15 lutego 2021
Ten protokół wykorzystuje test immunofluorescencyjny do wykrywania uszkodzeń DNA wywołanych PM2.5 w wypreparowanych sercach zarodków danio pręgowanego.
Metoda ta może być wykorzystana do dokładnego i łatwego wykrywania ekspresji docelowych białek w sercu danio pręgowanego. Zmiany w białku docelowym są bezpośrednio wykrywane przez pomiar immunofluorescencji. Przeprowadzić pobieranie i leczenie zarodków danio pręgowanego, zgodnie z opisem w rękopisie tekstu.
Po 72 godzinach od zapłodnienia przenieś zarodki na szkiełka podstawowe i obserwuj je pod mikroskopem stereoskopowym. Rejestruj wady rozwojowe serca, takie jak obrzęk osierdzia, zmienione pętle i zmniejszony rozmiar. Oblicz wskaźniki wad rozwojowych i przeanalizuj różnice między grupami za pomocą jednokierunkowej analizy ANOVA, a następnie tureckiego testu wielokrotnych porównań.
Po znieczuleniu zarodków 0,6 miligrama na mililitr MS222, rejestruj bicie serca przez 30 sekund i określ ilościowo tętno za pomocą oprogramowania Image J. Ostrożnie wypreparuj serca z zarodków zebry za pomocą jednorazowej igły strzykawkowej pod mikroskopem stereoskopowym. Użyj hydrofobowego pisaka barierowego, aby narysować okrąg na czystym szkiełku.
Dodaj 50 mikrolitrów 4% paraformaldehydu do 1,25 mikrolitra PBS, aby uzyskać roztwór utrwalający, a następnie umieść trzy wycięte serca w jednym hydrofobowym okręgu barierowym i inkubuj przez 20 minut w temperaturze pokojowej. Zdekantować roztwór pod mikroskopem i suszyć próbki w temperaturze pokojowej przez co najmniej pięć minut. Umyj szkiełka trzy razy w PBST przez pięć minut na pranie.
Dodaj 50 mikrolitrów BSA do 1 000 mikrolitrów PBST, aby uzyskać 5% roztwór BSA, i inkubuj szkiełka w wilgotnej komorze przez godzinę, aby zablokować niespecyficzne wiązanie przeciwciał. Zdekantować roztwór i przemyć próbki trzykrotnie PBS przez pięć minut na przemycie. Rozcieńczyć dwa mikrolitry mysiego przeciwciała monoklonalnego przeciwko 8-hydroksydeoksyguanozynie i dwa mikrolitry króliczego przeciwciała poliklonalnego przeciwko gamma-H2AX w 296 mikrolitrach PBST, aby uzyskać działający pierwszorzędowy roztwór koktajlu przeciwciał.
Próbki serca inkubować z 50 mikrolitrami pierwszorzędowego roztworu koktajlu przeciwciał w wilgotnej komorze przez co najmniej godzinę w temperaturze pokojowej lub przez noc w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Zdekantować roztwór i przemyć próbki trzykrotnie PBST przez pięć minut na przemycie. Rozcieńczyć jeden mikrolitr koziego przeciwciała wtórnego przeciwko myszom znakowanego FITC i jeden mikrolitr koziego przeciwciała wtórnego przeciwko królikowi psy-3 w 500 mikrolitrach PBST, aby uzyskać działający roztwór koktajlu przeciwciał drugorzędowych.
Próbki należy inkubować z przeciwciałami drugorzędowymi przez godzinę w temperaturze pokojowej w ciemności. Zdekantować roztwór i przemyć próbki trzykrotnie PBS przez pięć minut na przemycie. Dodaj 20 mikrolitrów DAPI do próbek w celu barwienia jądrowego i inkubuj je przez 30 minut w temperaturze pokojowej.
Nałóż szkiełko nakrywkowe na szkiełko i uszczelnij je lakierem do paznokci, aby zapobiec wysuszeniu i przemieszczaniu się. Zobrazuj próbki pod mikroskopem fluorescencyjnym i określ ilościowo sygnał fluorescencyjny obszaru serca za pomocą oprogramowania ImageJ. Oblicz względne zmiany przy użyciu średniej z prób kontrolnych DMSO i określ istotność statystyczną danych.
Zarodki narażone na PM 2,5 przy braku lub obecności przeciwutleniacza, N-acetylo-L-cysteiny lub NAC, oceniano pod kątem obecności wad rozwojowych serca. EOM z PM 2,5 kosztowało znaczny wzrost teratogenezy serca, takiego jak obrzęk osierdzia, zmieniona pętla i zmniejszony rozmiar, w porównaniu z sercami leczonymi DMSO. Częstość akcji serca była również znacznie zmniejszona u zarodków narażonych na EOM.
Dodanie NAC osłabiało wady serca wywołane przez EOM. Test immunofluorescencyjny zastosowano w celu oceny stopnia uszkodzenia DNA w tkankach poddanych działaniu EOM. Poziomy ekspresji 8-hydroksydeoksyguanozyny i gamma-H2AX były znacznie zwiększone w sercach zarodków danio pręgowanego leczonych EOM, co wskazuje odpowiednio na wzrost oksydacyjnych uszkodzeń DNA i pęknięć podwójnej nici DNA.
Uszkodzenia DNA wywołane przez EOM zostały częściowo zniwelowane przez suplementację NAC. Podczas korzystania z tego protokołu należy zachować ostrożność podczas mycia próbek PBS, ponieważ serce danio pręgowanego może odkleić się od szkiełka.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół wykorzystuje test immunofluorescencyjny do wykrywania uszkodzeń DNA indukowanych przez PM 2.5 w wypreparowanych sercach zarodków zebrafish. Metoda ta pozwala na dokładną detekcję ekspresji białka docelowego w sercu zebrafish.
Niniejszy protokół immunofluorescencji umożliwia mechanistyczną ocenę ryzyka toksykantów środowiskowych poprzez ilościowe określanie biomarkerów uszkodzeń DNA w sercach embrionów ryb zebrafish, które stanowią model predykcyjny dla kardiotoksyczności rozwojowej. Analiza ta wspiera procesy walidacji celów oraz przepływy pracy w przesiewaniu fenotypowym, wiążąc ekspozycję na PM2.5 ze stresem oksydacyjnym i szlakami pęknięć dwuniciowych DNA. Dostarcza ona translacyjnych danych biomarkerowych do oceny ryzyka we wczesnej fazie odkrywania, pomagając w selekcji bibliotek związków chemicznych.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków – od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, dostarczając odczytów mechanistycznych, które zwiększają pewność prognostyczną w kampaniach przesiewowych na wczesnym etapie.