do trzech dni. Gdy komórki osiągną 70 do 80% zbiegalności.
Zastąp pożywkę w każdym dołku 200 mikrolitrami wstępnie podgrzanej pożywki różnicującej A i umieść płytkę z powrotem w inkubatorze do hodowli komórkowych na kolejne 48 godzin. Pod koniec inkubacji powoli zastępuj supernatant w każdym dołku 200 mikrolitrami wstępnie podgrzanego podłoża różnicującego B i włóż płytkę z powrotem do inkubatora kultur komórkowych. Po dwóch dniach zastąp supernatanty 200 mikrolitrami wstępnie podgrzanej pożywki podtrzymującej kardiomiocyty na dołek i zwróć płytkę do inkubatora kultur komórkowych na okres do 30 dni.
Aby ocenić kurczliwość kardiomiocytów, zainstaluj wtyczkę do pomiaru prędkości obrazu cząstek i użyj mikroskopu z kontrastem fazowym oraz obiektywu wideł, aby rejestrować obrazy wideo komórek z prędkością około 20 klatek na sekundę przez około 10 sekund. Następnie zapisz plik wideo zgodnie z analizą naszego API i utwórz strukturę folderów zgodnie ze wskazaniami. Aby przeanalizować dyskretne dwuwymiarowe pola wektorowe przemieszczenia komórkowego, uruchom VG i wybierz wtyczki, makra i edytuj, aby otworzyć analizę wektorową.
ijm, a następnie kliknij przycisk Uruchom Analiza zostanie wykonana automatycznie. W przypadku leczenia niedokrwiennego zastąp supernatant w każdej studzience 200 mikrolitrami dmem bez glukozy i surowicy, a następnie umieść płytkę w komorze hipoksyjnej, a następnie wlej gazowy azot do komory, utrzymując wewnętrzne stężenie tlenu na poziomie 2% i stężenie dwutlenku węgla na poziomie 5% przez 24 godziny. Pomyślnie różnicujące się komórki, wykazują spontaniczny skurcz, jak zaobserwowano pod mikroskopem, przy czym 50% dołków hodowlanych zwykle wykazuje spontaniczny skurcz w czasie krótszym niż 20 dni.
Białko markera sercowego może być również wykorzystane do potwierdzenia pomyślnego różnicowania Komórki z grupy niedokrwiennej zazwyczaj wykazują niższą żywotność w testach MTT i niższą kurczliwość niż te z normoksyjnej grupy kontrolnej. Stosunek komórek dodatnich w jodku propidyny jest również wyższy w grupie niedokrwiennej niż w grupie kontrolnej, co wskazuje na większą częstość występowania uszkodzeń komórek. Ważne jest, aby dokładnie zlokalizować obszary zainteresowania na płytce wychwytującej, aby umożliwić porównanie kurczliwości kardiomiocytów.
Technika ta może być stosowana do badań przesiewowych leków przy użyciu komórek iPS pochodzących od pacjenta. Stanowi również unikalną platformę do dalszego wyjaśniania mechanizmów leżących u podstaw chorób niedokrwiennych serca
Niniejszy artykuł przedstawia protokół modelowania niedokrwiennej choroby serca z wykorzystaniem kardiomiocytów zróżnicowanych z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych (hiPS-CMs). Metoda ta umożliwia ilościowe określenie uszkodzeń komórkowych oraz upośledzenia funkcji w warunkach niedokrwienia, stanowiąc klinicznie istotną platformę do badań nad chorobami serca i spersonalizowanego przesiewu leków.
Modele kardiomiocytów pochodzących z ludzkich iPSC niwelują lukę translacyjną między badaniami na gryzoniach a ludzkimi chorobami serca, umożliwiając bardziej predykcyjne odkrycia we wczesnych etapach badań nad niedokrwienną chorobą serca. Ilościowa analiza kurczliwości oparta na analizie wideo oraz testy żywotności dostarczają istotnych danych do walidacji celów i ograniczania ryzyka mechanistycznego. Platforma ta wspiera decyzje dotyczące portfela projektów z uwzględnieniem ryzyka oraz spersonalizowane strategie przesiewowe leków w badaniach i rozwoju w obszarze sercowo-naczyniowym.
Ten model niedokrwienia kardiomiocytów pochodnych hiPSC łączy wczesną fazę odkryć, identyfikację związków wiodących oraz badania translacyjne, dostarczając swoistych dla ludzi punktów końcowych dotyczących funkcjonalności i żywotności.