6 stycznia 2022
Entomopatogeniczne kolonie grzybów są izolowane z próbek gleby tropikalnej za pomocą przynęty Tenebrio, przynęty Galleria, a także selektywnego sztucznego podłoża, tj. agaru z dekstrozą ziemniaczaną wzbogaconego ekstraktem drożdżowym uzupełnionym chloramfenikolem, tiabendazolem i cykloheksymidem (pożywka CTC).
Izolacja grzybów entomopatogenicznych jest istotna dla opracowania biopestycydu i może być pomocna w badaniu różnorodności, rozmieszczenia i ekologii tej konkretnej grupy. Stosowanie przynęt na owady do izolowania grzybów entomopatogenicznych jest uważane za tanią i wysoce wydajną metodę. Chloramfenikol, tiabendazol, cykloheksymid, sztuczne podłoża nie wykorzystują dodyny i wymagają mniej miejsca w procesie pobierania próbek gleby.
Krytyczne kroki obejmują badanie płytek CTC po jednym i dwóch tygodniach, aby zapobiec zwężeniu się innych grzybów i rozwojowi grzybów entomopatogenicznych, a następnie identyfikacja kolonii grzybów entomopatogenicznych na podstawie ich makromorfologii i mikromorfologii. Zacznij od zebrania 800 gramów gleby na głębokość 10 centymetrów za pomocą małej łopaty. Próbki należy przechowywać w workach polipropylenowych w temperaturze pokojowej do czasu rozpoczęcia eksperymentu.
Można również zbierać małe korzenie, ponieważ wiadomo, że grzyby entomopatogeniczne mają kompetencję ryzosfery. W celu wyizolowania grzybów przy użyciu chloramfenikolu, tiabendazolu, cykloheksymidu lub sztucznego podłoża selektywnego CTC, należy zważyć 0,35 grama próbki gleby z korzeniami lub bez. Umieść tę próbkę w mikroprobówce o pojemności 1,5 mililitra.
Podczas pracy w komorze bezpieczeństwa biologicznego dodaj jeden mililitr sterylnej zawiesiny wodnej monooleinianu polioksyetylenosorbitanu o procentach objętościowych 0,01 do mikroprobówki zawierającej glebę i wiruj probówkę przez 30 sekund. Po zakończeniu wyjąć i odpipetować 50 mikrolitrów supernatantu na środek płytki Petriego za pomocą pożywki CTC. Następnie użyj sterylnej szpatułki Drigalskiego o średnicy sześciu milimetrów, aby równomiernie rozprowadzić zawiesiny na powierzchni pożywki.
Inkubuj płytki w komorach klimatycznych w temperaturze 25 stopni Celsjusza i wilgotności względnej co najmniej 80% w ciemności. Po siedmiu, 14 i 21 dniach inkubacji obserwuj płytki pod kątem wzrostu kolonii grzybów. Do izolacji grzybów używa się zdezynfekowanych powierzchniowo larw Galleria mellonella i Tenebrio molitor w późnym stadium jako przynęty na owady.
Zanurz larwę w 0,5% podchlorynie sodu na jedną minutę w celu sterylizacji. Następnie umyj larwy dwukrotnie sterylną wodą. Złóż przynęty w plastikowych doniczkach z 10 małymi otworami o średnicy 10 milimetrów w pokrywie zawierającej 250 gramów zebranej gleby.
Homogenizuj glebę co drugi dzień, aby umożliwić maksymalny kontakt larw z glebą i codziennie analizuj doniczki, szukając martwych owadów. Po wyjęciu martwych owadów z doniczki należy powierzchownie sterylizować owady 0,5% podchlorynem sodu przez jedną minutę. Aby sprzyjać grzybicy, umieść sterylne owady w wilgotnej komorze o wilgotności względnej 80% i temperaturze 25 stopni Celsjusza na siedem dni.
W przypadku grzybicy zbierz konidia z powierzchni owadów i za pomocą pętli mikrobiologicznej umieść konidia na pożywce z agardą ziemniaczaną z dekstrozą zawierającą 0,05% chloramfenikolu lub pożywce PDAC pod mikroskopem stereoskopowym. Alternatywnie należy umieścić całe zainfekowane larwy na pożywce PDAC. I inkubuj płytki hodowlane w komorze klimatycznej, jak wyjaśniono wcześniej.
Po 14 dniach inkubacji należy zidentyfikować gatunki EPF, analizując makromorfologiczne cechy kultur grzybów na płytkach, jak opisano w manuskrypcie. Następnie przenieś konidia powietrzne do kultur szkiełkowych na trzy dni w temperaturze 80% wilgotności względnej i 25 stopni Celsjusza. Po trzech dniach zabarwić szkiełko błękitem laktofenolowym, aby zaobserwować mikroskopijne cechy.
Pod mikroskopem optycznym obserwuj struktury grzybów, takie jak rozmieszczenie, konidiofory, kształt i rozmiar konidiów 400 razy i potwierdź identyfikację EPF. W badaniach wyizolowano 51 szczepów EPF z gatunków Metarhizium i Beaveria z 524 próbek gleby. Reprezentatywna analiza przedstawia charakterystykę mikromorfologiczną kilku izolatów z gatunków Metarhizium i Beaveria.
Występowanie EPF w 24 próbkach gleby badano przy użyciu trzech różnych metod izolacji. Przynęta Galleria mellonella okazała się bardziej skuteczna w izolacji, a następnie przynęta Tenebrio molitor i podłoże CTC. Te same 24 próbki gleby nie wykazały odtworzenia gatunku Beaveria, a jedynie Metarhizium.
Najważniejsze rzeczy, o których należy pamiętać, to przeniesienie konidiów powietrznych na płaszcz szkiełkowy, obserwacja cech mikroskopu i potwierdzenie identyfikacji grzybów entomopatogenicznych za pomocą kluczy morfologicznych. Dodatkowe metody obejmują stosowanie innych selektywnych sztucznych pożywek ze specyficznymi substancjami chemicznymi w celu ograniczenia wzrostu zanieczyszczeń, takich jak dod. Poszukiwanie nowych izolatów grzybów o wyjątkowych cechach kontroli biologicznej ma kluczowe znaczenie dla zwiększenia skuteczności grzybów w zwalczaniu stawonogów i szkodników oraz zbadania dalszych pytań w dziedzinie patologii bezkręgowców.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie analizuje izolację grzybów entomopatogennych z gleb tropikalnych przy użyciu przynęt owadziego, podkreślając efektywność różnych metod. Celem izolacji jest zwiększenie wiedzy na temat różnorodności grzybów oraz przyczynienie się do rozwoju biopestycydów.
Izolowanie grzybów entomopatogennych z gleby jest podstawowym etapem w procesie odkrywania biopestycydów, w którym efektywność metody bezpośrednio wpływa na walidację celu i identyfikację wiodących kandydatów. Porównanie zastosowania przynęt owadziego względem pożywek selektywnych pozwala na ograniczenie ryzyka podczas wczesnego etapu przesiewowego badania kandydatów przeciwgrzybiczych poprzez zwiększenie wydajności izolacji i zmniejszenie liczby wyników fałszywie ujemnych. Wspiera to pewność prognostyczną w wyborze celu dla programów zwalczania szkodników z grupy stawonogów.
Metoda izolacji wpisuje się w wczesne etapy procesów odkrywania, w których odzyskane szczepy EPF poddawane są przesiewowi fenotypowemu pod kątem wirulencji i specyficzności wobec gospodarza, co pozwala na identyfikację wiodących kandydatów w procesach opracowywania biopestycydów.