-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Ustandaryzowane przygotowanie pierścienia wieńcowego u szczurów i rejestracja w czasie rzeczywist...
Ustandaryzowane przygotowanie pierścienia wieńcowego u szczurów i rejestracja w czasie rzeczywist...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Standardized Rat Coronary Ring Preparation and Real-Time Recording of Dynamic Tension Changes Along Vessel Diameter

Ustandaryzowane przygotowanie pierścienia wieńcowego u szczurów i rejestracja w czasie rzeczywistym dynamicznych zmian napięcia wzdłuż średnicy naczynia

Full Text
3,823 Views
07:53 min
June 16, 2022

DOI: 10.3791/64121-v

Pengmei Guo*1, Wenqiao An*2, Ying Guo1, Zhihao Sun2, Xiaobo Wang1,3, Sanyin Zhang1,3

1Innovative Institute of Chinese Medicine and Pharmacy,Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 2School of Basic Medicine,Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 3Research Institute of Integrated TCM & Western Medicine,Chengdu University of Traditional Chinese Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Obecny protokół opisuje technikę miografu drutowego do pomiaru reaktywności naczyniowej tętnicy wieńcowej szczura.

Protokół ten szczegółowo przedstawia lokalizację, separację i utrwalenie pierścienia mięśniowego tętnic wieńcowych szczura. Zapewnienie nowej metody mechanizmów, eksploracji i leczenia różnych chorób sercowo-naczyniowych. System nadaje się do stabilnego rejestrowania dynamicznych zmian napięcia tętniczego in vitro, odczytując średnicę od 60 mikrometrów do 10 milimetrów.

Sugerujemy, aby nowicjusze najpierw dokładnie zrozumieli anatomiczne położenie każdego naczynia i mogli zacząć od nieco większego naczynia, takiego jak tętnica piersiowa i tętnica krezkowa. Po dysocjacji i usunięciu serca zacznij od spuszczenia pozostałej krwi ze wszystkich komór serca, delikatnie ściskając medycznymi kleszczami z tworzywa sztucznego. Szybko umieść wstępnie przetworzone serce na szalce Petriego zawierającej 95% tlenu i 5% nasyconego dwutlenkiem węgla roztworu soli fizjologicznej o temperaturze czterech stopni Celsjusza, o wartości pH 7,40.

Aby dokładnie określić anatomiczne położenie tętnic wieńcowych, dostosuj postawę izolowanego serca pod mikroskopem świetlnym zgodnie ze schematem ideowym. Wytnij lewą i prawą jamę komorową wzdłuż przegrody międzykomorowej od nasady tętnicy płucnej za pomocą nożyczek chirurgicznych i pęsety. Aby oddzielić lewą i prawą tętnicę wieńcową od tkanki mięśnia sercowego, należy rozciąć prawą komorę pod optycznym mikroskopem anatomicznym, aby dokładnie odsłonić prawą gałąź tętnicy wieńcowej.

Następnie określ położenie lewej tętnicy wieńcowej, obracając tkankę serca o 45 stopni zgodnie z ruchem wskazówek zegara. Po usunięciu otaczającej lepkiej tkanki mięśnia sercowego wyraźnie rozróżnij pulsującą lewą i prawą tętnicę wieńcową. Natychmiast oddziel tętnice wieńcowe na środku i całkowicie zanurz w fizjologicznym roztworze soli o temperaturze czterech stopni Celsjusza.

Uzyskaj pierścień tętniczy o długości około dwóch milimetrów, przecinając pionowo odłączoną tętnicę anatomicznymi nożyczkami, aby zarejestrować napięcie naczyniowe pod wpływem różnych bodźców. Przygotuj dwa dwucentymetrowe druty ze stali nierdzewnej i wstępnie zanurz w roztworze soli fizjologicznej o temperaturze czterech stopni Celsjusza nasyconym 95% tlenu i 5% dwutlenkiem węgla. Przeprowadź oba druty równolegle przez pierścień tętniczy zgodnie z kierunkiem naczynia pod optycznym mikroskopem anatomicznym i z drutami o równej długości odsłoniętymi na obu końcach jamy naczyniowej.

Zamocuj pierścień tętniczy za pomocą drutu stalowego z przodu iz tyłu w kąpieli mikrofotografii drucianej wypełnionej bulgoczącym roztworem soli fizjologicznej z 95% tlenem i 5% dwutlenkiem węgla. Obróć poziome pokrętło, aby uzyskać odpowiedni odstęp z przodu i z tyłu, tak aby oba przewody były poziome, a pierścień tętniczy znajdował się w naturalnym stanie relaksu. Po zainstalowaniu kąpieli DMT na aparacie termostatycznym należy otworzyć oprogramowanie do akwizycji danych, aby upewnić się, że zarejestrowano odpowiedni sygnał ścieżki.

Ustaw parametry. Osiągnij optymalne napięcie początkowe pierścienia tętniczego, stosując rozsądne napięcie wzdłuż średnicy naczynia. W tym momencie ustaw wyświetlaną wartość napięcia naczyniowego na zero.

Następnie zastosuj bodziec impulsowy o sile trzech miliniutonów do pierścienia tętniczego, obracając oś spiralną wanny. Kliknij panel LCD, aby ustawić go na zero miliniutonów i utrzymać przez jedną godzinę. Po inkubacji przez godzinę w nasyconym tlenem buforze roztworu soli fizjologicznej o pH 37 stopni Celsjusza 7,40, ponownie ustaw wartość naprężenia na zero miliniutonów na panelu sterowania napięciem mikrografu drutu.

Wykonaj aktywność skurczową pierścienia tętnicy wieńcowej za pomocą techniki miografu drucianego i zwaliduj w trzech oddzielnych operacjach, stymulując 60 milimolami roztworu jonów potasu przez 10 minut każda. Po każdej stymulacji należy przepłukać kąpiel nasyconym tlenem roztworem soli fizjologicznej, aż napięcie naczyniowe powróci do stanu początkowego. Dodać 0,3 mikromola U46619 do kąpieli i obserwować przez 10 minut.

Dodaj jedną apigeninę mikromolową i obserwuj efekty naczyniowe. Gdy rozwarcie osiągnie plateau, dodaj następne stężenie. Dodaj jedną apigeninę mikromolową do 60-milimolowego roztworu wstępnego obkurczania potasu, aby zaobserwować efekt naczyniowy.

Gdy rozwarcie osiągnie plateau, dodaj następne stężenie. Dodaj 28 milimolowy jon potasu do spoczynkowego pierścienia naczyniowego. Gdy skurcz osiągnie plateau, dodaj następne stężenie.

Dodać 0,01 mikromola U46619 do spoczynkowego pierścienia naczyniowego. Gdy skurcz osiągnie plateau, dodaj następne stężenie. Po przyłożeniu początkowego napięcia o wartości trzech miliniutonów do pierścienia tętniczego, jego napięcie przekroczyło ponad dwa miliniutony poprzez trzykrotne przyłożenie równolegle 60-milimolowego stężenia jonów potasu

.

W ten sposób powyższe procedury doprowadziły do powstania izolowanego pierścienia wieńcowego o doskonałej aktywności fizjologicznej. Skumulowane stężenie jonów potasu lub U46619 dodano do kąpieli DMT620M, co spowodowało zależny od stężenia wzrost napięcia naczyniowego in vitro. Następne stężenie jonu potasu lub U46619 dodawano, gdy efekt zwężenia naczyń krwionośnych osiągnął plateau.

W przypadku izolowanych pierścieni wieńcowych zwężonych przez jon potasu i U46619, badany lek apigenina powodował rozszerzenie naczyń krwionośnych w zaskakująco zależny od stężenia. Serce jest preparowane wzdłuż przegrody komorowej od nasady tętnicy płucnej, odsłaniając i oddzielając dwumilimetrowy pierścień mięśniowy naczyń wieńcowych. Po tym zabiegu możemy zarejestrować napięcie naczyniowe w mikronaczyniach siatkówki, funkcji nerek, tętnicy nerkowej oraz w tętnicy środkowej mózgu.

Dynamika obszaru od 60 mikrometrów do 10 milimetrów.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Standaryzowany pierścień wieńcowy szczura dynamiczne zmiany napięcia choroby układu krążenia średnica naczynia lokalizacja anatomiczna tętnica piersiowa tętnica krezkowa optyczny mikroskop anatomiczny lewa tętnica wieńcowa prawa tętnica wieńcowa fizjologiczny roztwór soli rejestracja napięcia tętniczego technika sekcji nożyczki chirurgiczne

Related Videos

Badania skurczu i relaksacji tętnicy krezkowej z wykorzystaniem zautomatyzowanej miografii drutowej

07:51

Badania skurczu i relaksacji tętnicy krezkowej z wykorzystaniem zautomatyzowanej miografii drutowej

Related Videos

29.4K Views

Ocena mechanizmów kontroli naczyniowej z wykorzystaniem wideomikroskopii izolowanych tętnic opornych szczurów

10:28

Ocena mechanizmów kontroli naczyniowej z wykorzystaniem wideomikroskopii izolowanych tętnic opornych szczurów

Related Videos

9.7K Views

Ocena reakcji na napięcie naczyniowe przy użyciu izolowanych tętnic krezkowych z naciskiem na modulację przez okołonaczyniowe tkanki tłuszczowe

08:41

Ocena reakcji na napięcie naczyniowe przy użyciu izolowanych tętnic krezkowych z naciskiem na modulację przez okołonaczyniowe tkanki tłuszczowe

Related Videos

10.3K Views

Dynamiczny pomiar i obrazowanie naczyń włosowatych, tętniczek i perycytów w sercu myszy

07:16

Dynamiczny pomiar i obrazowanie naczyń włosowatych, tętniczek i perycytów w sercu myszy

Related Videos

6.1K Views

Pomiar zależnej od śródbłonka wazorelaksacji w aorcie piersiowej myszy za pomocą tensometrycznej miografii komory o małej objętości

09:47

Pomiar zależnej od śródbłonka wazorelaksacji w aorcie piersiowej myszy za pomocą tensometrycznej miografii komory o małej objętości

Related Videos

4.1K Views

O-ring aorty w porównaniu z tradycyjnym poprzecznym zwężeniem aorty w celu modelowania przerostu serca wywołanego przeciążeniem ciśnienia

09:24

O-ring aorty w porównaniu z tradycyjnym poprzecznym zwężeniem aorty w celu modelowania przerostu serca wywołanego przeciążeniem ciśnienia

Related Videos

4.2K Views

Ocena w czasie rzeczywistym bezwzględnego, cytozolowego, wolnego Ca2+ i odpowiadającej mu kurczliwości w izolowanych, ciśnieniowych naczyniach limfatycznych

08:46

Ocena w czasie rzeczywistym bezwzględnego, cytozolowego, wolnego Ca2+ i odpowiadającej mu kurczliwości w izolowanych, ciśnieniowych naczyniach limfatycznych

Related Videos

1.7K Views

Szczurzy model prawostronnej przebudowy serca i arytmii z wykorzystaniem pasma tętnicy płucnej

10:39

Szczurzy model prawostronnej przebudowy serca i arytmii z wykorzystaniem pasma tętnicy płucnej

Related Videos

1.3K Views

Wewnątrznaczyniowe podejście do modelowania elementów skończonych oparte na obrazach ultrasonograficznych do ilościowego określania in vivo właściwości mechanicznych ludzkiej tętnicy wieńcowej

06:18

Wewnątrznaczyniowe podejście do modelowania elementów skończonych oparte na obrazach ultrasonograficznych do ilościowego określania in vivo właściwości mechanicznych ludzkiej tętnicy wieńcowej

Related Videos

1K Views

Wielopoziomowa mikrodysekcja i profilowanie funkcjonalno-strukturalne gałęzi tętniczych ludzkiego nerki

06:51

Wielopoziomowa mikrodysekcja i profilowanie funkcjonalno-strukturalne gałęzi tętniczych ludzkiego nerki

Related Videos

564 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code