-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Bezznacznikowa optyka nieliniowa do badania zależnych od tubuliny defektów w centralnej mielinie
Bezznacznikowa optyka nieliniowa do badania zależnych od tubuliny defektów w centralnej mielinie
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Label-Free Non-Linear Optics for the Study of Tubulin-Dependent Defects in Central Myelin

Bezznacznikowa optyka nieliniowa do badania zależnych od tubuliny defektów w centralnej mielinie

Full Text
2,219 Views
08:07 min
March 24, 2023

DOI: 10.3791/63449-v

Valeria Piazza1, Milvia Alata1, Victor H. Hernandez2, José R. Eguibar3,4, Carmen Cortes3

1Centro de Investigaciones en Óptica A.C. (CIO), 2Division of Sciences and Engineering, Department of Chemical, Electronic, and Biomedical Engineering,Universidad de Guanajuato, 3Institute of Physiology,Benemérita Universidad Autónoma de Puebla, 4Dirección General de Desarrollo Internacional,Benemérita Universidad Autónoma de Puebla

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol using second harmonic generation microscopy to detect microtubule-loaded oligodendrocytes in a tubulinopathy model. The innovative approach aims to better understand the implications of microtubule dynamics in oligodendrocyte function.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Biology
  • Imaging Techniques

Background

  • Microtubules play a crucial role in oligodendrocyte function and health.
  • Tubulinopathy can affect microtubule dynamics, influencing oligodendrocyte viability.
  • Advanced imaging techniques, like second harmonic generation microscopy, offer new insights into cellular processes.

Purpose of Study

  • To develop a microscopy protocol for detecting oligodendrocytes affected by tubulinopathy.
  • To explore the role of microtubule loading in oligodendrocyte health.

Methods Used

  • Second harmonic generation microscopy was employed to visualize microtubule-loaded oligodendrocytes.
  • The biological model involved oligodendrocytes subjected to tubulinopathy.

Main Results

  • The study successfully demonstrated the application of second harmonic generation microscopy for oligodendrocyte detection.
  • Insights into microtubule loading and its potential implications for oligodendrocyte function were provided.

Conclusions

  • This study enables new ways to investigate oligodendrocyte pathology through advanced imaging.
  • Findings could enhance the understanding of microtubule dynamics in neurological diseases associated with oligodendrocyte dysfunction.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using second harmonic generation microscopy?
Second harmonic generation microscopy provides high-resolution imaging that allows for the visualization of specific cellular structures like microtubules without the need for fluorescent labeling.
How is the biological model of tubulinopathy implemented?
The model involves the use of oligodendrocytes to understand the effects of tubulinopathy on microtubule dynamics and oligodendrocyte health.
What types of data are obtained using this method?
The method allows for visual data regarding microtubule organization and loading within oligodendrocytes, providing insights into their structural integrity and functional state.
Can this method be applied to other cell types?
Yes, while this study focuses on oligodendrocytes, the technique could be adapted for use in other cell types affected by microtubule dynamics.
Are there any limitations to this approach?
One limitation is that this method primarily provides structural information; additional biochemical assays may be required to fully understand functional implications.

W tym artykule przedstawiamy protokół wykrywania oligodendrocytów obciążonych mikrotubulami w modelu tubulinopatii za pomocą prostego, innowacyjnego podejścia do mikroskopii drugiej harmonicznej.

Obrazowanie próbek biologicznych drugiej generacji harmonicznej jest techniką optyczną, która umożliwia wizualizację cząsteczek niecentrosymetrycznych i ich zespołów bez konieczności stosowania znacznika lub barwnika. Obrazy wygenerowane tą metodą mają niskie tło, ponieważ bardzo niewiele cząsteczek biologicznych może działać jako siła harmoniczna. Protokół ten opisuje zastosowanie techniki obrazowania diagnostycznego tubuliny beta-4A w modelu zwierzęcym taiep.

Tubulinopatie to niedawno opisane choroby. Z tego powodu dostępna jest ograniczona ilość informacji na temat podstawowych mechanizmów leżących u podstaw patofizjologii na poziomie komórkowym. Aby rozpocząć, włącz laser impulsowy, aby upewnić się, że będzie gotowy do pracy na optymalnym i stałym poziomie mocy.

Do badania mikrotubul tissular wykorzystuje się od 10 do 20% dostępnej mocy lasera, co w opisywanym systemie odpowiada 13 do 26 miliwatom mierzonym w tylnej płaszczyźnie ogniskowej obiektywu. Przed obrazowaniem ustaw laser na 810 nanometrów. Następnie upewnij się, że mikroskop jest ustawiony w jednej linii Koehlera z obiektywem używanym do generowania drugiej harmonicznej lub obrazowania SHG.

Usuń niechciane filtry ze ścieżki wykrywania optycznego i upewnij się, że membrana skraplacza jest całkowicie otwarta i żadne światło nie jest niepotrzebnie zatrzymywane. Przygotuj obiektyw immersyjny z olejkiem o aperturze numerycznej 25x x 0,8 z niewielką kroplą olejku immersyjnego w soczewce. Postępuj zgodnie z krokami przedstawionymi w podanej tabeli tutaj, z wyjątkiem mocy lasera, która wynosi mniej niż 5% w przypadku skrobi kukurydzianej.

Obraz suchej skrobi kukurydzianej umieszczonej między szklanymi szkiełkami. z parametrami SHG do generowania obrazów SHG, ujawniają kierunek polaryzacji lasera. Zrób jeden obraz rzadkich ziaren skrobi kukurydzianej i zaznacz orientację zrazików SHG w płaszczyźnie XY odpowiadającą orientacji polaryzacji lasera.

W celu kontroli wykonaj kolejny obraz tej samej próbki wprowadzającej płytkę półfalową do ścieżki optycznej, aby zmienić kierunek oscylacji lasera. Wynikowy obraz przedstawia obrócone zraziki sygnałowe SHG. Jeśli używasz innego filtra pasmowoprzepustowego dla SHG, upewnij się, że ma on optymalne właściwości transmisji, porównując obrazy i intensywność sygnału piksel po pikselu wzdłuż linii skanowania.

Przygotuj tacę buforową wibratomu wypełnioną ciepłym roztworem soli Hanksa lub HBSS. Przymocuj mózg do płytki próbki za pomocą kleju cyjanoakrylowego za pomocą kawałka taśmy maskującej. Najbardziej ogonowa część styka się z klejem, dzięki czemu można przeciąć użyteczne odcinki koronalne z przeciwległej części rostralnej.

Przenieść płytkę próbki na jej wspornik magnetyczny wewnątrz tacki buforowej. Zacznij ciąć odcinki o grubości od 300 do 500 mikronów, aż plastry obejmą całą powierzchnię mózgu. Następnie zmniejsz grubość przekroju do 160 mikronów.

Po przecięciu odcinka o grubości 160 mikronów na poziomie ciała modzelowatego, odzyskaj go za pomocą zmodyfikowanej szklanej pipety Pasteura z dużym otworem kołnierzowym. Przenieść wycinek na czystą szalkę Petriego z nowym ciepłym HBSS lub bezpośrednio na szkiełko nakrywkowe lub szklane naczynie dolne do mikroskopii. Umieść próbkę pod mikroskopem i umieść ją odpowiednio pod obiektywem, prowadząc bezpośrednią obserwację przez okulary ze światłem przechodzącym.

Usunąć nadmiar HBSS tak, aby cienka warstwa cieczy pokryła całą próbkę. Co kilka minut należy sprawdzać wzrokowo film cieczy, aby uniknąć nadmiernego parowania i wysuszenia próbki. Przygotuj stolik mikroskopowy do obrazowania bez deskanowania, które obejmuje zamknięcie wszystkich drzwi ciemnej komory inkubacyjnej lub przykrycie komory inkubacyjnej czarną nylonową tkaniną powlekaną poliuretanem.

Wybierz tryb obrazowania bez deskancji wzdłuż ścieżki transmisji. W ten sposób wychwytywanie słabego sygnału SH tubuliny zostanie zoptymalizowane. Następnie wybierz cel.

Następnie ustaw moc lasera na czas przebywania pikseli wynoszący 12,6 mikrosekundy. Rób zdjęcia nie większe niż 512 na 512 pikseli z szybkością pięć i średnio dwie, aby uzyskać średni czas akwizycji 15 sekund. Najpierw uchwyć obrazy za pomocą filtra krótkoprzepustowego 485 nanometrów, a w drugim kroku dodaj ostry filtr pasmowoprzepustowy 405 nanometrów.

Przetnij móżdżek skalpelem na dwie półkule i przymocuj je do podpory wibratomu za środkową część. Przekrój i zobrazuj móżdżek przy użyciu tych samych ustawień wibratomu, ostrza i mikroskopu, jak opisano dla mózgu. Kiedy włókna ciała modzelowatego są obrazowane, w mózgu tajennika obserwuje się krótkie struktury przypominające włókna i zaokrąglone elementy.

W przeciwieństwie do tego, ciało modzelowate mózgu kontrolnego wykazuje znacznie bardziej niejednorodny i izotropowy sygnał w całym obszarze mózgu. Pochodzenie sygnału różnicowego leży w szczególności w zjawisku generacji drugiej harmonicznej, ponieważ dodanie filtra wąskoprzepustowego zmniejsza tylko niespecyficzne natężenie sygnału z obrazów kontrolnych, jednocześnie selektywnie usuwając ten niski sygnał rozproszony z okolic soma-podobnych i krótkich wydłużonych struktur w obrazach taiep, które zawsze generują intensywne światło SH. W tkance kontrolnej istoty białej móżdżku zaobserwowano całkowity brak sygnału SH.

Komórki Purkiniego są ledwo widoczne przy użyciu filtra krótkoprzepustowego, a wydłużone i zaokrąglone struktury utrzymują się w obrazie SH z tkanki taiep. Kluczowym krokiem do uzyskania najlepszego obrazu jest wycięcie jak najcieńszych skrawków tkanki. Co więcej, praca z ostrymi skrawkami tkanek wymaga szybkich protokołów, aby zapobiec pogorszeniu stanu tkanek.

Dlatego tak ważne jest, aby wcześniej skonfigurować i sprawdzić układ optyczny. Sygnał drugiej harmonicznej z mikrotubul jest słabszy niż sygnał drugiej harmonicznej ze skrobi. W związku z tym do obrazowania mikrotubul należy użyć większej mocy lasera.

Moc lasera należy zwiększać ostrożnie, ponieważ ponieważ do obrazowania używany jest obiektyw o dużej aperturze numerycznej, intensywność na próbce gwałtownie wzrosłaby Dzięki obrazowaniu generacji drugiej harmonicznej patologiczne zmiany w centralnej mielinomace modelu tubulinopatycznego są szybko i łatwo identyfikowane. Potencjalne zastosowania tej techniki obejmują jej zastosowanie do badania podstawowych mechanizmów tubulinopatii H-ABC oraz do oceny terapii farmakologicznych w leczeniu pacjentów. W dłuższej perspektywie technika ta ma potencjał, aby stać się uzupełniającym narzędziem diagnostycznym do stosowania wewnątrzczaszkowego lub w przypadku świeżych biopsji.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neurobiologia wydanie 193 tubulina defekty mieliny technika optyczna cząsteczki niecentrosymetryczne obrazowanie diagnostyczne tubulinopatie laser impulsowy mikrotubule tkankowe wyrównanie Koehlera obiektyw zanurzeniowy w oleju obrazowanie SHG obrazowanie skrobi kukurydzianej kierunek polaryzacji lasera bufor wibratomowy zrównoważony roztwór soli Hanksa

Related Videos

Obrazowanie fotoaktywacji fluorescencyjnej transportu neurofilamentów w mielinizowanych aksonach myszy

04:33

Obrazowanie fotoaktywacji fluorescencyjnej transportu neurofilamentów w mielinizowanych aksonach myszy

Related Videos

440 Views

Obrazowanie drugiej generacji harmonicznych w modelu szczurzym w celu zbadania wad tubuliny

02:40

Obrazowanie drugiej generacji harmonicznych w modelu szczurzym w celu zbadania wad tubuliny

Related Videos

384 Views

Model uszkodzenia rdzenia kręgowego indukowany laserem ex vivo do oceny mechanizmów zwyrodnienia aksonów w czasie rzeczywistym

11:18

Model uszkodzenia rdzenia kręgowego indukowany laserem ex vivo do oceny mechanizmów zwyrodnienia aksonów w czasie rzeczywistym

Related Videos

11.4K Views

Zastosowanie znakowania immunologicznego do analizy stabilnych, dynamicznych i powstających mikrotubul w zarodku danio pręgowanego

12:38

Zastosowanie znakowania immunologicznego do analizy stabilnych, dynamicznych i powstających mikrotubul w zarodku danio pręgowanego

Related Videos

8.8K Views

Spektralna mikroskopia reflektometryczna na mielinizowanych aksonach in situ

09:13

Spektralna mikroskopia reflektometryczna na mielinizowanych aksonach in situ

Related Videos

7.7K Views

Pomiar dynamiki mikrotubul za pomocą mikroskopii wirujących dysków w monopolarnych wrzecionach mitotycznych

08:31

Pomiar dynamiki mikrotubul za pomocą mikroskopii wirujących dysków w monopolarnych wrzecionach mitotycznych

Related Videos

6.6K Views

Obrazowanie i analiza transportu neurofilamentów w wyciętym nerwie piszczelowym myszy

09:52

Obrazowanie i analiza transportu neurofilamentów w wyciętym nerwie piszczelowym myszy

Related Videos

6.7K Views

In vivo (in vivo) Ocena dynamiki i orientacji mikrotubul w neuronach Caenorhabditis elegans

07:43

In vivo (in vivo) Ocena dynamiki i orientacji mikrotubul w neuronach Caenorhabditis elegans

Related Videos

3.5K Views

Jednoczesna wizualizacja dynamiki mikrotubul usieciowanych i pojedynczych in vitro za pomocą mikroskopii TIRF

07:20

Jednoczesna wizualizacja dynamiki mikrotubul usieciowanych i pojedynczych in vitro za pomocą mikroskopii TIRF

Related Videos

3K Views

Samodzielny montaż taktoidów mikrotubul

08:49

Samodzielny montaż taktoidów mikrotubul

Related Videos

4.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code