6 sierpnia 2020
Ten protokół przedstawia test kiełkowania naczyniówki, model ex vivo proliferacji mikronaczyniowej. Test ten może być stosowany do oceny szlaków zaangażowanych w proliferację mikronaczyniówek i oceny leczenia farmakologicznego przy użyciu typu dzikiego i genetycznie zmodyfikowanej tkanki myszy.
Ten test naczyniówki jest wysoce powtarzalny i istotny dla badań nad angiogenezą naczyniówkową i zwyrodnieniem plamki żółtej związanym z wiekiem, AMD Może uzupełniać badania in vivo zachowania mikrokrążenia. Test ten może być stosowany do badań przesiewowych związków jako potencjalnych metod leczenia neowaskularnego AMD lub do oceny szlaków zaangażowanych w neowaskularyzację naczyniówkową przy użyciu typu dzikiego i genetycznie zmodyfikowanej tkanki myszy. Na początek dodaj pięć mililitrów penicyliny, streptomycyny i 10 i 5 mililitrów dostępnych na rynku suplementów do 500 mililitrów kompletnej klasycznej pożywki z surowicą, a następnie podwielokrotność 50 mililitrów pożywki rozmrozić podstawowy ekstrakt błonowy lub BME przez noc w lodówce w temperaturze od dwóch do ośmiu stopni Celsjusza.
Umieść porcję kompletnego klasycznego podłoża na lodzie. Wyczyść mikroskop preparacyjny, kleszcze i nożyczki 70% etanolem. Przygotuj szalki do hodowli komórkowych i umieść jedną na mikroskopie preparacyjnym, a drugą na lodzie.
Następnie dodaj 10 mililitrów kompletnego klasycznego podłoża do każdego dania. Trzymaj oczy w kompletnym klasycznym podłożu na lodzie przed preparacją. Usuń tkankę łączną i nerw wzrokowy, a następnie użyj mikronożyczek, aby przeciąć obwód 0,5 milimetra za Limbusem rogówki.
Usuń rogówkę Tęczówka złożona, szklista i do soczewki. Wykonaj jednomilimetrowe nacięcie prostopadłe do krawędzi cięcia w kierunku nerwu wzrokowego i przeciąć obwodowy pas o szerokości jednego milimetra, a następnie oddziel środkowe i obwodowe obszary kompleksu. Użyj kleszczy, aby oderwać siatkówkę od kompleksu twardówki naczyniówki RPE.
Utrzymuj obwodową opaskę naczyniówki w kompletnym klasycznym podłożu na lodzie. Odizoluj drugie oko i powtórz proces, aby przeciąć drugi pasek. Pokrój okrągłą opaskę na pięć do sześciu mniej więcej równych kwadratowych kawałków.
Dodaj 30 mikrolitrów rozmrożonego BME do środka każdego dołka 24-dołkowej płytki do hodowli tkankowej. Upewnij się, że kropla BME tworzy wypukłą kopułę na dnie płytki, nie dotykając krawędzi. Umieść tkankę na środku BME.
Nie spłaszczaj rośliny naczyniówki X. Pozwól tkance rozszerzyć się w obrębie BME. Inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 10 minut, aby żel zastygł, a następnie dodaj 500 mikrolitrów kompletnej klasycznej pożywki do każdej studzienki.
Zmieniaj klasyczne podłoże co drugi dzień. Kiełkowanie naczyniówki można zaobserwować po trzech dniach pod mikroskopem. Otwórz obraz kiełkowania naczyniówki z obrazem J i sprawdź obraz, typ i osiem bitów ze skalą szarości.
Następnie zoptymalizuj kontrast, wybierając obraz, dostosuj, kontrast jasności i dostosowując go. Użyj funkcji magicznej różdżki, aby obrysować i usunąć tkankę naczyniówki, która znajduje się w środku kiełków. Usuń tło obrazu za pomocą bezpłatnych narzędzi do zaznaczania.
Następnie przejdź do obrazu, dostosuj próg i użyj funkcji progu, aby zdefiniować kiełki mikronaczyniowe na tle na obrzeżach. Kliknij F2, a pojawi się podsumowanie. Kliknij przycisk Zapisz, aby zapisać obraz zaznaczonego obszaru w tym samym folderze, w którym znajduje się oryginalny obraz, do wykorzystania w przyszłości.
Po zmierzeniu grupy próbek skopiuj zarejestrowane dane do analizy. Protokół ten został wykorzystany do zbadania i ilościowego określenia kiełkowania naczyniówki u C 57, czarnych sześciu myszy J od trzeciego do szóstego dnia. W reprezentatywnym przypadku obszar kiełkowania naczyniówki wynosił 0,38, 1,47, 5,62 i 10,09 milimetra do kwadratu odpowiednio w trzecim, czwartym, piątym i szóstym dniu.
Wpływ utraty FFAR4 na kiełkowanie naczyń krwionośnych oceniano za pomocą testu kiełkowania naczyniówki u myszy FFAR4 z czterema nokautami i FFAR4 typu dzikiego. Obszar kiełkowania u myszy z nokautem FFAR4 zwiększył wzrost naczyniówki w porównaniu z dzikim typem FFAR4 w szóstym dniu. Ponadto leczenie jednym mikromolowym agonistą FFAR4 zmniejszyło obszar kiełkowania naczyniówki w porównaniu z nieleczonymi myszami w szóstym dniu.
Test ten pozwala na powtarzalną ocenę potencjału antyangiogennego związków farmakologicznych oraz zmienności roli określonych szlaków w neowaskularyzacji naczyniówkowej z wykorzystaniem genetycznie zmodyfikowanej tkanki myszy.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół przedstawia test kiełkowania błony naczyniowej jako model ex vivo do badania proliferacji mikronaczyniowej, w szczególności w odniesieniu do angiogenezy naczyniówkowej oraz związanej z wiekiem zwyrodnienia plamki żółtej (AMD) o charakterze naczyniowym. Test ten umożliwia ocenę szlaków zaangażowanych w proliferację mikronaczyniową naczyniówki oraz analizę działania leków z wykorzystaniem tkanek mysich typu dzikiego oraz modyfikowanych genetycznie.
Test kiełkowania naczyniowego błony naczyniówkowej ex vivo stanowi powtarzalny model oceny proliferacji mikro naczyniowej błony naczyniówkowej, co ma bezpośrednie znaczenie dla poszukiwania leków na neowaskularną postać zwyrodnienia plamki związanego z wiekiem (AMD). Umożliwia on mechanistyczną weryfikację i ograniczanie ryzyka w odniesieniu do szlaków angiogennych z wykorzystaniem tkanek mysich typu dzikiego oraz modyfikowanych genetycznie, wspierając walidację celów terapeutycznych i identyfikację związków wiodących w projektach okulistycznych. Test ten łączy biologię odkrywczą z oceną przedkliniczną poprzez ilościowe określanie dynamiki kiełkowania w systemie eksplantu tkankowego o istotnym znaczeniu fizjologicznym.
Analiza ta wpisuje się w proces odkrywania leków w okulistyce, obejmujący etapy od walidacji celu, przez optymalizację lidera, aż po przedkliniczne badania skuteczności, w szczególności w przypadku strategii antyangiogennych w AMD.