25 lutego 2022
Obecny protokół optymalizuje metody perfuzji/decelularyzacji wątroby in situ i mikroskopii dwufotonowej w celu stworzenia niezawodnej platformy do wizualizacji dynamiki przebudowy macierzy zewnątrzkomórkowej (ECM) podczas niealkoholowego stłuszczeniowego zapalenia wątroby (NASH).
NASH jest jedną z najważniejszych przewlekłych chorób wątroby na świecie. Może przejść do zwłóknienia, marskości wątroby i ostatecznie raka wątroby. Badanie dynamicznej zmiany ECM w NASH może pomóc w lepszym zrozumieniu zwłóknienia.
Tradycyjne obrazowanie nie może wykazać zmian w strukturze 3D ECM, co ogranicza zrozumienie dynamicznego procesu przebudowy ECM w zwłóknieniu wątroby. Aby rozpocząć, zważ mysz przed zabiegiem. Po znieczuleniu myszy należy ogolić okolicę brzuszną za pomocą maszynki do strzyżenia włosów i zdezynfekować skórę 70% etanolem.
Połóż mysz na plecach i unieruchamij nogi na tablicy operacyjnej za pomocą taśmy. Użyj nożyczek Mayo i kleszczy Adson, aby wykonać trzycentymetrowe nacięcie boczne w dolnej części brzucha. A następnie pięciocentymetrowe nacięcie pionowo od dolnej części brzucha do wyrostka mieczykowatego bez otwierania jamy klatki piersiowej.
Po otwarciu otrzewnej delikatnie umieść jelita po lewej stronie zwierzęcia i podnieś prawy płat wątroby za pomocą aplikatora zakończonego sztucznym jedwabiem, aby odsłonić żyłę wrotną. Aby cewnikować żyłę wrotną, należy wprowadzić cewnik dożylny o rozmiarze 24 do dystalnego końca żyły wrotnej. Umieść końcówkę cewnika, zanim żyła wrotna rozgałęzi się do płatów wątroby.
Wyjmij igłę natychmiast po wprowadzeniu cewnika do żyły. Sprawdź, czy cewnik jest prawidłowo umieszczony wewnątrz żyły, wykonując perfuzję wątroby za pomocą PBS za pomocą jednomililitrowej strzykawki przez cewnik. Użyj mikrokleszczyków Dumont, mikroigły Castroviejo i szwu 4-0, aby umieścić szew poniżej rozgałęzienia żyły wrotnej i drugi szew jeden centymetr poniżej, aby zabezpieczyć cewnik.
Podłącz cewnik do silikonowej rurki o długości jednego metra, średnicy wewnętrznej trzech milimetrów i średnicy zewnętrznej 4,1 milimetra za pomocą łącznika przynęty. Podłącz silikonową rurkę do pompy perystaltycznej i zbiornika zawierającego wodę dejonizowaną. Ostrożnie usuń pęcherzyki powietrza z wnętrza rurki i unikaj tworzenia nowych pęcherzyków podczas perfuzji.
Ustaw pompę perystaltyczną na wydajność 0,2 mililitra na minutę. Najpierw zanurz się w wodzie dejonizowanej przez dwie godziny, a kolor wątroby zmieni się z czerwonego na żółty podczas perfuzji. Zamień roztwór perfuzyjny na 0,5% deoksycholan sodu i kontynuuj przez noc, a wątroba stanie się biała pod koniec perfuzji.
Zamień roztwór perfuzyjny na wodę dejonizowaną i upływaj przez dwie godziny. Użyj mikrokleszczyków Dumont i mikronożyczek sprężynujących, aby zebrać pozbawioną komórek wątrobę i dokładnie umyć ją na szalce Petriego z PBS. Przenieś mały kawałek pozbawionej komórek wątroby na szkiełko mikroskopowe i umieść tkankę pośrodku.
Dodaj 10 mikrolitrów pożywki mocującej zapobiegającej blaknięciu do tkanki za pomocą pipety, aby uniknąć wysuszenia tkanki. Przykryj chusteczkę szkłem nakrywkowym i przyłóż niewielką siłę, aby spłaszczyć próbkę. Uszczelnij krawędzie szkła nakrywkowego bezbarwnym i przezroczystym lakierem do paznokci.
Umieść kroplę olejku immersyjnego na wierzchu szkła nakrywkowego i umieść szkiełko na uchwycie szkiełka mikroskopowego. Opuść soczewkę obiektywu olejowego 20X, aż zetknie się z olejkiem immersyjnym. Przełącz na kanał fioletowy o długości fali 405 nanometrów.
Włącz migawkę i ustaw ostrość próbki. Nawiguj i ustaw obszar zainteresowania do obrazowania. Wyłącz migawkę przed przejściem do akwizycji obrazu za pomocą światła laserowego.
Aby uruchomić laser dwufotonowy, przełącz się na sterowanie komputerowe i najpierw włącz laser dwufotonowy. Następnie włącz kontroler lasera dwufotonowego i migawkę, upewniając się, że moc wyjściowa jest wyższa niż 2,5 wata. Zmniejsz moc lasera, aby zapobiec wygaszaniu fluorescencji.
Wybierz i dostosuj detektory, zarówno powielacze zdjęć, jak i hybrydę, aby pomieścić wybrane fluorofory. Wybierz jednoczesną lub sekwencyjną akwizycję obrazu. Ustaw otwór na najwyższą wartość.
Dostosuj długości fal lasera, wzmocnienie, moc, przesuń czas przebywania pikseli, uśrednianie rozmiaru piksela i powiększenie. Przewiń kontroler Z komputera i ustaw wymiary Z. Zdefiniuj początek i koniec oraz wybierz liczbę obrazów podanych w woluminie.
Pobieranie obrazów. Po wykonaniu dwóch mikroskopii fotonowych włókna kolagenowe bez decelularyzacji ujawniły obraz sieci kolagenowej o niskiej rozdzielczości. W zdecelularyzowanej macierzy zewnątrzkomórkowej zaobserwowano wyraźne różnice w morfologii i rozmieszczeniu przestrzennym między wątrobami diety karmowej i fast food.
Włókna kolagenowe i myszy na diecie chow wykazywały przeplatającą się i dobrze zorganizowaną sieć, podczas gdy myszy na diecie fast food wykazywały wiązki kolagenu z mniejszą łącznością. Trójwymiarowa struktura macierzy zewnątrzkomórkowej wątroby pokazuje, że włókna kolagenowe u myszy na diecie karm wykazywały dobrze zorganizowaną sieć, ale nie u myszy na diecie typu fast food. Aby potwierdzić jakość kolagenu fibrylarnego w bezkomórkowej macierzy zewnątrzkomórkowej, szkiełka wybarwiono hematoksyliną eozyną i czerwienią Picrosirius.
Hematoksylina i Eozyna pokazują, że wszystkie komórki zostały usunięte. Na obrazach z czerwonym zabarwieniem Picrosiriusa macierz zewnątrzkomórkowa myszy karmionych karmą ujawniła dobrze zorganizowaną sieć. W przeciwieństwie do tego, myszy na diecie fast food wykazywały gęstsze włókna kolagenowe.
Ostrożnie usuń pęcherzyk z wnętrza probówki przed perfuzją. Bąbelek zablokuje naczynie w wątrobie i wpłynie na perfuzję.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół optymalizuje metody perfuzji/decelularyzacji wątroby in situ oraz mikroskopii dwufotonowej w celu wizualizacji przebudowy macierzy pozakomórkowej (ECM) podczas niealkoholowego stłuszczeniowego zapalenia wątroby (NASH). Zrozumienie dynamiki ECM jest kluczowe dla uzyskania wiedzy na temat włóknienia wątroby.
Trójwymiarowe obrazowanie macierzy zewnątrzkomórkowej (ECM) wątroby w modelach NASH wypełnia krytyczną lukę w zrozumieniu progresji włóknienia i przebudowy ECM. Możliwość ta zwiększa pewność prognostyczną w przedklinicznych modelach chorób wątroby i dostarcza danych do walidacji celów w procesie odkrywania leków przeciw włóknieniowych. Integracja zaawansowanej wizualizacji ECM wspiera decyzje dotyczące portfela projektów w punkcie przejścia z etapu odkrywania do fazy przedklinicznej, z uwzględnieniem analizy ryzyka.
Niniejszy protokół wpisuje się w kontinuum od etapu odkrywania do badań przedklinicznych, umożliwiając wysokorozdzielczą analizę ECM w mysich modelach NASH, co wspiera zarówno walidację celów terapeutycznych, jak i procesy badawcze w ramach medycyny translacyjnej.