16 lipca 2020
W tej pracy dostarczamy protokół do biofunkcjonalizacji magnetycznych nanomateriałów z przeciwciałami do określonego celowania w komórki. Na przykład wykorzystujemy nanodruty żelaza do celowania w komórki rakowe.
Kluczową cechą tego protokołu jest to, że może być stosowany do szerokiej gamy nanomateriałów żelazo-tlenek żelaza. Może być również stosowany na wielosegmentowych nanomateriałach, takich jak nanodruty żelazo-złoto. Protokół ten można bezpiecznie wykonać w każdym standardowym laboratorium biologicznym.
Głównymi zaletami tej techniki biofunkcjonalizacji jest możliwość wytworzenia specjalnie ukierunkowanego nanomateriału opartego na silnym wiązaniu kowalencyjnym między nanodrutem a przeciwciałami. Zacznij od pocięcia aluminiowych krążków na małe kawałki za pomocą jednoostrzowego ostrza i małego młotka. Umieść pocięte kawałki w dwumililitrowej tubie i napełnij ją jednym mililitrem jednomolowego wodorotlenku sodu, upewniając się, że wszystkie kawałki aluminium są zakryte.
Pozostaw probówkę w temperaturze pokojowej w dygestorii chemicznej na 30 minut. Po inkubacji usuń kawałki aluminium za pomocą pęsety i trzymaj uwolnione nanodruty w wodorotlenku sodu przez dodatkowe 30 minut. Umieść probówkę w magnetycznym suchym stojaku, odczekaj dwie minuty i zastąp roztwór świeżym wodorotlenkiem sodu.
Sonikuj dwumililitrową rurkę z nanodrutami przez 30 sekund i pozostaw ją na godzinę w dygestoriach chemicznych. Powtórz ten krok co najmniej cztery razy. Po zakończeniu umieść dwumililitrową rurkę w stojaku magnetycznym, wyrzuć wodorotlenek sodu i zastąp go jednym mililitrem absolutnego etanolu.
Sonikuj nanodruty przez 30 sekund, umieść rurkę w stojaku magnetycznym i wymień etanol. Powtórz mycie etanolem co najmniej cztery razy. Po umyciu nanodrutów przenieś je do pięciomililitrowej szklanej rurki za pomocą jednomililitrowej pipety.
Dodaj 100 mikrolitrów APTES do roztworu nanodrutu i wiruj szklaną rurkę przez 20 sekund. Umieść probówkę w łaźni ultradźwiękowej i poddawaj ją sonikacji przez godzinę. Następnie wyjmij rurkę z kąpieli i dodaj 400 mikrolitrów wody dejonizowanej i 20 mikrolitrów jednomolowego wodorotlenku sodu.
Powtórz jednogodzinną sonikację. Po wyjęciu szklanej rurki z kąpieli ultradźwiękowej umieść ją obok magnesu, aby zebrać nanodruty. Zastąp supernatant jednym mililitrem świeżego absolutnego etanolu i poddaj probówkę sonikacji przez 10 sekund.
Powtórz płukanie etanolem i sonikację dwukrotnie. Rozpuść 0,4 miligrama EDC i 1,1 miligrama Sulfo-NHS i jeden mililitr MES w dwumililitrowej probówce. W kolejnej dwumililitrowej probówce dodaj 960 mikrolitrów 0,1-molowego PBS i dodaj do niej 30 mikrolitrów przeciwciała anty-CD44.
Następnie do tej probówki dodaj 10 mikrolitrów wcześniej przygotowanej mieszaniny EDC/Sulfo-NHS. Umieść probówkę z przeciwciałem w shakerze i potrząsaj nią 10 razy G przez 15 minut w temperaturze pokojowej. W międzyczasie umieść magnes obok rurki z nanodrutami pokrytymi APTES na dwie minuty, wyrzuć etanol i zastąp go PBS.
Sonikuj nanodruty przez 10 sekund. Po ostatnim przemyciu PBS zebrać nanodruty i przenieść aktywowany roztwór przeciwciała do rurki z nanodrutami. Następnie wykonuj sonikację przez 10 sekund.
Wymień rurkę w rotatorze na noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Następnego dnia zbierz nanodruty za pomocą magnesu i wyrzuć supernatant. Dodaj jeden mililitr 2% BSA i inkubuj probówkę przez godzinę w temperaturze czterech stopni Celsjusza, aby zablokować reakcję.
Spektroskopia strat energii elektronów lub mapy EELS mogą być wykorzystane do wizualizacji atomów krzemu na powierzchni nanodrutów i potwierdzenia obecności powłoki APTES. Na niepowlekanych nanodrutach atomy żelaza wydają się ciemnoniebieskie, a atomy zmieszane żelaza i tlenu są jasnoniebieskie. Odpowiednie mapowanie EELS niepowlekanych nanodrutów pokazuje większą intensywność żelaza w porównaniu z tlenem w środku niż na powierzchni, co wskazuje na strukturę żelaza-tlenku żelaza.
Mapowanie wykazało, że warstwa tlenku żelaza składa się z większej ilości tlenku żelaza(II, III) niż tlenku żelaza(III). Antygenowość przyłączonych przeciwciał potwierdzono za pomocą testów immunoprecypitacji i western blot. Test BCA wykorzystano do ilościowego określenia liczby przeciwciał na nanodrutach.
Pomiar potencjału zeta wykorzystano do wyjaśnienia funkcjonalizacji powierzchni. Końcowa grupa aminowa na APTES zmniejszyła ładunek ujemny w porównaniu z niepowlekanymi nanodrutami. Funkcjonalizacja przeciwciał jeszcze bardziej zmniejszyła ładunek.
Specyficzne ukierunkowanie nanodrutów funkcjonalizowanych przeciwciałem na komórki potwierdzono za pomocą mikroskopii konfokalnej. Rysunki A i B przedstawiają obrazy mikroskopowe w jasnym polu odpowiednio próbki C i D. Kolor czerwony odpowiada obrazowi błony komórkowej, niebieski reprezentuje jądro, a zielone klastry reprezentują obecność dołączonych, ukierunkowanych nanodrutów CD44.
Ponadto test żywotności komórek wykorzystano do sprawdzenia, czy niepowlekane, powlekane APTES i powlekane przeciwciałami nanodruty są biokompatybilne. W powłoce procesowej APTES bardzo ważne jest, aby dodać wodę dejonizowaną przed roztworem wodorotlenku sodu, aby wzmocnić wiązanie między cząsteczką APTES a nanodrutami. Ponadto podczas procesu biofunkcjonalizacji konieczne jest kilkukrotne przemycie nanodrutu buforem PBS, aby wzmocnić wiązanie kowalencyjne między przeciwciałem a nanodrutami.
Niniejsze badanie przedstawia protokół biofunkcjonalizacji magnetycznych nanomateriałów przeciwciałami w celu uzyskania specyficznego celowania w komórki, w szczególności z wykorzystaniem nanodrutów żelaznych do targetowania komórek nowotworowych.
Niniejszy protokół umożliwia otrzymywanie specyficznie ukierunkowanych nanomateriałów magnetycznych poprzez kowalencyjne przyłączanie przeciwciał, co wspiera rozwój precyzyjnych terapeutyków i diagnostyki. Dzięki zwiększeniu specyficzności celowania oraz umożliwieniu zdalnej kontroli magnetycznej, metoda ta przyczynia się do redukcji ryzyka mechanistycznego w programach onkologicznych na wczesnym etapie. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną interwencji opartych na nanomateriałach poprzez walidację zarówno wydajności celowania, jak i biokompatybilności.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesów badawczych od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, umożliwiając wiarygodną ocenę związków dzięki zastosowaniu mierzalnych, magnetycznie responsywnych nanomateriałów.