Name: In vivo (in vivo) Kwantyfikacja artrokinematyki stawu biodrowego podczas dynamicznych czynności obciążających przy użyciu podwójnej fluoroskopii (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-07-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: Poznaj metodę kwantyfikacji artrokinematyki stawu biodrowego in vivo przy użyciu podwójnej fluoroskopii i rejestracji ruchu całego ciała. Technika ta umożliwia precyzyjne badanie biomechaniki zwyrodnienia biodra.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

To badanie było wspierane przez National Institutes of Health (NIH) w ramach grantów o numerach S10 RR026565, R21 AR063844, F32 AR067075, R01 R077636, R56 AR074416, R01 GM083925. Wyłączną odpowiedzialność za treść ponoszą autorzy i niekoniecznie reprezentują one oficjalne poglądy NIH.

Autorzy nie pozostają w konflikcie interesów.

Podwójna fluoroskopia jest potężnym narzędziem do badania kinematyki in vivo, zwłaszcza biodra, która jest trudna do dokładnego zmierzenia przy użyciu tradycyjnego optycznego przechwytywania ruchu. Jednak sprzęt do fluoroskopii jest wyspecjalizowany, w którym podczas obrazowania innych stawów ludzkiego ciała może być wymagana unikalna konfiguracja systemu. Na przykład, dokonano kilku modyfikacji w montażu wzmacniaczy obrazu, pozycjonowaniu systemu i ustawieniach energii wiązki w zastosowaniu podwójnej fluoroskop...

Liczba zabiegów całkowitej endoprotezoplastyki stawu biodrowego (THA) wykonanych na dorosłych w wieku 45-64 lat cierpiących na chorobę zwyrodnieniową stawu biodrowego (OA) wzrosła ponad dwukrotnie między 2000 a 2010 rokiem1. Opierając się na wzroście liczby zabiegów THA w latach 2000-2014, ostatnie badanie przewiduje, że ogólna liczba rocznych zabiegów może się potroić w ciągu najbliższych dwudziestu lat2. Tak duży wzrost liczby zabiegów THA jest niepokojący, biorąc pod uwagę, że obecne koszty leczenia przekraczają 18 miliardów dolarów rocznie w samych Stanach Zjednoczonych3.
Dysplazja rozwojowa stawu biodrowego (DDH) i zespół uderzenia udowo-panewkowego (FAIS), które opisują odpowiednio niedostatecznie lub nadmiernie ograniczone biodro, są uważane za główną etiologię choroby stawu biodrowego OA4. Częstość występowania tych strukturalnych deformacji stawu biodrowego u osób poddawanych THA została po raz pierwszy opisana ponad trzy dekady temu5. Mimo to związek między nieprawidłową anatomią stawu biodrowego a chorobą zwyrodnieniową stawów nie jest dobrze poznany. Jednym z wyzwań związanych z pogłębieniem praktycznego zrozumienia roli deformacji w rozwoju choroby zwyrodnieniowej stawu biodrowego jest to, że nieprawidłowa morfologia stawu biodrowego jest bardzo powszechna wśród bezobjawowych dorosłych. Warto zauważyć, że badania wykazały morfologię związaną z FAIS typu cam u około 35% populacji ogólnej6, 83% starszych sportowców7 i ponad 95% sportowców płci męskiej8. W innym badaniu przeprowadzonym na kobietach uprawiających sporty akademickie, 60% uczestniczek miało radiologiczne dowody na krzywą FAIS, a 30% miało dowody na DDH9.
Badania wykazujące wysokie rozpowszechnienie deformacji wśród osób bez bólu biodra wskazują na możliwość, że morfologia powszechnie kojarzona z FAIS i DDH może być naturalnym wariantem, który staje się objawowy tylko w określonych warunkach. Jednak interakcja między anatomią stawu biodrowego a biomechaniką stawu biodrowego nie jest dobrze poznana. Warto zauważyć, że znane są trudności z pomiarem ruchu stawu biodrowego przy użyciu tradycyjnej technologii optycznego przechwytywania ruchu. Po pierwsze, staw znajduje się stosunkowo głęboko w ciele, tak że lokalizacja środka stawu biodrowego jest trudna zarówno do zidentyfikowania, jak i dynamicznego śledzenia za pomocą optycznego przechwytywania ruchu znacznika skóry, z błędami tego samego rzędu wielkości, co promień głowy kości udowej10,11. Po drugie, staw biodrowy jest otoczony dużą masą tkanek miękkich, w tym podskórną tkanką tłuszczową i mięśniami, która porusza się względem leżącej poniżej kości, co skutkuje artefaktem tkanek miękkich12,13,14. Wreszcie, za pomocą optycznego śledzenia markerów skóry, kinematyka jest oceniana w odniesieniu do uogólnionej anatomii, a zatem nie daje wglądu w to, jak subtelne różnice morfologiczne mogą wpływać na biomechanikę stawu.
Aby rozwiązać problem braku dokładnej kinematyki w połączeniu z morfologią kości specyficzną dla danego obiektu, opracowano zarówno pojedyncze, jak i podwójne systemy fluoroskopii do analizy innych naturalnych układów stawowych15,16,17. Jednak technologia ta dopiero niedawno została zastosowana do natywnego stawu biodrowego, prawdopodobnie ze względu na trudności w uzyskiwaniu wysokiej jakości obrazów przez tkankę miękką otaczającą biodro. Metodologia dokładnego pomiaru ruchu stawu biodrowego in vivo i wyświetlania tego ruchu w odniesieniu do anatomii kości specyficznej dla danego pacjenta jest opisana w niniejszym dokumencie. Uzyskana w ten sposób artrokinematyka zapewnia niezrównaną zdolność do badania subtelnych zależności między morfologią kości a biomechaniką.
Tutaj opisano procedury pozyskiwania i przetwarzania podwójnych obrazów fluoroskopowych biodra podczas czynności życia codziennego. Ze względu na chęć uchwycenia kinematyki całego ciała z optycznym śledzeniem znaczników jednocześnie z podwójnymi obrazami fluoroskopowymi, protokół gromadzenia danych wymaga koordynacji między kilkoma źródłami danych. Kalibracja systemu podwójnej fluoroskopii wykorzystuje struktury z pleksiglasu wszczepione metalowymi kulkami, które można bezpośrednio zidentyfikować i śledzić jako markery. W przeciwieństwie do tego, dynamiczny ruch kości jest śledzony za pomocą śledzenia bez znaczników, które wykorzystuje tylko gęstość radiograficzną kości na podstawie tomografii komputerowej do określenia orientacji. Dynamiczny ruch jest następnie śledzony jednocześnie za pomocą podwójnej fluoroskopii i danych przechwytywania ruchu, które są zsynchronizowane przestrzennie i czasowo.
Systemy są synchronizowane przestrzennie podczas kalibracji poprzez równoczesne obrazowanie sześcianu zarówno z odblaskowymi znacznikami, jak i wszczepionymi metalowymi koralikami oraz generowanie wspólnego układu współrzędnych. Systemy są synchronizowane czasowo dla każdej czynności lub przechwytywania za pomocą dzielonego wyzwalacza elektronicznego, który wysyła sygnał kończący nagrywanie z dwóch kamer fluoroskopowych i przerywa stałe wejście 5 V do systemu przechwytywania ruchu. Ten skoordynowany protokół umożliwia ilościowe określenie położenia segmentów ciała, które znajdują się poza połączonym polem widzenia systemu podwójnej fluoroskopii, wyrażenie wyników kinematycznych w odniesieniu do zdarzeń znormalizowanych przez chód oraz scharakteryzowanie deformacji tkanek miękkich wokół kości udowej i miednicy.

<table><tbody><tr><td>Amira Software</td><td>ThermoFisher</td><td>Scientific Version 6.0</td><td></td></tr><tr><td>Kostka kalibracyjna</td><td></td><td>Niestandardowe</td><td>36 stalowych koralików (średnica 3 mm, rozstaw 6,35 cm, niepewność 0,0036 mm)</td></tr><tr><td>Różdżka kalibracyjna</td><td>Vicon</td><td>Active Wand</td><td></td></tr><tr><td>CT Skaner</td><td>Siemens AG</td><td>SOMATOM Definition 128 CT</td><td></td></tr><tr><td>Siatka</td><td></td> korekcji zniekształceń <td>Niestandardowa</td><td>Płyta akrylowa z siatką stalowych koralików w rozstawie 10 mm i 31 koralikami w poprzek średnicy (średnica 2 mm)</td></tr><tr><td>Dynamiczna płytka</td><td></td> kalibracyjna <td>Niestandardowa</td><td>płyta akrylowa z 3 stalowymi koralikami w odstępach 30 mm (średnica 2 mm, niepewność 0,0013 mm)</td></tr><tr><td>Emiter (2)</td><td>Varian Interay; regenerowany przez Radiological Imaging Services</td><td>Obudowa B-100/Rurka A-142</td><td></td></tr><tr><td>Epinefryna</td><td>Hospira</td><td>do wstrzykiwań, USP 10 mg/ml</td><td></td></tr><tr><td>Oprogramowanie FEBioStudio</td><td>FEBio.org</td><td>wersja 1.3</td><td>Przetwarzanie siatki i wizualizacja kinematyczna</td></tr><tr><td>Procesor graficzny</td><td>Nvidia</td><td>Tesla</td><td></td></tr><tr><td>Hare Traction Splint</td><td>DynaMed</td><td>Trac-III, model nr 95201</td><td></td></tr><tr><td>Szybka kamera (2)</td><td>Vision Research, Inc.</td><td>Wzmacniacz obrazu Phantom Micro 3</td><td></td></tr><tr><td>(2)</td><td>Dunlee, Inc.; regenerowany przez Radiological Imaging Services</td><td>T12964P/S</td><td></td></tr><tr><td>Iohexol do wstrzykiwań</td><td>GE Healthcare</td><td>Omnipaque 240 mgI/ml</td><td>517,7 mg joheksolu, 1,21 mg trometaminy, 0,1 mg wersenianu disodu wapnia na ml</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>National Institutes of Health and Laboratory for Optical and Computational Instrumentation (Narodowe Instytuty Zdrowia i Laboratorium Oprzyrządowania Optycznego i Obliczeniowego)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lidokaina HCl</td><td>Hospira</td><td>Injection, USP 10 mg / mL</td><td></td></tr><tr><td>Laser i system</td><td></td> wyrównywania luster <td>Niestandardowe</td><td>Trzy lasery przyklejone do akrylowej płyty, która mocuje się do emitera, lustro mocuje się do powierzchni wzmacniacza obrazu</td></tr><tr><td>Markless Tracking Workbench</td> Henry <td>Ford Hospital, niestandardowe</td><td></td> oprogramowanie <td></td></tr><tr><td>MATLAB</td><td>Mathworks, Inc.</td><td>Wersja R2017b</td><td></td></tr><tr><td>Kamera do przechwytywania ruchu (10)</td><td>Vicon</td><td>Vantage</td><td></td></tr><tr><td>Nexus Software</td><td>Vicon</td><td>Wersja 2.8</td><td>Oprogramowanie do przechwytywania ruchu</td></tr><tr><td>Phantom Camera Control (PCC)</td><td>Vision Research, Inc.</td><td>Wersja 1.3</td><td></td></tr><tr><td>Klej w sprayu przed taśmą</td><td>Mueller Sport Care</td><td>Tuffner</td><td></td></tr><tr><td>Retrorefleksyjne sferyczne markery</td><td></td><td></td> skóry <td>14 mm</td></tr><tr><td>Dzielony pas W pełni oprzyrządowana bieżnia</td><td>Bertec Corporation</td><td>Custom</td><td></td></tr><tr><td>Visual3D Software</td><td>C-Motion Inc.</td><td>Wersja 6.01</td><td>Przetwarzanie kinematyczne</td></tr></tbody></table>

in vivo (in vivo) kwantyfikacja artrokinematyki stawu biodrowego podczas dynamicznych czynności obciążających przy użyciu podwójnej fluoroskopii

In Vivo Quantification of Hip Arthrokinematics during Dynamic Weight-bearing Activities using Dual Fluoroscopy

Kilka patologii stawu biodrowego zostało przypisanych nieprawidłowej morfologii z podstawowym założeniem o nieprawidłowej biomechanice. Jednak zależności struktura-funkcja na poziomie stawów pozostają trudne do ilościowego określenia ze względu na trudności w dokładnym pomiarze dynamicznego ruchu stawów. Błędy artefaktów tkanek miękkich nieodłącznie związane z optycznym przechwytywaniem ruchu markerów skórnych są nasilane przez głębokość stawu biodrowego w ciele i dużą masę tkanki miękkiej otaczającej staw. W związku z tym złożona zależność między kształtem kości a kinematyką stawu biodrowego jest trudniejsza do dokładnego zbadania niż w innych stawach. W niniejszym artykule przedstawiono protokół obejmujący artrografię tomografii komputerowej (CT), trójwymiarową (3D) rekonstrukcję obrazów wolumetrycznych, podwójną fluoroskopię i optyczne przechwytywanie ruchu w celu dokładnego pomiaru dynamicznego ruchu stawu biodrowego. Podsumowano badania techniczne i kliniczne, w których zastosowano podwójną fluoroskopię do badania zależności kształt-funkcja stawu biodrowego przy użyciu tego protokołu, a także opisano konkretne kroki i przyszłe rozważania dotyczące pozyskiwania, przetwarzania i analizy danych.

Wykorzystując podwójną fluoroskopię jako standard referencyjny, określono dokładność szacowania położenia centrum stawu biodrowego na podstawie markerów skórnych oraz wpływ artefaktu tkanek miękkich na pomiary kinetyczne i kinematyczne22,23,24. Wyższa dokładność podwójnej fluoroskopii została następnie wykorzystana do zidentyfikowania subtelnych różnic w kinematyce miednicy i stawu biodrowego pomiędzy pacjentami z FAIS a bezobja...

Podwójna fluoroskopia dokładnie rejestruje in vivo dynamiczny ruch ludzkich stawów, który można zobrazować w odniesieniu do zrekonstruowanej anatomii (np. artrokinematyki). W niniejszym artykule przedstawiono szczegółowy protokół ilościowego określania artrokinematyki stawu biodrowego podczas czynności związanych z obciążeniem w życiu codziennym, w tym integrację podwójnej fluoroskopii z tradycyjnym przechwytywaniem ruchu markera skórnego.

In vivo (in vivo) Kwantyfikacja artrokinematyki stawu biodrowego podczas dynamicznych czynności obciążających przy użyciu podwójnej fluoroskopii

Several hip pathologies have been attributed to abnormal morphology with an underlying assumption of aberrant biomechanics. However, structure-function ...

Protokół ten łączy pomiar kinematyki stawu biodrowego in vivo z przechwytywaniem ruchu całego ciała, aby utracić stan roli biomechaniki w zwyrodnieniu stawu biodrowego. W porównaniu z tradycyjnymi metodami śledzenia ruchu bioder, podwójna fluoroskopia ma lepszą dokładność, co pozwala na badanie subtelnego związku między kształtem bioder a wzorcami ruchu. W przypadku ćwiczeń obrotowych poproś uczestnika, aby obrócił lub przesunął stopy tak, aby miednica była skierowana do przodu na bieżni.A biodro będące przedmiotem zainteresowania znajduje się w środku połączonego pola widzenia na fluoroskopach na końcu osi. Po zoptymalizowaniu pozycji poproś uczestnika o wykonanie obrotu podczas podwójnego obrazowania fluoroskopowego. I zapisz wszystkie klatki, w których kość udowa i miednica są widoczne w obu widokach z kamery fluoroskopowej.Uchwycenie jak największej części osi. O ćwiczeniach chodu poinformuj uczestnika przed uruchomieniem pasa bieżni. Zwiększ prędkość bieżni do odpowiedniej prędkości chodzenia.I pozwól uczestnikom normalnie chodzić przed zebraniem obrazów. W przypadku nachylonego chodu poproś uczestników, aby zeszli z bieżni. Odblokuj bieżnię, ustaw nachylenie na pięć stopni i ponownie uruchom bieżnię.Zanim uczestnik wróci na bieżnię, aby wykonać ćwiczenie. W przypadku czynności przywodzenia do odwodzenia, poproś uczestnika, aby stanął w polu widzenia fluoroskopów. I podnieś interesującą Cię nogę o około 45 stopni w górę i na bok, nie poruszając tułowiem.W przypadku dynamicznej aktywności centrum stawu biodrowego lub łuku gwiaździstego, poproś uczestnika, aby stanął w polu widzenia systemu podwójnej fluoroskopii i unił, a następnie opuścił nogę do przodu w krokach co 45 stopni do 180 stopni. Zanim położysz nogę z powrotem na ziemi, poproś uczestnika, aby objął nogę i powrócił do pozycji stojącej. W celu umieszczenia markera nałóż klej w sprayu na stronę skóry paska z tkaniny każdej z pięciu płytek znacznikowych.I owiń je szczelnie wokół uczestnika. Sprawdź z uczestnikiem, czy paski są napięte, ale nie są niewygodne. Następnie umieść płytki znacznikowe na paskach tkaniny.Po umyciu rąk w celu usunięcia nadmiaru kleju w sprayu i założeniu rękawiczek w celu ochrony markerów, nałóż pięć markerów używanych wyłącznie do kalibracji na obojczyk, przyśrodkowe kolana i kostkę przyśrodkową. Następnie nałóż 16 markerów do śledzenia do górnych kolców biodrowych, tylnych górnych kolców biodrowych, krętarza większego obrazowanej kości udowej, ramion, mostka, kolan bocznych, kostki bocznej i stóp. Aby zidentyfikować punkt orientacyjny układu współrzędnych, otwórz bliższą część kości udowej jako plik modelu, a następnie otwórz pasek narzędzi słupka i panel danych, aby dodać standardowe pole krzywizny pierwszej zasady.Wybierz gładkość równą 10 i kliknij przycisk Zastosuj. Następnie wybierz powierzchnie głowy kości udowej. W panelu edycji kliknij opcję Wybierz zakres, aby uwzględnić tylko krzywiznę ujemną.Określ środek głowy kości udowej za pomocą tego narzędzia do dopasowania kuli z narzędzia pomiarowego. Wyeksportuj tę powierzchnię głowy kości udowej jako siatkę powierzchniową w formacie k. Podobnie zastosuj pierwszą zasadę krzywizny do dystalnej kości udowej za pomocą łyżki, która ma pięć.Kliknij ponownie opcję Wybierz zakres, aby uwzględnić tylko ściany o ujemnej krzywiźnie. Eksportuj tę powierzchnię kłykcia kości udowej w celu dopasowania cylindra, aby określić przyśrodkową oś boczną. Następnie zastosuj drugą zasadę krzywizny do dystalnej kości udowej, stosując gładkość trzech.Podświetl grzbiety nadkłykcia i kliknij wybierz zakres. Zastosowanie górnej granicy ujemnej 0,1. Wyeksportuj te ściany, aby wygenerować płaszczyznę i użyć jej do wyizolowania powierzchni kłykcia tylnego dla pasowania cylindra.Aby śledzić bez znaczników, wybierz klatkę w żądanym zakresie z dobrą wizualizacją kości. Ręcznie ustaw cyfrowo zrekonstruowany radiogram kości będącej przedmiotem zainteresowania na podstawie tomografii komputerowej, korzystając z sześciu stopni swobody dostępnych w oprogramowaniu. Gdy cyfrowo zrekonstruowany radiogram kości okaże się dobrze wyrównany w obu widokach, zapisz rozwiązanie, klikając przycisk ręczny w panelu rozwiązań.Następnie w panelu rozwiązań kliknij przycisk DHS, aby zastosować krok optymalizacji wyszukiwania po przekątnej i przejrzeć wynik. Jeśli preferowany jest zoptymalizowany wynik, przejdź do następnej klatki, w przeciwnym razie wprowadź niezbędne poprawki i zapisz ponownie, klikając przycisk ręczny w panelu rozwiązań. Aby zakończyć pierwszy przebieg śledzenia, użyj przycisku zakresu LP i DHS w panelu rozwiązań.W oknie wprowadź zestaw ramek, które mają być śledzone, oraz dwie ramki, które mają być używane jako odniesienie. Przejrzyj i dopracuj każdą klatkę próby, korzystając zarówno z rozwiązań ręcznych, jak i opartych na DHS. Użyj wykresu parametrów, aby upewnić się, że współczynnik korelacji jest wystarczająco wysoki i że orientacja kości nie ma nagłych skoków w żadnym parametrze.Aby zobrazować ruch, otwórz powierzchnię kości udowej i miednicy w oprogramowaniu w celu wizualizacji kinematycznej. W razie potrzeby za pomocą funkcji konwertuj na siatkę przekształć powierzchnie w siatki. Wybierz obie powierzchnie i wyeksportuj je jako siatkę powierzchniową w formacie k.Korzystając z danych wyjściowych śledzenia, wygeneruj plik tekstowy z transformacjami współrzędnych dla każdej kości i klatki. Następnie za pomocą narzędzia kinematycznego oraz wygenerowanych wcześniej plików siatkowych i tekstowych animujemy kinematykę. Używając półprzezroczystej powierzchni, sprawdź, czy animowana kinematyka wygląda rozsądnie.Alternatywnie, korzystając z narzędzia odległości powierzchni, uruchom animowaną kinematykę i sprawdź, czy powierzchnie mają odpowiednią odległość między nimi. Pokazano tutaj kinematykę dla 100 klatek otaczających maksymalny obrót zewnętrznych i wewnętrznych osi obrotu dla reprezentatywnego uczestnika. Ten rysunek przedstawia pomiar odległości powierzchniowej między lewą miednicą hemi a kością udową.Przy maksymalnej rotacji rotacji zewnętrznej i wewnętrznej obróć się względem modeli kostnych za pomocą podwójnej fluoroskopii. Dbałość o szczegóły jest ważna dla dokładnego śledzenia artrokinematyki. Bardzo ważne jest, aby każdy etap gromadzenia i przetwarzania danych odbywał się w sposób celowy.

in-vivo-quantification-hip-arthrokinematics-during-dynamic-weight

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

W tym badaniu omówione zostanie użycie urządzenia do ładowania in situ w połączeniu z mikro-rentgenowską tomografią komputerową do biomechaniki stawów włóknistych. Odczyty doświadczalne identyfikujące się z ogólną zmianą biomechaniki stawów będą obejmowały: 1) siłę reakcyjną w funkcji przemieszczenia, tj. przemieszczenie zęba w obrębie zębodołu i jego reakcję reakcyjną na obciążenie, 2) trójwymiarową (3D) konfigurację przestrzenną i morfometrię, tj. zależność geometryczną zęba względem zębodołu...

In situ Obciążenie kompresyjne i korelacyjne nieinwazyjne obrazowanie stawu włóknistego kość-więzadło przyzębia-ząb

Połączone obrazowanie optyczne i μCT w mysim modelu infekcji implantu ortopedycznego, wykorzystujące bioluminescencyjny zmodyfikowany szczep Staphylococcus aureus, zapewniło możliwość nieinwazyjnego i podłużnego monitorowania dynamiki infekcji bakteryjnej, jak również odpowiadającej jej reakcji zapalnej i zmian anatomicznych w kości.

Połączone obrazowanie optyczne in vivo i μCT w celu monitorowania infekcji, stanu zapalnego i anatomii kości w zakażeniu implantu ortopedycznego u myszy

Izolowane napięcie mięśnia brzuchatego łydki jest częstą przyczyną patologii stóp i kostek. Obecnie nie istnieje ustandaryzowana procedura egzaminacyjna. Manuskrypt ten pokazuje, że 20-stopniowe zgięcie kolana eliminuje ograniczający wpływ M. gastrocnemius na zgięcie grzbietowe kostki i przedstawia wideoopis standardowego protokołu badania.

Diagnostyka ucisku mięśnia brzuchatego łydki - kluczowe czynniki w badaniu klinicznym

Podczas lądowania, kości dolnej części ciała doświadczają dużych obciążeń mechanicznych i są zdeformowane. Pomiar deformacji kości jest niezbędny, aby lepiej zrozumieć mechanizmy urazów spowodowanych stresem kostnym związanych z uderzeniami. Nowatorskie podejście łączące modelowanie układu mięśniowo-szkieletowego specyficzne dla danego tematu i analizę elementów skończonych służy do pomiaru obciążenia kości piszczelowej podczas ruchów dynamicznych.

Tematyczny model mięśniowo-szkieletowy do badania naprężeń kości podczas ruchu dynamicznego

Monitorowanie sportowców jest niezbędne do poprawy wyników i zmniejszenia ryzyka kontuzji w sportach zespołowych. Obecne metody monitorowania sportowców nie obejmują kończyn dolnych. Przymocowanie wielu inercyjnych jednostek pomiarowych do kończyn dolnych może poprawić monitorowanie sportowców w terenie.

Metoda oparta na inercyjnej jednostce miary do oceny kinematyki stawów biodrowych i kolanowych u sportowców sportów zespołowych na boisku

Wideoradiografia dwupłaszczyznowa może określić ilościowo kinematykę barku z dużą dokładnością. Opisany w niniejszym dokumencie protokół został specjalnie zaprojektowany do śledzenia łopatki, kości ramiennej i żeber podczas płaskiego uniesienia kości ramiennej i określa procedury gromadzenia, przetwarzania i analizy danych. Opisano również unikatowe zagadnienia dotyczące zbierania danych.

Pomiar kinematyki barku in vivo in vivo za pomocą wideoradiografii dwupłaszczyznowej

Ten protokół przedstawia badanie zwłok bezprzewodowego czujnika używanego w przyśrodkowej jednoprzedziałowej endoprotezoplastyce stawu kolanowego. Protokół obejmuje instalację urządzenia do pomiaru kąta, standaryzowaną osteotomię jednoprzedziałowej endoprotezoplastyki stawu kolanowego w Oksfordzie, wstępną ocenę równowagi między zgięciem a wyprostem oraz zastosowanie czujnika do pomiaru ciśnienia w szczelinie zgięciowo-prostnej.

In vitro Zastosowanie czujnika bezprzewodowego w równowadze szczeliny zgięciowo-wyprostnej w jednoprzedziałowej endoprotezoplastyce stawu kolanowego

Nieinwazyjne uszkodzenie ACL jest niezawodną i klinicznie istotną metodą inicjowania pourazowej choroby zwyrodnieniowej stawów (PTOA) u myszy. Ta metoda uszkodzeń pozwala również na ilościowe określenie in vivo aktywności proteazy w stawie we wczesnych punktach po urazie przy użyciu aktywowanych proteazą sond bliskiej podczerwieni i fluorescencyjnego obrazowania odbicia.

Nieinwazyjne uszkodzenie więzadła krzyżowego przedniego (ACL) wywołane kompresją i obrazowanie in vivo aktywności proteazy u myszy

W niniejszej pracy opisujemy metody konstruowania, wizualizacji i kwantyfikacji reakcji bioluminescencyjnych enzymów lucyferazy świetlikowej oraz renilla, wykazujących ekspresję w komórkach przerzutowego raka piersi podczas ich wzrostu i przerzutowania in vivo.

In vivo dwusubstratowe obrazowanie bioluminescencyjne

Opisujemy ogólny protokół śledzenia komórek in vivo za pomocą MRI w modelu mysim z komórkami oznaczonymi ex vivo. Dołączony jest typowy protokół do znakowania komórek, przetwarzania akwizycji obrazu i kwantyfikacji.

Rezonans magnetyczny in vivo 19F do śledzenia komórek

Poznaj metodę kwantyfikacji artrokinematyki stawu biodrowego in vivo przy użyciu podwójnej fluoroskopii i rejestracji ruchu całego ciała. Technika ta umożliwia precyzyjne badanie biomechaniki zwyrodnienia biodra.

In vivo (in vivo) Kwantyfikacja artrokinematyki stawu biodrowego podczas dynamicznych czynności obciążających przy użyciu podwójnej fluoroskopii (Wideo) | JoVE Journal

In vivo (in vivo) Kwantyfikacja artrokinematyki stawu biodrowego podczas dynamicznych czynności obciążających przy użyciu podwójnej fluoroskopii

Przeglądaj więcej filmów