22 marca 2022
Metody produkcji nanocząsteczek lipidowych (LNP) oparte na mikroprzepływach przyciągnęły uwagę w systemach dostarczania leków (DDS), w tym w dostarczaniu RNA. Protokół ten opisuje procesy wytwarzania, produkcji LNP (LNP ładowanego siRNA) i oceny LNP przy użyciu naszego oryginalnego urządzenia mikroprzepływowego o nazwie iLiNP.
Wielkość nanocząstek lipidów wpływa na biodystrybucję, działanie przeciwnowotworowe i wyciszanie genów. W związku z tym metoda kontroli wielkości LNP jest skuteczną techniką wytwarzania nanoleków, w tym systemów dostarczania RNA. To oryginalne urządzenie mikroprzepływowe, nazwane urządzeniem iLiNP, było w stanie kontrolować rozmiar LNP w zakresie od 20 do 100 nanometrów w odstępach 10 nanometrów.
Urządzenie iLiNP może wytwarzać nie tylko LNP załadowane siRNA, ale także wszystkie LNP załadowane mRNA i LNP załadowane rybonukleoproteiną. Na początek weź roztwory etanolu lipidowego i wytwórz LNP naładowane siRNA, mieszając roztwory DOTAP, DSPC, cholesterolu i DMG-PEG2k w stosunku molowym od 50 do 10 do 38,5 do 1,5. Dostosuj całkowite stężenie lipidów do ośmiu milimolów.
Następnie pobrać wodne roztwory 154 milimolowego roztworu soli fizjologicznej i 25 milimolowego buforu octanowego o pH 4 i przefiltrować je przez filtry membranowe 0,2 mikrometra lub filtry strzykawkowe. Przygotować roztwór buforowy siRNA, rozpuszczając 70 mikrogramów siGL4 w jednym mililitrze 25-milimolowego buforu octanu. Napełnij jednomililitrowe szklane strzykawki odpowiednio roztworami lipidowymi i wodnymi.
Podłączyć szklane strzykawki do kapilary pikowej za pomocą łączników strzykawkowych, następnie ustawić natężenie przepływu roztworów lipidowych i wodnych i wprowadzić roztwory lipidowe i wodne oddzielnie do urządzenia iLiNP za pomocą pomp strzykawkowych. Zebrać zawiesiny LNP w mikroprobówce z wylotu urządzenia iLiNP. Zawiesinę LNP należy dializować za pomocą membrany dializacyjnej o masie cząsteczkowej od 12 do 14 kilodaltonów przy czterech stopniach Celsjusza przez noc w stosunku do soli fizjologicznej lub DPBS odpowiednio dla POPC LNP i LNP obciążonych siRNA.
Zebrać dializowane zawiesiny LNP w mikroprobówkach, a następnie odpipetować od 20 do 30 mikrolitrów zawiesiny LNP do mikroogniwa kwarcowego. Na koniec zmierz rozmiar LNP, rozkład wielkości LNP i wskaźnik dyspersyjności poli za pomocą dynamicznego rozpraszania światła. Rozkład wielkości POPC LNP wytwarzany w różnych warunkach przepływu, taki jak całkowite natężenie przepływu i współczynniki natężenia przepływu, jest pokazany tutaj.
Za pomocą tego urządzenia iLiNP można kontrolować precyzyjne rozmiary LNP w zakresie od 20 do 100 nanometrów. LNP o małych rozmiarach powstają w warunkach dużego całkowitego natężenia przepływu. Ponadto rozmiary LNP, które są formowane przy FRR 5, są mniejsze niż te z FRR 3, niezależnie od całkowitego natężenia przepływu.
Rozkład wielkości LNP załadowanych siRNA jest pokazany tutaj. siRNA są zamykane w LNP przez oddziaływanie elektrostatyczne między kationowym lipidem DOTAP a ujemnie naładowanymi siRNA. Urządzenie iLiNP wyprodukowało kationowe LNP o długości 90 nanometrów i wąskim rozkładzie naładowane siRNA.
Skuteczność enkapsulacji siRNA wyniosła 95% ze względu na oddziaływanie elektrostatyczne między lipidem kationowym a ujemnie naładowanymi siRNA. Oceniono cytotoksyczność i aktywność wyciszania genów LNP obciążonych siRNA o długości 19 nanometrów. LNP załadowane siRNA wykazywały cytotoksyczność przy dawce od 10 do 100 nanomolowych siRNA.
Poziom ekspresji lucyferazy był zmniejszony w zależności od stężenia siRNA. LNP załadowane siRNA hamowały 80% ekspresję lucyferazy w dawce 100 nanomolowych siRNA. Optymalizacje warunków przepływu są najważniejszymi krokami w protokole w celu uzyskania pożądanych rozmiarów LNP.
Metoda produkcji LNP oparta na mikroprzepływach, w tym urządzenie iLiNP, nie wymaga żadnej skomplikowanej procedury i oczekuje się, że będzie stosowana jako standardowa metoda produkcji LNP.
Niniejszy artykuł przedstawia protokół produkcji nanocząsteczek lipidowych (LNP) obciążonych siRNA z wykorzystaniem urządzenia mikroprzepływowego o nazwie iLiNP. Metoda ta pozwala na precyzyjną kontrolę rozmiaru LNP, co ma kluczowe znaczenie dla efektywnych systemów dostarczania leków.
Precyzyjna kontrola rozmiaru nanocząsteczek lipidowych (LNP) jest kluczowa dla optymalizacji biodystrybucji, skuteczności terapeutycznej oraz wydajności wyciszania genów w systemach dostarczania leków opartych na RNA. Mikroprzepływowe urządzenie iLiNP umożliwia powtarzalną produkcję LNP o regulowanym rozmiarze od 20 do 100 nanometrów, wspierając wczesne etapy weryfikacji celów terapeutycznych oraz procesy identyfikacji wiodących cząsteczek. Możliwość ta zwiększa wiarygodność prognostyczną w modelach przedklinicznych poprzez redukcję zmienności w działaniu nanocząsteczek, co stanowi kluczowy czynnik w ograniczaniu ryzyka podczas rozwoju translacyjnego.
Mikrofluidyczna metoda iLiNP wpisuje się w proces badawczy, obejmujący etapy od wczesnej walidacji celu, poprzez identyfikację związku wiodącego, aż po rozwój przedkliniczny, co jest szczególnie istotne w przypadku terapeutyków opartych na RNA, gdzie zależność dostarczania od rozmiaru wpływa na skuteczność.