15 sierpnia 2020
Tutaj przedstawiamy i opisujemy szeroko dostępne metodologie wykorzystujące niektóre wszechstronne modele nicieni, w tym nekrozę wywołaną hiperaktywowanym kanałem jonowym i neurotoksyczność wywołaną agregatem białkowym, do monitorowania i analizowania komórkowych i molekularnych podstaw chorób neurodegeneracyjnych związanych z wiekiem.
W ciągu ostatnich dziesięcioleci długość życia człowieka uległa wydłużeniu dzięki poprawie standardu życia i postępowi w naukach medycznych. Wiek jest największym czynnikiem ryzyka wielu chorób zagrażających życiu, w tym zaburzeń neurodegeneracyjnych, takich jak choroba Alzheimera, Parkinsona i Huntingtona. W tym miejscu demonstrujemy metodologie wykorzystujące niektóre wszechstronne nowe modele metod, w tym nekrozę wywołaną hiperaktywnymi kanałami jonowymi i agregacje białkowe indukujące neurotoksyczność, w celu monitorowania i analizowania komórkowego mechanizmu molekularnego degeneracji neuronów.
Szczyt zdrowych larw składa się z czterech i trzech nicieni Newtona na pożywce wzrostu nicieni, przesiewając z E. Coli za pomocą mikroskopu stereoskopowego do preparacji. Umieść dziesięć i cztery nicienie, płytkę z enzymami pasożytniczymi i hoduj je w standardowej temperaturze 20 stopni Celsjusza. Pięć dni później umyj płytkę 1 ml i 9 buforem i zbierz zwierzęta do probówki o pojemności 1,5 ml.
Odwirować przy 30 000 g przez 30 sekund i usunąć supernatant. Dodać 0,5 ml roztworu galwanicznego. Roztwór galwaniczny jest przechowywany w temperaturze pokojowej.
Wiruj i monitoruj okresowo, aż wszystkie się rozpuszczą. Unikaj powlekania przez okres dłuższy niż pięć minut. Odwirować przy 10 000 g przez 30 sekund i usunąć supernatant.
Umyj dwukrotnie paletę 1 ml i dziewięcioma. Wirować przy 10000 g przez 30 sekund i usunąć supernatant. Po umyciu ponownie zawieś jaja w 200 mikrolitrach buforu M9 i inkubuj je przez 25 minut w temperaturze 34 stopni Celsjusza w łaźni wodnej.
Utrzymuj oddzielną grupę jaj w temperaturze 20 stopni Celsjusza. Odpipetować 100 mikrolitrów zawierających jaja kontrolne lub poddane szokowi cieplnemu i umieścić je na nieobsianej płytce 10 GN. Każdy talerz zawiera co najmniej 100 do 200 jaj.
Wysiaduj jaja w temperaturze 20 stopni Celsjusza aż do wyklucia. Użyj buforu M9 do mycia płytek i zbierania życia L1 i nicieni w probówce o pojemności 1,5 ml. Wirować przy 10 000 g przez 30 sekund.
Usuń supernatant i zachowaj paletę. Dodaj 100 mikrolitrów 20-milimolowego buforu lewangialnego M9, aby znieczulić nicienie. Odpipetuj 10 mikrolitrów buforu lewangialnego M9, zawierającego L1, obserwuj i zamontuj je w 2% miejscu agar-ls, delikatnie umieść szkiełko nakrywkowe na wierzchu próbki.
Obserwuj zegarek za pomocą mikroskopii DIC. Skanowanie degeneracji 630 neuronów receptorowych poprzez zliczanie komórek z charakterystycznym wirtualnym wspomaganym wyglądem tego nicienia. Zsynchronizuj nicienie, wybierając i przenosząc od 15 do 20 larw L4 każdego szczepu najpierw na płytki bakterii C, a następnie GMO.
Inkubuj i pozwól nicieniom rosnąć w standardowej temperaturze 20 stopni Celsjusza. Przeprowadzaj codzienne przygotowanie do przygotowania przez 30 minut, przenosząc płytki do inkubatora ustawionego na 34 stopnie Celsjusza. Następnie zwróć wstępnie przygotowane nicienie z powrotem do standardowej temperatury 20 stopni Celsjusza.
Dodaj 10 mikrolitrów 20-milimolowej kropli buforowej M9 levangial w środku plamki agar-ls. Wybierz odpowiednie nicienie transgeniczne i przenieś je w kropli levangial M9. Umieść od 20 do 30 nicieni na kroplę.
Delikatnie umieść szkiełko nakrywkowe na wierzchu próbki. Uszczelnij szkiełko nakrywkowe lakierem do paznokci, aby zachować wilgotność przez cały proces obrazowania. Korzystając z mikroskopu fluorescencyjnego połączonego z kamerą, wykryj i uchwyć badane obrazy obszaru głowy w 20-krotnym powiększeniu.
Monitoruj przez siedem dni transgeniczne nicienie pod kątem śmierci dopaminergicznych komórek neuronalnych. Zmierz neuronalne agregaty policulalne w okolicy głowy czterodniowych zwierząt transgenicznych wykazujących ekspresję fuzji 240 z żywymi ludźmi. Martwicza śmierć komórek wywołana nadpobudliwą substancją kanałów jonowych jest najczęstszą przyczyną u nicieni, które wcześniej warunkują jaja przed szokiem cieplnym.
Kondycjonowanie wstępne szoku cieplnego, promujące przewidywanie śmierci komórek wywołanej alfa-synukleiną u siedmiodniowego dorosłego hermafrodyty i zmniejsza agregaty białka Q40 w okolicy głowy czterodniowych dorosłych. Starzenie się jest konsekwencją uszkodzeń spowodowanych stopniową degeneracją homeostazy komórkowej i tkankowej. W związku z tym zrozumienie manipulacji związanym z wiekiem załamaniem neuronów jest priorytetem.
Zaprezentowane techniki w połączeniu z genetycznymi i farmakologicznymi badaniami przesiewowymi mogą doprowadzić do powiadomienia o prawidłowych modulatorach śmierci komórkowej o potencjalnym znaczeniu terapeutycznym.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia metodologie wykorzystujące wszechstronne modele nicieni do badania chorób neurodegeneracyjnych związanych z wiekiem. Koncentracja skupia się na nekrozie indukowanej hiperaktywacją kanałów jonowych oraz neurotoksyczności indukowanej agregatami białek.
Modelowanie mechanizmów neurodegeneracyjnych związanych z wiekiem u C. elegans zapewnia skalowalny, genetycznie podatny system do wczesnej walidacji celów terapeutycznych i ograniczania ryzyka mechanistycznego. Podejście to umożliwia ilościową ocenę integralności neuronalnej oraz agregacji białek, co zwiększa pewność prognostyczną w identyfikacji wiodących związków. Ta platforma oparta na nicieniach łączy biologię odkrywczą z relewancją translacyjną w przypadku proteinopatii związanych z wiekiem.
Metoda ta integruje się z wczesnymi etapami procesów badawczych, zapewniając system istotny w kontekście danej choroby do testowania hipotez i oceny związków wiodących przed walidacją na ssakach.