3 grudnia 2021
Protokół opisuje modyfikację szybkiej metody Golgiego, która może być dostosowana do dowolnej części układu nerwowego, do barwienia neuronów w hipokampie i przyśrodkowej korze przedczołowej szczura.
Chociaż technika impregnacji Golgiego jest stosunkowo prosta, ma kilka trudnych etapów, a niewykonanie ich prawidłowo powoduje, że komórki nie nadają się do analizy. Technika ta zapewnia szybkie, powtarzalne znakowanie neuronów zaimpregnowanych metodą Golgiego. Ponadto mały błąd standardowy średniej pozwala na porównanie między eksperymentami.
Najtrudniejszą częścią tej techniki jest cięcie sekcji kriostatu, ponieważ mają one niezwykłą konsystencję i utrwalenie, a zatem ułożenie ich na szkiełku na płasko jest pewnym wyzwaniem, wymaga praktyki. Najpierw umieść niewielką ilość podłoża tkankowego na wstępnie schłodzonym uchwycie kriostatu. Zamontuj bloki mózgowe na uchwytach kriostatu, lekko rozmrażając jedną stronę bloku w dłoni w rękawiczce i umieszczając go na podłożu tkankowym.
Użyj sprayu zamrażającego na nóż i blok. Użyj płytki zapobiegającej przetaczaniu się lub szczotki, aby utrzymać sekcję płasko podczas cięcia. Wytnij 100 mikrometrowych skrawków na kriostacie w temperaturze minus 22 stopni Celsjusza.
Rozmrozić moc, jeśli to możliwe, za pomocą suwaka o temperaturze pokojowej i szybko przyłożyć go do sekcji. Alternatywnie trzymaj szkiełka w kriostacie, aby zamarzały. Przenieś sekcję zimnymi kleszczami lub zimnym pędzlem, a następnie rozmrozić mocowanie.
Zamontuj trzy do czterech sekcji koronalnych na subsydach. Wyczyść nóż papierowymi chusteczkami między plasterkami. Jeśli nóż wymaga dalszego czyszczenia, użyj 100% etanolu i wysusz przed pokrojeniem kolejnego plasterka.
Umieść szkiełka w stojakach, rozmieszczone wystarczająco daleko, aby umożliwić dostęp roztworu do sekcji. Umieść skrawki w wodzie destylowanej dwa razy na cztery minuty przed umieszczeniem ich w roztworze impregnacyjnym Golgiego na 10 minut. Oddziel szkiełka nakrywkowe, aby upewnić się, że na sekcjach znajduje się tylko jedna szkiełko nakrywkowe.
Przykryj szkiełka dużą ilością medium montażowego przed umieszczeniem szklanego szkiełka nakrywkowego na szkiełku. Po zsunięciu się okładki suche szkiełka oflagowywały się na dowolnym nieporowatym papierze przez trzy do pięciu dni, lekko je przesuwając, zwłaszcza po pierwszym dniu, aby uniknąć przywierania. Później przenieś szkiełka do uchwytów na szkiełka i najlepiej susz je przez co najmniej trzy tygodnie przed ich zbadaniem.
Aby przeanalizować gęstość kolców dendrytycznych w neuronach piramidowych zarówno przyśrodkowej kory przedczołowej, jak i regionu CA1 hipokampa, zmierz długość dendrytyczną za pomocą programu do analizy obrazu. Policz kolce na dendrytach za pomocą licznika ręcznego i zapisz zarówno długość, jak i liczbę kolców. Do analizy wybierz neurony z ciałami komórkowymi i dendrytami po zapłodnieniu oraz dendryty, które są ciągłe i odróżniają się od sąsiednich komórek.
Rysunek przedstawia przykłady komórek zaimpregnowanych Golgiego w regionie CA1 hipokampa przy niskiej i dużej mocy. Rysunek ilustruje eksperyment, w którym podstawowa gęstość kolców dendrytycznych została zwiększona na komórkach piramidowych u dorastających samców i samic szczurów po wzbogaceniu środowiska w CA1 i przyśrodkowej korze przedczołowej. Utrzymanie sekcji w odpowiedniej temperaturze podczas cięcia jest wyzwaniem i w tym celu używamy dużej ilości sprayu zamrażającego.
A następnie trudno jest umieścić sekcje na szkiełkach i wyschnąć na płasko. Technika ta służy do badania cech neuroanatomicznych. Może być stosowany samodzielnie lub w połączeniu z innymi metodami śledzenia neuroanatomicznego.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie szczegółowo opisuje zmodyfikowaną szybką metodę Golgiego do barwienia neuronów specyficznie w hipokampie i przyśrodkowej korze przedczołowej szczurów. Technika ta umożliwia efektywne znakowanie neuronów, co pozwala na analizę charakterystyk neuroanatomicznych.
Ta szybka metoda barwienia Golgiego zapewnia powtarzalne podejście o niskiej zmienności do wizualizacji gęstości kolców dendrytycznych w kluczowych obszarach mózgu istotnych dla modeli chorób neuropsychiatrycznych. Umożliwiając spójną kwantyfikację struktur synaptycznych w hipokampie i korze przedczołowej, technika ta wspiera walidację celów oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w programach poszukiwania leków ukierunkowanych na OUN. Kompatybilność z przechowywaniem tkanek w zamrożeniu oraz minimalna zmienność międzyeksperymentalna zwiększają niezawodność analizy w podłużnych badaniach przedklinicznych.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od wczesnej walidacji punktu uchwycia po przedkliniczny screening fenotypowy, w szczególności w programach skoncentrowanych na ośrodkowym układzie nerwowym, oceniających neuroplastyczność i integralność synaptyczną.