22 lutego 2022
Opisujemy tutaj, założenie i zastosowanie mysiej linii reporterowej Tg(Myh6-cre)1Jmk/J /Gt(ROSA)26Sortm38(CAG-GCaMP3)Hze/J (określanej poniżej jako αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3) do oceny przeprogramowania serca. Noworodkowe fibroblasty serca (NCF) wyizolowane ze szczepu myszy są przekształcane w indukowane kardiomiocyty (iCM), co pozwala na wygodną i efektywną ocenę skuteczności przeprogramowania i funkcjonalnego dojrzewania iCM poprzez strumień wapnia (Ca2+).
Metody opisane w tym protokole będą stanowić cenną platformę do oceny funkcjonalnego dojrzewania ICM na potrzeby badań nad przeprogramowaniem serca. Strumień wapnia jest obserwowany wyłącznie w ICM i zapewnia sposób oceny dojrzałości funkcjonalnej ICM. Ten szczep myszy upraszcza procedury oceny i zwiększa odtwarzalność wyników.
Protokół ten jest nową metodą oceny funkcjonalnego dojrzewania ICM w dziedzinie przeprogramowania serca. Może być również stosowany do oceny różnicowania kardiomiocytów i funkcji serca. Zacznij od uzyskania od ośmiu do 10 młodych, szczeniąt od P0 do P2, aby wyizolować 10 milionów noworodków fibroblastów serca lub NCF.
Głęboko znieczulij szczenięta przez hipotermię. Obserwuj serca pod mikroskopem fluorescencyjnym, aby upewnić się, że serce o pożądanym genotypie wykazuje strumień wapnia, wskazywany przez GCaMP3 wraz z biciem serca. Pozostałe genotypy nie będą wykazywały fluorescencji.
Po wyizolowaniu serc pokrój je na cztery części, tak aby były luźno połączone. Umyj je dokładnie kilka razy w lodowatym roztworze soli fizjologicznej buforowanym fosforanami Dulbecco lub DPBS, na sześciocentymetrowej płytce, aby ograniczyć zanieczyszczenie krwinek w izolowanych komórkach. Trawić serca ośmioma mililitrami ciepłej 0,25% trypsyny-EDTA w 37 stopniach Celsjusza przez 10 minut.
Wyrzuć supernatant trypsyny i dodaj pięć mililitrów 0,5 miligrama na mililitr ciepłej kolagenazy typu drugiego w zrównoważonym roztworze soli Hanka. Dokładnie wymieszaj mieszaninę i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez pięć minut. Po inkubacji ponownie dokładnie wymieszaj mieszaninę i pozwól, aby niestrawiona tkanka osiadła grawitacyjnie.
Zebrać supernatant w stożkowej probówce o pojemności 15 mililitrów z pięcioma mililitrami zimnego podłoża z fibroblastów. Rozcieńczyć komórki pożywką fibroblastową tak, aby gęstość wysiewu wynosiła około dwóch do 2,5 razy 10 do czwartej komórki na centymetr sześcienny. Następnie zasiej komórki w naczyniach lub talerzach.
Przyczepione fibroblasty powinny mieć kształt od owalnego do okrągłego na drugi dzień po wysiewie. W dniu zerowym zasiaj NCF do gęstości około jednej do dwóch razy 10 do czwartej komórki na centymetr sześcienny w pożywce fibroblastowej. Pierwszego dnia należy zastąpić pożywkę hodowlaną pożywką zawierającą wirusa dla każdej studzienki, zgodnie z życzeniem.
W 2 dniu, 24 godziny po zakażeniu wirusem, należy zastąpić pożywkę zawierającą wirusa zwykłą pożywką ICM. Oceń strumień jonów wapnia za pomocą odwróconego mikroskopu fluorescencyjnego w temperaturze pokojowej. Obserwuj komórki GCaMP3 dodatnie pod obiektywem 10X, upewniając się, że pokazuje spontaniczne bicie komórek w kanale jasnego pola.
Serca o prawidłowym genotypie wykazywały strumień jonów wapnia zsynchronizowany z biciem, uwidoczniony jako fluorescencja GCaMP3. Podczas gdy nie zaobserwowano fluorescencji w sercach kontrolnych. Izolowane NCF przyczepiały się do studzienki w ciągu dwóch godzin i wykazywały owalny lub okrągły kształt jeden dzień po wysianiu.
Oscylacja jonów wapnia wykazała zmianę fluorescencji GCaMP3 między maksimum a minimum, a oscylacja jonów wapnia takich komórek zmieniała się okresowo. Po wprowadzeniu IMAP liczba klastrów dudniących była znacznie wyższa niż w grupie kontrolowanej, ponieważ liczba komórek GCaMP3 dodatnich ze strumieniem jonów wapnia dla pola o dużej mocy była zwiększona w grupie leczonej pożywką IMAP. Krajowe fks powinny być świeżo przygotowane i zdrowe po izolacji.
Szybka procedura izolacji serca, cięcia i odpowiedniego czasu trawienia może pomóc uniknąć zmniejszenia żywotności i kondycji komórek. Metoda ta umożliwia identyfikację funkcjonalnych dojrzałych ICM dla badaczy zajmujących się przeprogramowywaniem serca. Dzięki wielu dalszym metodom oceny można uzyskać bardziej zwięzłe zrozumienie funkcjonalnych dojrzałych ICM.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia nową linię myszy reporterowych, αMHC-Cre/Rosa26A-Flox-Stop-Flox-GCaMP3, służącą do oceny przeprogramowania serca. Ustanowiony protokół umożliwia ocenę indukowanych kardiomiocytów (iCMs) pochodzących z neonatalnych fibroblastów serca (NCFs) poprzez analizę przepływu jonów wapnia.
Ocena dojrzałości funkcjonalnej indukowanych kardiomiocytów pozostaje krytycznym wąskim gardłem w przeprogramowaniu serca na potrzeby terapii regeneracyjnych. Niniejszy protokół zapewnia bezpośredni, oparty na reporterze odczyt strumienia jonów wapnia, który umożliwia obiektywną ocenę dojrzałości funkcjonalnej iCM, wspierając walidację celu oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego we wczesnej fazie odkrywania leków. Poprzez powiązanie przeprogramowania transkrypcyjnego z funkcjonalnym wynikiem elektrofizjologicznym, metoda ta zwiększa pewność prognostyczną w modelach przedklinicznych i dostarcza informacji niezbędnych do podejmowania decyzji portfelowych w zakresie strategii naprawy serca.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkrywania leków – od walidacji celu, przez identyfikację związku wiodącego, aż po ocenę przedkliniczną – umożliwiając w szczególności ocenę funkcjonalną po przeprogramowaniu transkrypcyjnym, a przed walidacją in vivo.