RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/61902-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study presents a protocol for the fabrication of a spheroid imaging device, enabling dynamic and longitudinal fluorescence imaging of cancer cell spheroids to investigate mechanisms of cell invasion in real-time. The technique demonstrates enhanced efficiency and cost-effectiveness for modeling solid tumor invasiveness.
Prezentowany tutaj jest protokół produkcji urządzenia do obrazowania sferoidowego. Urządzenie to umożliwia dynamiczne lub podłużne obrazowanie fluorescencyjne sferoid komórek nowotworowych. Protokół oferuje również prostą procedurę przetwarzania obrazu do analizy inwazji komórek rakowych.
Protokół ten może być wykorzystany do badania mechanizmów rządzących inwazją komórek nowotworowych do macierzy zewnątrzkomórkowej w czasie rzeczywistym. Główną zaletą tej techniki jest to, że wykorzystuje ona proste urządzenie do obrazowania sferoidów, co ułatwia konfigurację testu inwazji sferoidów oraz poprawia jego wydajność i koszt. Chociaż pokazujemy użycie testu inwazji sferoidalnej do modelowania raka sutka, ten test jest doskonałym modelem inwazji dowolnego guza litego do otaczającej zdrowej tkanki.
Po wydrukowaniu 3D przekładki, odważ w plastikowym kubku polimer bazowy w stosunku 10:1 do środka sieciującego i użyj jednorazowej pipety, aby dokładnie wymieszać powstały roztwór PDMS w kubku. Umieść kubek w komorze próżniowej i szybko zwolnij podciśnienie, aby usunąć powietrze uwięzione na powierzchni mieszanki i rozproszyć pozostałe pęcherzyki powietrza. Inkubuj wydrukowaną w 3D przekładkę w temperaturze 100 stopni Celsjusza przez pięć minut, aby zwiększyć jej elastyczność i wyczyść dwie szklane płytki 100% izopropanolem.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
09:18
Related Videos
22.5K Views
07:08
Related Videos
17.4K Views
03:18
Related Videos
722 Views
12:19
Related Videos
59.6K Views
05:34
Related Videos
34K Views
09:24
Related Videos
9.5K Views
08:15
Related Videos
16.3K Views
06:27
Related Videos
9.6K Views
09:17
Related Videos
7.2K Views
07:44
Related Videos
12.5K Views