25 marca 2022
Tutaj prezentujemy ulepszony protokół testu chemotaksji. Celem tego protokołu jest zmniejszenie liczby etapów i kosztów tradycyjnych metod chemotaksji bakteryjnej oraz służenie jako cenne źródło informacji o interakcjach między roślinami a mikroorganizmami.
W artykule opisano identyfikację chemoatraktantu ryzobakterii w wysiękach korzeniowych przy użyciu ulepszonego testu chemotaksji. Aktywacje korzenia implantu chemotaksji są istotne dla kolonizacji korzeni dla wzrostu roślin, promowania bakterii rhizobia i dostarczania pomocnych frakcji interakcji roślina-mikroorganizm. Do analizy chemotaksji bakteryjnej wykorzystano wiele metod.
Na przykład metoda płyty pływackiej, metoda podobna do Cappilary, mikroprzepływowe urządzenie ślizgowe. Cykl eksperymentu z zastosowaniem metody pływania na płycie był długi. Uruchomiono błąd eksperymentalny metody podobnej do Cappilary, mikroprzepływowe urządzenie ślizgowe jest drogie do eksperymentowania.
Opracowaliśmy prostą metodę szybkiej identyfikacji chemoatraktantu, który może indukować ruch chemotaktyczny bakterii stymulujących wzrost ryzosfery za pomocą sterylnych szkiełek podstawowych bez skomplikowanych kroków. Metoda ta zmniejszyła błąd liczenia płytek i skróciła cykl eksperymentu. Jeśli chodzi o identyfikację substancji chemoatraktantowej, nowa metoda może zaoszczędzić 2-3 dni, a także obniżyć koszty materiałów doświadczalnych.
Losowo rozprowadź nasiona ryżu w komorze uprawy, kultura rośnie przez tydzień i dwukrotnie dodaj sterylną wodę. Wybierz sadzonki ryżu o podobnej wielkości i posadź w 50 mililitrach płynnego podłoża Ms. Inkubować przez 48 godzin w temperaturze 22 stopni Celsjusza i warunkach septycznych.
Wysięki z korzenia ryżu zostaną uwolnione do podłoża Ms. Analizę spektrometrii mas metodą chromatografii cieczowej przeprowadzono przy użyciu systemu UHPLC. Przygotuj wodny roztwór chemoatraktantu, upewnij się, że jest sterylny.
Przefiltruj roztwór chemoatraktantu za pomocą filtra bakteryjnego o wielkości 0,22 mikrometra. Wodny roztwór chemoatraktantu był pojedynczą substancją otrzymaną w badaniach LCMS rozpuszczoną w wodzie. Jako przykład użyto roztworu kwasu cytrynowego.
Wszystkie czynności muszą być wykonywane z boku lampy. Zaznacz środkową pozycję szkiełka w odstępie 1 centymetra. Upewnij się, że szkiełko jest kilkakrotnie wysterylizowane na płomieniu.
W 30 mikrolitrowym roztworze chemoatraktantu po lewej stronie szkiełka upewnij się, że bakterie zostały wyhodowane do etapu logarytmicznego. Dodaj 30 mikrolitrów roztworu bakterii po prawej stronie szklanego szkiełka. Wysterylizuj pętlę zaszczepiającą kilka razy na płomieniu za pomocą pętli zaszczepiającej, aby połączyć wodny roztwór chemoatraktantu z roztworem bakterii i przechowywać go w temperaturze pokojowej przez 20 minut na czystej ławce.
Po 20 minutach odłącz przewód łączący bibułą filtracyjną. Upewnij się, że probówka wirówkowa o pojemności 1.5 mililitra jest sterylna. Zebrać wodny roztwór chemoatraktantu po lewej stronie szkiełka podstawowego.
Przenieś roztwór do sterylnej probówki wirowej o pojemności 1,5 mililitra. Dodaj odpowiednią objętość barwnika z przodu komórki do odwirowanej probówki. Po 2 minutach zbierz brakujące płyny do zliczenia bakterii i obserwacji mikroskopowej za pomocą komory do liczenia krwi.
Określ liczbę przyciąganych żywych mikroorganizmów, korzystając z następującego równania. Wyższy RCI wskazuje na silną reakcję na chemoatraktant. Wyniki wykazały, że kwas cytrynowy i kwas kawowy mają najwyższe wskaźniki chemotaksji.
Wyniki nowej metody testu chemotaksji wykazały, że stężenie kwasu cytrynowego, kwasu kawowego i galaktozy w puszkach bakteryjnych było znacznie wyższe niż w grupie kontrolnej i kontroli pozytywnej. Kwas cytrynowy napisał najsilniejszą chemotaksję. Wyniki eksperymentu były zgodne z wynikami tradycyjnych metod.
Ten protokół wideo może być przedstawiony jako cenne źródło informacji na temat interakcji między roślinami a mikroorganizmami.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia ulepszony protokół testu chemotaksji, mający na celu zwiększenie wydajności i opłacalności tradycyjnych metod badania chemotaksji bakterii. Opracowana metoda ułatwia identyfikację chemoatraktantów z eksudatów korzeniowych u ryzobakterii, przyczyniając się tym samym do lepszego zrozumienia interakcji między roślinami a mikroorganizmami.
Ten ulepszony test chemotaksji umożliwia szybką i niskokosztową identyfikację związków bioaktywnych w eksudatach korzeniowych, które napędzają korzystne interakcje między roślinami a mikroorganizmami. Poprzez skrócenie ram czasowych eksperymentów i minimalizację błędów w liczeniu, metoda ta wspiera wczesną walidację celów w procesach biotechnologii rolniczej. Stanowi ona skalowalne i powtarzalne podejście do ograniczania ryzyka podczas identyfikacji wiodących cząsteczek sygnałowych bakterii ryzosferowych.
Metoda ta wpisuje się w procesy wczesnego etapu odkrywania, w których metabolity wysięków korzeniowych są przesiewane pod kątem aktywności w sygnalizacji mikrobiologicznej przed optymalizacją wiodących związków i opracowaniem formulacji.