14 grudnia 2020
Wywołane przez środki przeciwbakteryjne zmiany w architekturze biofilmu Pseudomonas aeruginosa różnią się między klinicznymi izolatami hodowanymi od pacjentów z mukowiscydozą i przewlekłą infekcją płuc. Po mikroskopii konfokalnej oprogramowanie COMSTAT może być wykorzystane do ilościowego określenia zmian w architekturze biofilmu (np. powierzchni, grubości, biomasy) dla poszczególnych izolatów w celu oceny skuteczności środków przeciwinfekcyjnych.
Znaczenie tego protokołu polega na tym, że oferuje on proste i powtarzalne ramy do ilościowego określania struktur biofilmu in vitro w różnych warunkach przeciwdrobnoustrojowych. Główną zaletą tej techniki jest to, że pomaga wyeliminować subiektywne różnice związane z ręczną obsługą COMSTAT, co ostatecznie ułatwia standaryzację i przejrzystość eksperymentów we wszystkich ośrodkach badawczych. Aby zobrazować kultury Pseudomonas aeruginosa, należy umieścić płytkę na stoliku mikroskopu konfokalnego, wyposażonego w odpowiednie długości fal wzbudzenia laserowego i zestawy filtrów.
Użyj soczewki zanurzonej w wodzie od 20 do 25x, aby uchwycić co najmniej sześć warstwowych obrazów stosu z od podłoża do góry każdego segmentu biofilmu w odstępach co 0,3 mikrometra. Następnie zapisz obrazy jako pliki OME-TIFF do analizy COMSTAT. Po pobraniu wszystkich obrazów otwórz pakiet COMSTAT2 w ImageJ i utwórz folder źródłowy na pulpicie.
Dodaj pojedynczy plik OME-TIFF do folderu i otwórz plik OME-TIFF z folderu źródłowego. Usuń wszystkie puste warstwy, które nie zawierają biomasy. Wybierz opcję Plik, Import i Sekwencja obrazu, aby zaimportować plik do ImageJ.
Zlokalizuj i zaznacz folder źródłowy bez otwierania go, a następnie kliknij przycisk Wybierz. Pojawi się okno opcji sekwencji, kliknij OK. Wybierz opcję Obraz, Przekształć i Odwróć Z, aby odwrócić orientację biofilmu tak, aby podłoże znalazło się na górze stosu. Aby zdefiniować właściwości obrazu, wybierz Obraz i właściwości, pojawi się okno źródłowe.
Określ jednostkę długości jako mikron, zdefiniuj głębokość woksela jako 0,3 i kliknij przycisk OK. Wybierz opcje Obraz, Dostosuj i Próg. Aby dostosować próg obrazu w oknie progu, przesuń dolny suwak maksymalnie w prawo, aby ręcznie ustawić maksymalną wartość progową, a następnie użyj górnego suwaka, aby ustawić minimalny próg. Następnie użyj suwaka w oknie obrazu, aby przewinąć każdą warstwę, aby upewnić się, że szum tła jest wystarczająco usunięty w całym stosie, a następnie wybierz opcję Ustaw, aby ustalić dolną wartość progową.
W oknie ustawianie poziomów progowych wybierz przycisk OK, a następnie ustaw i ustal maksymalną wartość progową w podobny sposób. Wybierz pozycję Zastosuj, kliknij przycisk OK w wyświetlonym oknie konwersji stosu na binarny i zamknij okno progu. Wybierz Wtyczki, Bio-Formaty i Eksporter Bio-Formatów, aby zapisać plik z nową nazwą pliku w folderze źródłowym.
Pojawi się okno z wieloma plikami Eksporter formatów biologicznych, wybierz OK. Pojawi się okno opcji eksportera formatów biologicznych, ponownie wybierz OK. Aby uruchomić COMSTAT, wybierz wtyczki i COMSTAT2, pojawi się okno informacji, wybierz OK.In oknie Obserwowane katalogi, wybierz Dodaj, zlokalizuj i zaznacz folder źródłowy, zaznacz i kliknij Wybierz. Pojawi się okno Images in Directories (Obrazy w katalogach) z listą plików OME-TIFF do analizy.
W oknie COMSTAT2.1 usuń zaznaczenie opcji Automatic Thresholding Otsu's Method (Metoda automatycznego progowania) i Connected Volume Filtering (Filtrowanie woluminów połączonych), aby upewnić się, że oprogramowanie używa wstępnie ustawionych wartości progowych dla poszczególnych formatów OME-TIFF. W oknie COMSTAT2.1 wybierz opcję Biomasa, Rozkład grubości i Pole powierzchni, a następnie kliknij przycisk Przejdź, aby uruchomić program. Dane wyjściowe zostaną wyświetlone w oknie dziennika.
Pomiary zostaną automatycznie zapisane jako pliki TXT w folderze źródłowym. W tej reprezentatywnej analizie wykorzystano izolat Pseudomonas aeruginosa, wyhodowany od zakażonego pacjenta z mukowiscydozą, aby zademonstrować mocne strony tego podejścia, niedokładnie określając ilościowo zmiany wywołane przez środki przeciwdrobnoustrojowe w architekturze biofilmu in vitro. Obrazowanie żywych komórek może również wizualizować zmiany w strukturze biofilmu Pseudomonas aeruginosa przed i po leczeniu monoklonalnym i tobramycyną specyficzną dla biofilmu.
Analiza danych COMSTAT ujawniła istotne różnice między strukturami biofilmu poddanymi działaniu środka w porównaniu z kulturami kontrolnymi. W kulturach traktowanych tobramycyną zaobserwowano wyraźne zmniejszenie średniej grubości i biomasy. Jednak w obecności przeciwciał biofilm P.aeruginosa był odporny na te zmiany strukturalne wywołane przez tobramycynę.
Podczas badania stosunku powierzchni do objętości biologicznej zaobserwowano znaczne zmniejszenie obecności przeciwciał zarówno w biofilmach narażonych na działanie tobramycyny, jak i nieeksponowanych, co wskazuje na tworzenie się agregatów w kulturach poddanych działaniu przeciwciał. Procedurę tę można przeprowadzić w celu ilościowej oceny lub porównania działania różnych środków przeciwdrobnoustrojowych stosowanych do rozbijania matryc biofilmu. Wykorzystując tę technikę jako ogólne ramy, naukowcy mogą badać różne sposoby udoskonalenia protokołu w celu uwzględnienia nowych modeli matematycznych i wtyczek algorytmicznych w ImageJ, aby lepiej zobrazować heterogeniczność biofilmu.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia powtarzalny schemat ilościowego określania struktur biofilmu Pseudomonas aeruginosa w różnych warunkach przeciwdrobnoustrojowych. Protokół ma na celu standaryzację oceny architektury biofilmu, zwiększając przejrzystość badań prowadzonych w różnych ośrodkach badawczych.
Ustandaryzowana kwantyfikacja efektów przeciwmikrobowych w odniesieniu do architektury biofilmu wspiera walidację celów w opracowywaniu leków przeciwzakaźnych. Obiektywne metryki biofilmu umożliwiają mechanistyczne ograniczanie ryzyka w przypadku potencjalnych terapeutyków poprzez powiązanie ekspozycji na związek z wynikami strukturalnymi. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną w badaniach przesiewowych przedklinicznych, redukując zmienność w ocenie fenotypu biofilmu pomiędzy laboratoriami.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od walidacji celu po optymalizację wiodącego związku, zapewniając ilościowe fenotypowanie biofilmu w celu określenia zależności struktura-aktywność.