21 września 2021
Tutaj prezentujemy protokół oceny neuroprotekcyjnych aktywności testowych związków u Caenorhabditis elegans, w tym agregacji poliglutaminy, śmierci neuronów i zachowania chemounikania, a także przykładowej integracji wielu fenotypów.
Jako potężny model zwierzęcy w badaniach neurodegeneracyjnych i behawioralnych, C.elegans może być używany do skutecznego badania przesiewowego i oceny toksycznych związków pod kątem neurotoksyczności poliglutaminy przy użyciu modeli podobnych do choroby Huntingtona. Główną zaletą tej techniki jest profilowanie i integracja wielu fenotypów w różnych modelach C.elegans. W tej metodzie stosuje się również modele C.elegans.
Ma to wpływ na badania przesiewowe i badanie kandydatów terapeutycznych na inne opóźnienia neurodegeneracyjne, a nawet inne opóźnienia. Proszę zwrócić uwagę na temperatury stosowane w hodowli C.elegans i wykonać test w odpowiednich stadiach rozwoju namowego. Procedurę zademonstrują Jiang Yiyi, Xioa Yue i Wang Qiangqiang, trzej doktoranci.
Zacznij od przeniesienia 300 do 500 zsynchronizowanych larw L1 nicieni AM141 do każdej studzienki 48-dołkowej płytki z 500 mikrolitrami pożywki S zawierającej szczep OP50 E. coli i pięć miligramów na mililitr astragalanu. Uszczelnij płytkę parafilmem i inkubuj w temperaturze 20 stopni Celsjusza i 120 obrotów na minutę w żądanych odstępach czasu. Przenieś nicienie do sterylnej probówki mikrowirówkowej o pojemności 1,5 mililitra i trzykrotnie przemyj buforem M9 przez odwirowanie w celu usunięcia pozostałych komórek OP50.
Następnie ponownie zawiesić nicienie AM141 w buforze M9. Teraz przenieś 10 do 15 nicieni do każdej studzienki na płytce 384-dołkowej, ustawiając 10 powtórzonych dołków dla każdego zabiegu i dodaj 10 mikrolitrów 200-milimolowego azydku sodu do każdej studzienki, aby sparaliżować nicienie, pozwalając im osiąść na dnie. Umieść płytkę w systemie obrazowania o wysokiej zawartości, aby uzyskać obrazy fluorescencyjne.
Otwórz oprogramowanie do akwizycji obrazu i ustaw parametry wymienione w manuskrypcie tekstowym. Przeanalizuj dane obrazu, otwierając okno danych płytki przeglądowej i wybierając płytkę testową do analizy obrazu. Kliknij dwukrotnie na studnię testową, aby wyświetlić jej obraz.
Następnie wybierz zliczanie jąder jako metodę analizy i kliknij przycisk konfiguracji ustawień. Zdefiniuj obraz źródłowy z kanału FITC i wybierz standardowy algorytm. Ustaw parametry analizy obrazu zgodnie z opisem w manuskrypcie tekstowym i przetestuj je, aby zoptymalizować metodę analizy.
Zapisz ustawienia i uruchom analizę na wszystkich odwiertach. Eksportuj łączną liczbę jąder jako całkowitą liczbę agregatów Q40:YFP w każdym dołku. Policz liczbę nicieni w każdym dołku i oblicz średnią liczbę agregatów Q40:YFP na nicienie w każdej grupie.
Następnie oblicz wskaźnik inhibicji. Aby przygotować nicienie do testu neurotoksyczności polyQ, przenieś 300 do 500 zsynchronizowanych larw L1 nicieni HA759 do każdej studzienki 48-dołkowej płytki z 500 mikrolitrami pożywki S zawierającej szczep OP50 E. coli i pięć miligramów na mililitr astragalanu. Po uszczelnieniu płytek należy inkubować, zbierać i ponownie zawieszać nicienie w buforze M9, jak pokazano wcześniej.
Teraz przygotuj w podkładce z agarozą, dodając dwa gramy agarozy do 100 mililitrów buforu M9 i podgrzej roztwór w kuchence mikrofalowej do prawie wrzenia. Dozuj 0,5 mililitra stopionej agarozy na środek szkiełka mikroskopowego o grubości jednego milimetra umieszczonego między dwoma kawałkami szklanych płytek o grubości dwóch milimetrów, przykrywając pionowo innym szkiełkiem. Delikatnie zdejmij górne szkiełko, gdy agaroza ostygnie i zastygnie.
Rozpocznij test przeżycia neuronów ASH, dodając kroplę 20-milimolowego azydku sodu do podkładki agros, a następnie przenosząc 15 do 20 nicieni HA759 do kropli, aby je unieruchomić. Delikatnie nałóż szkiełko nakrywkowe na nicienie. Teraz trzymaj szkiełko pod mikroskopem fluorescencyjnym wyposażonym w kamerę cyfrową.
Wybierz soczewkę obiektywu 40x i filtr FITC, aby wykryć neurony ASH GFP dodatnie w obszarze głowy nicieni. Wybierz losowo ponad 50 nicieni w każdej grupie, aby policzyć liczbę nicieni z obustronnymi neuronami ASH znakowanymi GFP w regionie głowy, a następnie obliczyć wskaźnik przeżycia neuronów ASH. W celu przeprowadzenia testu unikania osmotycznego podziel bezżywnościową płytkę NGM na strefy normalne i pułapkowe, tworząc ośmiomolową linię glicerolu pośrodku.
Następnie rozprowadź 200-milimolową linię azydku sodu w odległości około jednego centymetra od linii glicerolu, aby sparaliżować nicienie przechodzące przez barierę glicerolową do strefy pułapki. Przenieś około 200 nicieni każdy do normalnej strefy trzech powtórzonych płytek dla każdej grupy. Następnie dodaj kroplę 1% butanodionu do strefy pułapki, aby przyciągnąć nicienie.
Natychmiast przykryć pokrywkę szalki Petriego i inkubować w temperaturze 23 stopni Celsjusza przez 90 minut. Oceń liczbę nicieni w obu strefach pod mikroskopem i oblicz wskaźnik unikania. Transgeniczny szczep polyQ AM141 silnie eksprymuje białka fuzyjne Q40:YFP w komórkach mięśniowych ściany ciała, zidentyfikowanych przez ten zautomatyzowany protokół obrazowania i analizy, których rosnąca ilość została zahamowana przez leczenie tragankiem, wykazując jego potencjał ochronny.
Utrata fluorescencji GFP i obustronnych neuronów ASH w obszarach głowy nicieni wskazuje na śmierć neuronów ASH. Ten test przeżycia neuronów ASH może być wykorzystany do wizualnej oceny neuroprotekcyjnego wpływu badanych związków na neurony elegancji Caenorhabditis. Test unikania chemosensorycznego został wykorzystany do zbadania skutecznych próbek testowych dotyczących funkcjonalnej utraty neuronów ASH, w której pośredniczy agregacja polyQ.
Wskaźnik unikania nicieni HA759 leczonych astragalanem w temperaturze 15 stopni Celsjusza przez trzy dni wzrósł do ponad 0,6, wykazując neuroprotekcyjne działanie polisacharydu przeciwko zaburzeniom zachowania. W celu oceny ogólnej zdolności neuroprotekcyjnej badanych związków, dane z poszczególnych testów zostały zintegrowane i przedstawione w postaci wykresu radarowego pokazującego obszar trójkąta w grupie leczonej astragalanem większy niż w grupie kontrolnej, wskazując na działanie anty-polyQ polisacharydu. Należy pamiętać, że żywność, temperatura i wilgotność mogą wpływać na zachowanie C.elegans.
Niniejsze badanie przedstawia protokół wykorzystujący Caenorhabditis elegans do oceny aktywności neuroprotekcyjnej związków w odniesieniu do agregacji poliglutaminy i śmierci neuronów. Poprzez integrację wielu fenotypów, badanie ilościowo ocenia efekty neuroprotekcyjne badanych związków w zakresie zachowania oraz integralności neuronów.
Niniejszy protokół umożliwia wczesną walidację celu oraz redukcję ryzyka mechanistycznego w badaniach nad neurodegeneracją indukowaną przez poliglutaminę poprzez integrację odczytów fenotypowych w zakresie agregacji komórkowej, przeżywalności neuronów i funkcji behawioralnych w skalowalnym modelu bezkręgowców. Podejście to zwiększa wiarygodność prognostyczną w identyfikacji wiodących cząsteczek poprzez korelację inhibicji molekularnej z funkcjonalnym ratowaniem fenotypu, co wspiera selekcję projektów w programach badawczych nad chorobami neurodegeneracyjnymi. Integracja wieloparametrowych danych za pomocą wykresów radarowych ułatwia międzyfunkcyjne porównanie skuteczności związków, przyspieszając podejmowanie decyzji go/no-go w procesach odkrywania leków.
Opisana metoda pozycjonuje ocenę związków w obrębie kontinuum procesu odkrywania leków – od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, gdzie profilowanie wielofenotypowe dostarcza informacji zarówno na temat pewności co do wybranego celu, jak i wartości prognostycznej przed podjęciem inwestycji w badaniach przedklinicznych.