Name: Model mikroprzepływowy naśladujący początkowe zdarzenie neowaskularyzacji (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 1 s
Description: Poznaj model mikroprzepływowy MIEN naśladujący początkowe zdarzenie neowaskularyzacji z kontrolą naprężenia ścinającego i gradientów VEGF. Ta platforma umożliwia badania mechanistyczne oraz screening leków in vitro.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez National Natural Science Research Foundation of China Grants-in-Aid (granty nr 11827803, 31971244, 31570947, 11772036, 61533016, U20A20390 i 32071311), Narodowy Kluczowy Program Badań i Rozwoju Chin (granty nr 2016YFC1101101 i 2016YFC1102202), Projekt 111 (B13003) oraz Pekińską Fundację Nauk Przyrodniczych (4194079).

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Przez długi czas obserwacja neowaskularyzacji w czasie rzeczywistym stanowiła problem. Ostatnio opracowano kilka podejść do tworzenia perfundowanych naczyń wyściełających EC i przylegających do macierzy zewnątrzkomórkowej w celu kiełkowania 22,32,40,46,54, ale mikrośrodowisko mechaniczne jest nadal trudne do stałego utrzymania. Pozostaje trudnym tematem do naś...

Neowaskularyzacja zachodzi w wielu normalnych i patologicznych procesach1,2,3,4, które obejmują dwa główne procesy u dorosłych, angiogenezę i arteriogenezę5. Oprócz najbardziej znanych czynników wzrostu, takich jak czynnik wzrostu śródbłonka naczyń krwionośnych (VEGF)6, stymulacje mechaniczne, w szczególności naprężenie ścinające wywołane przepływem krwi, są ważne w regulacji neowaskularyzacji7. Jak wiemy, wielkość i formy naprężeń ścinających różnią się dramatycznie i dynamicznie w różnych częściach układu krwionośnego, co ma istotny wpływ na komórki naczyniowe8,9,10,11,12. Wcześniejsze badania wykazały, że naprężenie ścinające może wpływać na różne aspekty EC, w tym zmiany fenotypowe komórek, transdukcję sygnału, ekspresję genów i komunikację z komórkami muralowymi13,14,15,16,17,xref"18,19,Dnia 20; W związku z tym reguluj neowaskularyzację21,22,23,24.
Dlatego, aby lepiej zrozumieć neowaskularyzację, ważne jest zrekonstruowanie procesu w naturalnym mikrośrodowisku komórkowym in vitro. Ostatnio powstało wiele modeli do tworzenia mikronaczyń i zapewnienia precyzyjnej kontroli mikrośrodowiska25,26,27, wykorzystując postępy w mikroprodukcji i technologii mikroprzepływowej. W tych modelach mikronaczynia mogą być generowane przez hydrożel28,29, chipy mikroprzepływowe z polidimetylosiloksanu (PDMS)30,31,32 lub biodruk 3D33,34. Niektóre aspekty mikrośrodowiska, takie jak naprężenie ścinające światło22,23,35,36, przepływ przezśródbłonkowy37,38,39,40, biochemiczny gradient czynników angiogennych41,42, strain/stretch43,44,45, i współhodowane z innymi typami komórek32,46 zostały naśladowane i kontrolowane. Zwykle do dostarczania perfundowanego medium używano dużego zbiornika lub pompy strzykawkowej. Przepływ przezśródbłonkowy w tych modelach został utworzony przez spadek ciśnienia między zbiornikiem a mikrorurką22,23,38,40. Jednak mechaniczne mikrośrodowisko było trudne do ciągłego utrzymywania w ten sposób. Przepływ przezśródbłonkowy wzrósłby, a następnie przekroczyłby poziom fizjologiczny, gdyby do perfuzji zastosowano wysokie natężenie przepływu z dużym naprężeniem ścinającym. Poprzednie badania wykazały, że w początkowym okresie neowaskularyzacji prędkość przepływu przezśródbłonkowego jest bardzo niska ze względu na nienaruszone EC i błonę podstawną, zwykle poniżej 0,05 μm/s8. Tymczasem, mimo że naprężenie ścinające światło w układzie naczyniowym jest bardzo zróżnicowane, jest stosunkowo wysokie ze średnimi wartościami 5-20 dyn/cm2,11,47. Na razie prędkość przepływu przezśródbłonkowego w poprzednich pracach była na ogół utrzymywana w granicach 0,5-15 μm/s22,38,39,40, a naprężenie ścinające światła było zwykle poniżej 10 dyn/cm2 23. Pozostaje trudnym tematem, aby stale narażać EC na wysokie naprężenia ścinające światła i fizjologiczny poziom przepływu przezśródbłonkowego.
W niniejszym badaniu opisujemy model 3D in vitro, który naśladuje początkowe zdarzenie neowaskularyzacji (MIEN). Opracowaliśmy chip mikroprzepływowy i automatyczny, wysoce wydajny system cyrkulacji do tworzenia mikrorurek perfuzyjnych i symulacji procesu kiełkowania48. W modelu MIEN najpierw podsumowuje się mikrośrodowisko EC stymulowane w początkowym okresie neowaskularyzacji. EC mogą być stymulowane przez wysokie naprężenie ścinające światło, fizjologiczny poziom przepływu przezśródbłonkowego i różny rozkład VEGF jednocześnie. Szczegółowo opisujemy etapy tworzenia modelu MIEN i kluczowe punkty, na które należy zwrócić uwagę, mając nadzieję, że dostarczymy odniesienia dla innych badaczy.

<table><tbody><tr><td>0,25% Trypsyna-EDTA</td><td>Genview</td><td>GP3108</td><td></td></tr><tr><td>Kolagen I, ogon szczura</td><td>Corning</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D9542</td><td></td></tr><tr><td>Elektromagnetyczny zawór zaciskowy</td><td>Wokun Technology</td><td>WK02-308-1/3</td><td></td></tr><tr><td>Pożywka dla komórek śródbłonka (ECM)</td><td>Sciencell</td><td>1001</td><td></td></tr><tr><td>Płodowa surowica bydlęca (FBS)</td><td>Każdy zielony</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Fibronectin</td><td>Corning</td><td>354008</td><td></td></tr><tr><td>FITC-dekstran</td><td>Miragen</td><td>60842-46-8</td><td></td></tr><tr><td>Graficzne środowisko programowania</td><td>Lab ZOBACZ</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Oprogramowanie do edycji obrazów</td><td>PhotoShop</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Program do przetwarzania obrazów</td><td>ImageJ</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>91237</td><td></td></tr><tr><td>Sprzęt litograficzny</td><td>Instytut Optyki i Elektroniki, Chińska Akademia Nauk</td><td>URE-2000/35</td><td></td></tr><tr><td>Metanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>82762</td><td></td></tr><tr><td>Pompa mikroperystaltyczna</td><td>Płyn ołowiowy</td><td>BT101L</td><td></td></tr><tr><td>Pompa mikrostrzykawkowa</td><td>Płyn ołowiowy</td><td>TYD01</td><td></td></tr><tr><td>Plazma tlenowa</td><td>MING HENG</td><td>PDC-MG</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyd</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>PBS (10x)</td> <td>Beyotime</td><td>ST448</td><td></td></tr><tr><td>Trwały fotorezystor epoksydowy ujemny</td><td>Microchem</td><td>SU-8 2075</td><td></td></tr><tr><td>Sól sodowa czerwieni fenolowej</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5530</td><td></td></tr><tr><td>Polidimetylosiloksan (PDMS)</td> <td>Dow Corning</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>Bromowodorek poli-D-lizyny (PDL)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7886</td><td></td></tr><tr><td>Politetrafluoroetylen-teflon</td><td></td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Oprogramowanie programowe</td><td>MATLAB</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Rekombinowany ludzki VEGF-165</td><td>StemImmune LLC</td><td>HVG-VF5</td><td></td></tr><tr><td>Wodorotlenek sodu (NaOH)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1.06498</td><td></td></tr><tr><td>Inkubator górny</td><td>Tokai Hit</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>SU-8 wywoływacz</td><td>Microchem</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Trichloro(1H,1H,2H,2H-perfluorooktylo)silan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>448931</td><td></td></tr><tr><td>TRITC Phalloidin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5285</td><td></td></tr></tbody></table>

model mikroprzepływowy naśladujący początkowe zdarzenie neowaskularyzacji

Microfluidic Model to Mimic Initial Event of Neovascularization

Neowaskularyzacja jest zwykle inicjowana z istniejącego normalnego unaczynienia, a biomechaniczne mikrośrodowisko komórek śródbłonka (EC) w początkowej fazie różni się znacznie od następnego procesu neowaskularyzacji. Chociaż istnieje wiele modeli symulujących różne etapy neowaskularyzacji, nadal brakuje modelu 3D in vitro, który kapituluje początkowy proces neowaskularyzacji pod odpowiednimi stymulacjami normalnych mikrośrodowisk unaczynienia. W tym miejscu zrekonstruowaliśmy model 3D in vitro, który naśladuje początkowe zdarzenie neowaskularyzacji (MIEN). Model MIEN zawiera mikroprzepływowy chip kiełkujący i automatyczny, wysoce wydajny system cyrkulacji sterowania. Utworzono funkcjonalny, perfuzyjny mikrokanał pokryty śródbłonkiem, a proces kiełkowania symulowano w mikroprzepływowym chipie do kiełkowania. Początkowo fizjologiczne mikrośrodowisko neowaskularyzacji zostało podsumowane za pomocą mikroprzepływowego systemu sterowania, za pomocą którego EC byłyby narażone na wysokie naprężenia ścinające światło, fizjologiczny przepływ przezśródbłonkowy i różne rozkłady czynnika wzrostu śródbłonka naczyniowego (VEGF) jednocześnie. Model MIEN może być z łatwością zastosowany do badania mechanizmu neowaskularyzacji i jest potencjalnie obiecujący jako tania platforma do badań przesiewowych leków i zastosowań toksykologicznych.

Przedstawiony tutaj model 3D in vitro do naśladowania początkowego zdarzenia neowaskularyzacji (MIEN) składał się z mikrofluidycznego chipa do kiełkowania oraz mikrofluidycznego systemu sterowania. Mikrofluidyczny chip do kiełkowania został zoptymalizowany na podstawie wcześniejszych publikacji22,23,37,40,51,52,...

Tutaj dostarczamy chip mikroprzepływowy i automatycznie sterowany, wysoce wydajny system mikroprzepływowy krążenia, który podsumowuje początkowe mikrośrodowisko neowaskularyzacji, umożliwiając stymulację komórek śródbłonka (EC) przez wysokie naprężenie ścinające światło, fizjologiczny poziom przepływu przezśródbłonkowego i rozkład różnych czynników wzrostu śródbłonka naczyniowego (VEGF) jednocześnie.

Model mikroprzepływowy naśladujący początkowe zdarzenie neowaskularyzacji

Neovascularization is usually initialized from an existing normal vasculature and the biomechanical microenvironment of endothelial cells (ECs) in the ...

Neowaskularyzacja, czyli tworzenie nowych naczyń krwionośnych, jest procesem wysoce regulowanym zarówno w normalnych, jak i patologicznych zdarzeniach. Aby lepiej zrozumieć neowaskularyzację, ważne jest, aby zrekonstruować ten proces w naturalnym mikrośrodowisku komórkowym in vitro. Opracowaliśmy układ mikroprzepływowy i automatyczne sterowanie.Wysoce wydajne krążenie odbywa się w celu utworzenia mikrorurek perfuzyjnych i symulacji użycia białka do rekapitulacji początkowego zdarzenia nowego unaczynienia. Mikroprzepływowy chip do kiełkowania składał się z trzech kanałów. Kanał hodowli komórek śródbłonka i kanał ciekły oddzielono szerokim centralnym kanałem hydrożelowym.Mikroprzepływowy system sterowania składał się z pompy mikrostrzykawkowej i elektromagnetycznego zaworu zaciskowego. Chip pułapki bąbelkowej, mikroprzepływowy chip do kiełkowania, pompa mikroperystaltyczna i zbiornik pożywki hodowlanej. Dzięki układowi mikroprzepływowemu komórki śródbłonka mogą być stymulowane przez wysokie naprężenie ścinające światło, fizjologiczny poziom przepływu przezśródbłonkowego i różne rozkłady czynnika wzrostu śródbłonka naczyniowego jednocześnie.Odpipetować 20 mikrolitrów 125 mikrogramów na mililitr fibronektyny do jednego portu iniekcyjnego pożywki kanału hodowli komórkowej. Wytnij końcówkę pipety, aby pasowała do portu kanału hodowli komórkowej za pomocą nożyczek. Włóż końcówkę pipety do drugiego portu iniekcyjnego pożywki w kanale hodowli komórkowej.Następnie odpipetuj powietrze z kanału hodowli komórkowej, aby napełnić go fibronektyną. Inkubuj frytki w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez godzinę. Przed wysiewem komórek należy odpipetować 20 mikrolitrów pożywki z komórek śródbłonka do każdego portu iniekcyjnego pożywki i inkubować wióry w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 minut.Następnie odpipetuj wszystkie media we wszystkich portach wtrysku mediów. Następnie odpipetuj pięć mikrolitrów zawiesiny komórkowej do jednego portu iniekcyjnego pożywki kanału hodowli komórkowej. Następnie komórki śródbłonka szybko rozprzestrzeniają się po całym kanale pod wpływem różnicy ciśnień hydrostatycznych.Dodaj około czterech do sześciu mikrolitrów pożywki ECM do drugiego portu, aby wyregulować ciśnienie hydrostatyczne i zatrzymać ruch komórki. Zdal chipy do inkubatora komórkowego. Następnie przewracaj chipsy co 30 minut, aż komórki śródbłonka pokryją się wokół wewnętrznej powierzchni kanału hodowli komórkowej, dwie godziny później.Za pomocą końcówki pipety bardzo ostrożnie usunąć przyczepione komórki z portów iniekcyjnych. Następnie włóż cztery żeńskie adaptery Luer z zadziorami do portów wtrysku mediów i napełnij je nośnikiem ECM. Wyjmować chipy do inkubatora komórkowego, wymieniać pożywki ECM i adaptery Luer co 12 godzin.Aby zmontować układ sterowania mikroprzepływowego, przygotuj dwie rurki z politetrafluoroetylenu, dwie krótkie rurki silikonowe, trzy długie rurki silikonowe, jeden żeński adapter Luer z zadziorem, jedno złącze typu Y, a następnie trzy złącza typu L. Napełnić strzykawkę 10 mililitrami podgrzanego podłoża ECM. Podłączyć rurkę z politetrafluoroetylenu do strzykawki za pomocą żeńskiego adaptera Luer z zadziorami.Następnie podłącz drugi koniec rurki z politetrafluoroetylenu do złącza typu Y. Następnie podłącz dwie długie silikonowe rurki do pozostałych dwóch końców złącza typu Y. Używamy jednej rurki do podłączenia do zbiornika, a drugiej rurki do podłączenia do układu pułapki bąbelkowej.Podłącz kolejną długą silikonową rurkę do zbiornika. Następnie użyj dwóch krótkich silikonowych rurek, aby połączyć wszystkie otwory wlotowe i wylotowe w górnej warstwie chipa pułapki bąbelkowej. Podłącz rurkę z politetrafluoroetylenu do tylnej części chipa.Następnie przymocuj strzykawkę do pompy mikrostrzykawkowej. Wciśnij dwie długie silikonowe rurki do elektromagnetycznego zaworu zaciskowego. Następnie przełącz elektromagnetyczny zawór zaciskowy, aby otworzyć rurociąg między strzykawką a zbiornikiem.Wstrzyknąć pożywkę do zbiornika za pomocą pompy mikrostrzykawkowej, aby usunąć powietrze z rurki. Następnie ponownie przełącz zawór, aby otworzyć rurociąg między strzykawką a chipem pułapki bąbelkowej. Wstrzyknij media, aby wypełnić komorę cieczy i tylną rurkę chipa pułapki bąbelkowej.Wyjmij chipy do kiełkowania śródbłonka z inkubatora komórkowego, a następnie usuń adaptery Luer po stronie hodowli komórkowej. Włóż dwie zatyczki rurowe do portów iniekcji hydrożelu mikroprzepływowego chipa do kiełkowania. Podłącz tylną rurkę chipa pułapki bąbelkowej do jednego portu kanału hodowli komórkowej.Włóż złącze typu T do drugiego portu i podłącz je do długiej rurki silikonowej połączonej ze zbiornikiem. Przypnij długą silikonową rurkę do mikropompy perystaltycznej. Następnie włóż filtr powietrza do zbiornika.Następnie zmontuj mikroprzepływowy chip do kiełkowania w inkubatorze znajdującym się na górze sceny. Następnie podłącz pompę próżniową do otworów w dolnej warstwie chipa pułapki bąbelkowej za pomocą rurki TPU. Ustaw przeciwną objętość krążenia i natężenie przepływu w niestandardowym programie, który jednocześnie steruje pompą mikrostrzykawkową i elektromagnetycznym zaworem zaciskowym.Następnie ustaw natężenie przepływu mikropompy perystaltycznej. Włączyć pompę mikrostrzykawkową. Następnie ustanawiany jest system sterowania obiegiem.Badamy funkcję barierową niektórych mikronaczyń w naszym modelu, mierząc współczynnik przepuszczalności dyfuzyjnej dekstryny 40 kDa. Jak pokazano na rysunku, współczynnik przepuszczalności dyfuzyjnej statycznego chipa hodowlanego z wyściółką komórkową wynosi 0,1 plus minus 0,3 mikrometra na sekundę. A współczynnik przepuszczalności dyfuzyjnej pustego kanału bez wyściółki komórki wynosi 5,4 plus minus 0,7 mikrometra na sekundę.Test kiełkowania śródbłonka wykazał, że komórki śródbłonka wykiełkowały w centralnym hydrożelu głównie po 24 godzinach hodowli statycznej, podczas gdy stopień kiełkowania znacznie zmniejszył się wraz ze wzrostem naprężenia ścinającego światło. Ilościowo, naprężenie ścinające luminalne znacznie zmniejszyło kiełkowanie śródbłonka pod względem powierzchni kiełkowania, średniej długości kiełkowania i najdłuższej długości kiełków. Dzięki naszemu systemowi naprężenie ścinające na komórkach śródbłonka można było opcjonalnie zmienić w dowolnym momencie eksperymentu, podczas gdy przepływ przezśródbłonkowy pozostawał na poziomie fizjologicznym.Ten biomimetyczny model 3D in vitro może być bezpośrednio zastosowany do badania mechanizmu neowasularyzacji i ma potencjał jako tania platforma do badań przesiewowych leków i zastosowań toksykologicznych.

microfluidic-model-to-mimic-initial-event-of-neovascularization

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

Opisano metodę hodowli monowarstwy komórek śródbłonka na całej wewnętrznej powierzchni 3D urządzenia mikrofluidycznego z kanałami o rozmiarze mikro-naczyniowym (&lt;30 μm). Ten model mikro-naczyniowy in vitro umożliwia badanie interakcji biofizycznych między komórkami krwi, komórkami śródbłonka a czynnikami rozpuszczalnymi w chorobach hematologicznych.

Endotelializowane układy mikrofluidyczne do badania oddziaływań naczyniowych w chorobach hematologicznych

Mysia siatkówka noworodka dostarcza dobrze scharakteryzowanego fizjologicznego modelu angiogenezy, który pozwala na badanie ról różnych genów lub leków modulujących angiogenezę w kontekście in vivo. Barwienie immunofluorescencyjne w celu dokładnej wizualizacji splotu naczyniowego ma kluczowe znaczenie dla powodzenia tego typu badań.

Barwienie immunofluorescencyjne siatkówki noworodka myszy w celu zbadania angiogenezy in vivo

Platforma mikrokanałów na chipie została opracowana przez połączenie techniki fotorezystu fotolitografii rozpływowej, miękkiej litografii i mikrofluidyki. Platforma mikrokanalizacyjna naśladuje trójwymiarową (3D) geometrię mikronaczyń in vivo, działa w kontrolowanym ciągłym przepływie perfuzyjnym, umożliwia wysokiej jakości obrazowanie w czasie rzeczywistym i może być stosowana do badań mikronaczyniowych.

Procedura opracowywania wielogłębokościowych, okrągłych, śródbłonkowych mikrokanałów o przekroju międzybłonkowym na chipie

Protokół opisuje test mikrokieszeni rogówki, tak jak został on opracowany u myszy.

Test mikrokieszeni rogówki: model angiogenezy w oku myszy

Pierwotne ludzkie komórki śródbłonka żyły pępowinowej (HUVEC) zostały wyhodowane do zbiegu w mikroprzepływowym urządzeniu sieciowym. Zilustrowano połączenie komórkowe śródbłonka i rozkład F-aktyny, a zmiany w wewnątrzkomórkowym stężeniu wapnia i produkcji tlenku azotu w odpowiedzi na adenozynotrójfosforan (ATP) określono ilościowo w czasie rzeczywistym na poszczególnych poziomach komórek.

Opracowanie i charakterystyka sieci mikronaczyń in vitro oraz pomiary ilościowe produkcji śródbłonka [Ca2+]i i tlenku azotu

Ten protokół opisuje implementację sterowanej obrazem, laserowej degradacji hydrożelu do wytwarzania naczyniowych, biomimetycznych sieci mikroprzepływowych osadzonych w hydrożelach diakrylanowych z poli(glikolu etylenowego) (PEGDA). Te biomimetyczne systemy mikroprzepływowe mogą być przydatne w zastosowaniach inżynierii tkankowej, generowaniu modeli chorób in vitro i wytwarzaniu zaawansowanych urządzeń "na chipie".

Sterowane obrazem, laserowe wytwarzanie sieci mikroprzepływowych pochodzenia naczyniowego

Protokół opisuje, jak zaprojektować perfuzyjną sieć naczyniową w sferoidzie. Mikrośrodowisko otaczające sferoidę jest zaprojektowane tak, aby indukować angiogenezę i łączyć sferoidę z mikrokanałami w urządzeniu mikroprzepływowym. Metoda pozwala na perfuzję sferoidy, co jest długo oczekiwaną techniką w kulturach trójwymiarowych.

Perfuzyjna sieć naczyniowa z modelem tkankowym w urządzeniu mikroprzepływowym

Ta metoda opisuje hodowlę komórek śródbłonka pochodzących z iPSC jako 40 perfundowanych mikronaczyń 3D w standaryzowanej platformie mikroprzepływowej. Platforma ta umożliwia badanie angiogennego kiełkowania sterowanego gradientem w 3D, w tym zespolenia i stabilizacji kiełków angiogennych w sposób skalowalny i wysokoprzepustowy.

Standaryzowany i skalowalny test do badania perfundowanego angiogennego kiełkowania 3D komórek śródbłonka pochodzących z iPSC in vitro

W tym protokole, do badania interakcji między komórkami leukocytów w chorobie zapalnej stosuje się biomimetyczne badanie mikropłynów, które może odtworzyć fizjologicznie istotne środowisko mikrokrążenia i odtworzyć całą kaskadę adhezji/migracji leukocytów.

System mikrofizjologiczny do badania interakcji między leukocytami a komórkami śródbłonka podczas stanu zapalnego

Ten protokół przedstawia fizjologicznie istotny model guza na chipie do przeprowadzenia wysokoprzepustowych podstawowych i translacyjnych badań nad rakiem u ludzi, postępu w badaniach przesiewowych leków, modelowania chorób i spersonalizowanych podejść medycznych z opisem procedur ładowania, konserwacji i oceny.

Ustanowienie fizjologicznego unaczynionego modelu mikroguza człowieka do badań nad rakiem

Poznaj model mikroprzepływowy MIEN naśladujący początkowe zdarzenie neowaskularyzacji z kontrolą naprężenia ścinającego i gradientów VEGF. Ta platforma umożliwia badania mechanistyczne oraz screening leków in vitro.

Model mikroprzepływowy naśladujący początkowe zdarzenie neowaskularyzacji

Przeglądaj więcej filmów