RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/61704-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study details a protocol for preparing horizontal hippocampal-entorhinal cortex slices from mice, enabling investigation of network oscillations in acute brain slice preparations. The method emphasizes maintaining spontaneous activity through specific incubation and recording conditions using artificial cerebrospinal fluid.
Ten protokół opisuje przygotowanie poziomych wycinków kory hipokampowo-śródwęchowej (HEC) od myszy wykazujących spontaniczną aktywność fal ostrych. Plastry są inkubowane w uproszczonej komorze przechowawczej, a nagrania są wykonywane w warunkach zanurzonych z szybko płynącym sztucznym płynem mózgowo-rdzeniowym, aby promować dotlenienie tkanek i spontaniczne pojawienie się aktywności na poziomie sieci.
Korzystając z tego protokołu, naukowcy mogą badać mechanizmy leżące u podstaw oscylacji sieci hipokampa w preparatach do wycinków mózgu myszy w ostrych odstępach czasu. W tym preparacie nagrania są wykonywane w warunkach zanurzonych w warstwach generujących spontaniczne oscylacje sieci, co pozwala na wykonanie technik farmakologicznych i optogenetycznych oraz wizualizację zapisów jednokomórkowych. W przypadku perfuzji przezsercowej, bezpośrednio przed wyjęciem myszy z komory izofluranu, należy napełnić pokrywkę szalki Petriego trzema do pięciu milimetrów schłodzonego roztworu sacharozy i napełnić dno szalki Petriego około jednym centymetrem schłodzonego roztworu sacharozy.
Szybko przenieś znieczuloną mysz do lewej wkładki chłonnej i użyj trzech kawałków taśmy, aby zabezpieczyć przednie kończyny i ogon. Za pomocą dużych kleszczy do tkanek i nożyczek chirurgicznych rozłóż skórę i wykonaj podłużne nacięcie od dołu mostka do górnej części klatki piersiowej. Użyj kleszczy, aby podciągnąć się na mostku i użyj nożyczek, aby przeciąć przeponę.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
14:57
Related Videos
95.4K Views
02:55
Related Videos
1.2K Views
02:44
Related Videos
1.1K Views
09:48
Related Videos
8.9K Views
07:44
Related Videos
18.3K Views
10:24
Related Videos
15.4K Views
14:27
Related Videos
13.5K Views
08:58
Related Videos
8.6K Views
08:59
Related Videos
21.1K Views
10:45
Related Videos
8.6K Views