15 kwietnia 2020
Przedstawiamy protokół izolacji komórek śródbłonka wsierdzia i naczyń wieńcowych z serc szczurów poprzez sekwencyjne trawienie tkanek w buforze trawiennym, pobieranie komórek z powtarzających się cykli wirowania i oczyszczanie komórek za pomocą mikrogranulek anty-szczurzych CD31.
W tym miejscu przedstawiamy szczegółowy protokół izolowania komórek wsierdzia i komórek śródbłonka naczyń wieńcowych oddzielnie od serca, aby pomóc ludziom zrozumieć ekspresję i funkcję genów specyficznych dla typu komórki. Głównymi zaletami tej metody są wysoka czystość i żywotność wyizolowanych EWG i CEC oraz to, że komórki zachowują swoje właściwości fizjologiczne po izolacji. CEC i EEC różnią się pod wieloma względami, więc możliwość niezależnego badania tych populacji komórek umożliwia badanie mechanizmów specyficznych dla typu komórek w różnych chorobach serca.
Metoda ta może ułatwić badanie czynników transkryptomicznych i epigenetycznych odpowiedzialnych za liczne choroby serca w sposób specyficzny dla typu komórki. Najtrudniejszymi częściami tej metody jest określenie różnych porcji serca i prawidłowe wyczucie czasu trawienia, aby uniknąć zanieczyszczenia typu komórki. Procedurę zademonstruje Yifei Miao, naukowiec z mojego laboratorium.
Po zebraniu serc od sześciu 50 do 100 gramowych szczurów Sprague Dawley, umyj narządy 50 mililitrami zimnego HBSS trzy razy, aby usunąć nadmiar krwi i umieść jedno serce pod mikroskopem preparacyjnym. Umieść serce na jego bardziej płaskiej tylnej powierzchni, aby zidentyfikować lewą i prawą stronę tkanki oraz zlokalizować tętnicę płucną. Za pomocą nożyczek przeciąć tętnicę płucną do prawej komory i przeciąć wzdłuż przegrody, aż do osiągnięcia wierzchołka.
Kontynuuj cięcie od wierzchołka w górę tylnej strony serca wzdłuż przegrody, aż do połączenia tętnicy płucnej i prawej komory komory. Zaczynając od tego punktu, odetnij zarówno przednią, jak i tylną stronę serca prostopadle do poprzedniego punktu rozwarstwienia i z dala od przegrody, aż wolna ściana prawej komory zostanie uwolniona od reszty serca. Następnie umieść prawą wolną ścianę komory w pięciomililitrowej probówce DMEM i ponownie zlokalizuj aortę, aby ułatwić zebranie wolnej ściany lewej komory w taki sam sposób, jak pokazano.
Po zebraniu wszystkich wolnych ścianek komór przenieś próbki tkanek do 60-centymetrowego naczynia hodowlanego, tak aby ich wewnętrzne powierzchnie leżały w naczyniu stroną do dołu. Używając jednomililitrowej końcówki pipety, dodaj 0,5 do jednego mililitra buforu wytrawiającego do naczynia bezpośrednio pod kawałkami tkanki, aż zanurzą się tylko wewnętrzne powierzchnie tkanek. Aby uniknąć niepożądanego zanieczyszczenia komórek, ważne jest, aby tylko wewnętrzna powierzchnia komory była zanurzona w buforze trawiennym i była trawiona dokładnie przez pięć minut.
Po pięciu minutach w inkubatorze do hodowli komórkowych przerwij trawienie pięciokrotnie większą objętością pożywki dla komórek śródbłonka. Następnie za pomocą pipety o pojemności jednego mililitra przepłukać wewnętrzną powierzchnię każdej komory świeżym podłożem, przenosząc spływ przez sitko o średnicy 40 mikrometrów do 50-mililitrowej probówki zbiorczej na lodzie. W celu trawienia komórek śródbłonka wieńcowego przeciąć wzdłuż zewnętrznej powierzchni lewej komory bez zanieczyszczenia warstwą wewnętrzną i umieścić każdy fragment rurki w oddzielnej pięciomililitrowej probówce zawierającej jeden mililitr buforu do wytrawiania.
Aby uniknąć zanieczyszczenia przez EWG, ważne jest, aby ciąć tylko z zewnętrznej powierzchni komory. Za pomocą nożyczek preparacyjnych zmiel ścianę komory na małe milimetrowe kawałki i umieść probówki w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza na 15 do 20 minut z wirowaniem co dwie do trzech minut. Gdy zmielone kawałki są małe, ale widoczne, dodaj cztery mililitry pożywki z komórek śródbłonka do probówki i użyj pięciomililitrowej pipety serologicznej, aby przenieść całą objętość roztworu przez sitko o średnicy 40 mikrometrów do 50-mililitrowej probówki zbiorczej na lodzie.
Aby wyizolować populacje komórek CD31 dodatnich po ich strawieniu, należy osadzać komórki przez odwirowanie i aspirować supernatanty. Jeśli jakiekolwiek granulki są czerwone, ponownie zawieś komórki w jednym do dwóch mililitrów buforu do lizy czerwonych krwinek na probówkę na pięciominutową inkubację w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Pod koniec inkubacji przerwij lizę za pomocą 10 mililitrów PBS i zbierz komórki za pomocą drugiego odwirowania.
Następnie dodaj 90 mikrolitrów buforu sortującego i 10 mikrolitrów przeciwciała anty-CD31 PE do każdej probówki komórek. Po wirowaniu inkubuj komórki przez 10 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Pod koniec inkubacji dodać 10 mililitrów buforu sortującego do probówek po dokładnym wymieszaniu i zebrać komórki przez odwirowanie.
Ponownie zawiesić granulki w 80 mikrolitrach buforu sortującego na probówkę, a następnie dodać 20 mikrolitrów mikrogranulek anty-PE. Po wirowaniu umieść probówki w temperaturze czterech stopni Celsjusza na 15 minut, a następnie przemyj 10 mililitrów buforu sortującego przez odwirowanie, jak pokazano. Zawiesić granulki w 500 mikrolitrach buforu sortującego na lodzie i umieścić kolumnę zawierającą super kulki paramagnetyczne w separatorze magnetycznym.
Przepłukać kolumnę trzema mililitrami buforu sortującego. Po opróżnieniu kolumny dodać do niej 500 mikrolitrów zawiesiny komórek śródbłonka wsierdzia, a następnie cztery przepłuczenia trzema mililitrami buforu sortującego na przemycie. Po ostatnim płukaniu przenieś kolumnę do nowej 15-mililitrowej probówki zbiorczej i użyj tłoka kolumny i pięciu mililitrów świeżej pożywki z komórek śródbłonka, aby wypłukać dodatnie komórki CD31 z kolumny do probówki zbiorczej.
Następnie zbierz izolowane komórki śródbłonka przez odwirowanie. Zgodnie z przewidywaniami, ilościowy PCR ujawnia, że w porównaniu z beta-aktyną, komórki śródbłonka wsierdzia wyrażały wyższe poziomy markerów wsierdzia Npr3, Hapln1 i Cdn11 w porównaniu z komórkami śródbłonka wieńcowego. Podobnie komórki śródbłonka wieńca wyrażały wyższe poziomy markerów wieńcowych Fabp4, Mgll i Cd36 w porównaniu z komórkami śródbłonka wsierdzia.
Ponadto oba typy komórek wykazywały ekspresję genu markera komórek śródbłonka Cdh5 z nieco wyższymi poziomami obserwowanymi w komórkach śródbłonka naczyń wieńcowych. Możemy dalej oczyszczać komórki za pomocą FACS i przeciwciał specyficznych dla populacji komórek. Na przykład możemy użyć anty-Npr3 do sortowania EEC i anty-Cd36 do sortowania CEC.
Technika ta utorowała naukowcom drogę do zbadania roli EEC i CEC w rozwoju i chorobach serca w sposób specyficzny dla typu komórki.
Niniejszy artykuł przedstawia szczegółowy protokół izolacji komórek śródbłonka wsierdziowego i wieńcowego z serc szczurzych. Metoda ta zapewnia wysoką czystość i żywotność izolowanych komórek, co umożliwia badanie mechanizmów specyficznych dla danego typu komórek w chorobach serca.
Izolacja komórek śródbłonka endokardialnego i wieńcowego umożliwia mechanistyczne ograniczanie ryzyka w procesie walidacji celów terapeutycznych w chorobach układu sercowo-naczyniowego poprzez wyjaśnienie wkładu poszczególnych typów komórek w fenotypy chorobowe. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną we wczesnej fazie odkryć, rozróżniając patogenne szlaki charakterystyczne dla każdej populacji komórek śródbłonka. Zachowanie właściwości fizjologicznych po izolacji zapewnia istotność translacyjną dla modelowania przedklinicznego oraz dopasowania biomarkerów.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków — od walidacji celu, przez identyfikację związku wiodącego, aż po ocenę przedkliniczną — dostarczając podtypów komórek śródbłonka służących do mechanistycznej redukcji ryzyka.