16 marca 2022
W tym manuskrypcie, iniekcja podspojówkowa jest demonstrowana jako prawidłowa metoda dostarczania wektora do tkanek oka u myszy za pomocą systemu iniekcyjnego składającego się z pompy strzykawkowej do infuzji/pobrania i gazoszczelnej wyjmowanej strzykawki połączonej z igłami do mikroiniekcji. Ten system iniekcji można również dostosować do innych dróg podawania wewnątrzgałkowego.
Protokół ten oferuje metodę dostarczania terapii genowej do wielu tkanek oka w bezpieczny, łatwy i skuteczny sposób. Można go również przystosować do iniekcji śródstromalnych i podsiatkówkowych u małych zwierząt. Stosowanie podspojówkowej drogi iniekcji jest minimalnie inwazyjne.
Stwarza mniejsze ryzyko i jest bardzo obiecujący w leczeniu wielu chorób oczu. Biorąc pod uwagę, że ponad 1 miliard ludzi na całym świecie cierpi na upośledzenie wzroku, stosowanie bezpiecznej i łatwej metody dostarczania leków ma szerokie zastosowanie w leczeniu wielu różnych przyczyn ślepoty. Metody dostarczania genów opisane w tym protokole są szczególnie interesujące dla tych, którzy opracowują potencjalne strategie interwencji i praktykujących okulistów, którzy ostatecznie dostarczą te leki pacjentom.
Największym wyzwaniem dla kogoś, kto wykonuje ten protokół po raz pierwszy, jest prawdopodobnie wprowadzenie igły w pojętą przestrzeń spojówkową. Aby rozpocząć, należy zmontować system iniekcyjny, umieszczając mikroskop stereoskopowy i pompę strzykawkową w komorze bezpieczeństwa biologicznego. Następnie przytnij rurkę polietylenową na długość około 50 centymetrów.
Włóż koniec igły o rozmiarze 36 do jednego końca rurki. Następnie napełnij jednorazową strzykawkę o pojemności 3 mililitrów sterylną wodą i włóż ją do boku rurki naprzeciwko igły. Przepłucz rurkę trzy razy, na przemian sterylną wodą i 70% alkoholem, aby zdezynfekować rurkę i upewnić się, że nie ma wycieków, zatkań ani uszkodzeń w całej rurce.
Za pomocą jednorazowej strzykawki o pojemności 3 mililitrów napełnij rurkę sterylną wodą i pozostaw rurkę podłączoną do jednorazowej strzykawki. Następnie umieść kawałek parapianki na powierzchni szafy bezpieczeństwa biologicznego i dodaj do niej kałużę sterylnej wody. Zanurz część rurki podłączoną do igły w kałuży sterylnej wody.
Następnie wyciągnąć jednorazową strzykawkę z otworu rurki, aby zapobiec przedostawaniu się powietrza do systemu rurkowego po wyjęciu strzykawki. Następnie napełnij 10-mikrolitrową strzykawkę Hamiltona sterylną wodą. Następnie podłącz igłę strzykawki Hamilton do otwartego końca rurki, zanurzając końcówkę igły strzykawki Hamilton w kałuży sterylnej wody na folii para.
Naciśnij i przytrzymaj przycisk szybkiego cofania na ekranie pompy, aby przesunąć bloki popychacza do przybliżonej długości strzykawki. Następnie odkręć pokrętła zaciskowe wspornika, aby poluzować wsporniki mocujące na popychaczu i blokach uchwytu strzykawki. Następnie załadować strzykawkę Hamilton na blok uchwytu strzykawki i zabezpieczyć strzykawkę zgodnie z instrukcjami producenta.
Aby dostosować parametry na ekranie ustawień pompy, naciśnij przycisk Force" i ustaw poziom siły na 30%Następnie zaakceptuj zmiany, aby wrócić do ekranu ustawień. Naciśnij przycisk Szybki start", wybierz Metoda, a następnie wybierz opcję Tylko zaparzanie". Jako opcję strzykawki wybierz Hamilton 1700, a następnie kliknij Szkło"i wybierz 10 mikrolitrów.
Później należy wybrać szybkość infuzji i objętość wstrzyknięcia. Wysunąć wodę ze strzykawki Hamiltona, pozostawiając rurkę i igłę do wstrzykiwań pełną wody, naciskając przycisk "Infuse". Następnie należy usunąć wirusa, umieszczając igłę do wstrzykiwań w porcji zapasu wirusa.
Następnie lekko pociągnij strzykawkę Hamiltona, naciskając przycisk cofania, aby wprowadzić mały pęcherzyk powietrza do rurki. Po znieczuleniu zwierzęcia chwyć spojówkę kleszczami. Następnie włóż igłę do spojówki, aż skos zostanie całkowicie pokryty błoną spojówkową i przyłóż igłę do gałki ocznej.
Jednocześnie należy rozpocząć wstrzykiwanie, naciskając przycisk "Start" za pomocą przełącznika nożnego. Aby zbadać rozmieszczenie wektora AAV, oko i otaczające tkanki wybarwiono hematoksyliną i eozyną. Reprezentatywne przekroje strzałkowe wykazały, że dyspersja tuszu indyjskiego zachodziła głównie w sąsiedztwie mięśni zewnątrzgałkowych na zewnętrznej powierzchni twardówki w luźnych tkankach łącznych okołogałkowych.
Aby potwierdzić transdukcję samouzupełniającego się AAV 8 po ośmiu tygodniach od wstrzyknięcia, zbadano obfitość białka zielonej fluorescencji w przekrojach poprzecznych za pomocą barwienia immunofluorescencyjnego. Wyniki ujawniły, że wektory AAV 8 skutecznie transdukowały mięśnie okołogałkowe za okiem i rogówką. Aby przeanalizować biodystrybucję wektora, liczbę kopii genomu wektora i wyraźne przedziały oka w innych narządach, w tym wątrobie i sercu, zbadano za pomocą ilościowej reakcji łańcuchowej polimerazy przy użyciu starterów i sond specyficznych dla transgenu.
Ekspresja transgenu została potwierdzona ilościową reakcją łańcuchową polimerazy z odwrotną transkrypcją, co sugerowało, że podspojówkowe wstrzyknięcie AAV 8 powoduje ekspresję transgenu w powiece, spojówce, rogówce i nerwie wzrokowym. Pęcherzyk powietrza będzie służył jako bariera między wodą w rurce a lekiem terapeutycznym. Technika ta pozwala innym badaczom na zbadanie możliwości wykorzystania podspojówkowej drogi podawania zarówno w przypadku roztworów okulistycznych, jak i ocznych terapii genowych w przypadku wielu chorób.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół przedstawia metodę dostarczania terapii genowej do wielu tkanek oka w sposób bezpieczny, prosty i skuteczny. Podspójówkowa droga podania jest małoinwazyjna i wiąże się z mniejszym ryzykiem, co daje duże nadzieje na skuteczne dostarczanie wirusów towarzyszących adenowirusom (AV) w celu leczenia różnych schorzeń oczu.
Podconjunktywalna administracja wektorów wirusów towarzyszących adenowirusom (AAV) w modelach małych zwierząt rozwiązuje problem bezpiecznego, lokalnego dostarczania genów w chorobach oczu. Ta małoinwazyjna metoda umożliwia precyzyjne celowanie w tkanki oka, co zwiększa pewność prognostyczną w badaniach nad terapią genową we wczesnej fazie. Jej elastyczność i powtarzalność sprawiają, że jest ona cennym narzędziem w procesie selekcji projektów oraz zapewnianiu ciągłości translacyjnej w opracowywaniu leków okulistycznych.
Metoda ta wpisuje się w proces od odkrycia do fazy przedklinicznej, umożliwiając testowanie hipotez, optymalizację wektorów oraz ilościową walidację w modelach ocznych u małych zwierząt.