-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Izolacja i bezpośrednie przeprogramowanie neuronów astrocytów myszy
Izolacja i bezpośrednie przeprogramowanie neuronów astrocytów myszy
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Isolation and Direct Neuronal Reprogramming of Mouse Astrocytes

Izolacja i bezpośrednie przeprogramowanie neuronów astrocytów myszy

Full Text
3,327 Views
07:25 min
July 7, 2022

DOI: 10.3791/64175-v

Bob A. Hersbach1,2,3, Tatiana Simon2, Giacomo Masserdotti1,2

1Institute of Stem Cell Research, Helmholtz Zentrum München,German Research Center for Environmental Health, 2Department of Physiological Genomics, Biomedical Center Munich,Ludwig-Maximilians University, 3Graduate School of Systemic Neurosciences, BioCenter,Ludwig-Maximilians University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a reliable protocol for generating highly enriched cultures of astrocytes from different regions of the central nervous system of postnatal mice. It details the process for converting these astrocytes into functional neurons through the forced expression of transcription factors, enabling researchers to investigate potential neuronal reprogramming without conflating variables such as cell purity.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Biology
  • Neuronal Development

Background

  • Astrocytes are a distinct cell type that can be targeted for direct neuronal programming.
  • The protocol aims to isolate astrocytes with high purity, reducing variability in experiments.
  • Understanding astrocyte reprogramming may provide insights into neural plasticity.
  • It involves specific enzymatic dissociation and culture conditions for optimal cell growth.

Purpose of Study

  • To establish a reliable method for reprogramming astrocytes into functional neurons.
  • To investigate the role of astrocyte purity in neuronal conversion.
  • To provide a detailed, replicable protocol for other researchers in the field.

Methods Used

  • Cell culture techniques were employed to isolate astrocytes from postnatal mouse spinal cords.
  • The study focused on both spinal cord and other CNS regions for astrocyte isolation.
  • The method included the use of enzymatic dissociation for cell retrieval.
  • Critical steps involve careful dissection, cell plating, and specific media preparations for differentiation.
  • Cultures were maintained under controlled temperature and CO2 conditions for optimal growth.

Main Results

  • Astrocyte cultures demonstrated 80-90% confluency within 7-10 days.
  • Converted neuronal cells displayed distinct morphology and neuronal markers at 21 days post-transduction.
  • Functional neurons were capable of firing action potentials and expressing mature neuronal markers.
  • The protocol enables the isolation of astrocytes while minimizing contamination from other cell types.

Conclusions

  • This study provides a robust method for reprogramming astrocytes into neurons, advancing the understanding of neural plasticity.
  • The detailed protocol allows for high-purity astrocyte cultures, essential for examining neuronal differentiation.
  • These findings have implications for future research into astrocyte functions and their potential therapeutic applications in neurodegenerative diseases.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of this astrocyte culture protocol?
This protocol ensures high purity of astrocyte cultures, allowing for more reliable results in neuronal programming studies.
How are the astrocytes isolated from the mouse spinal cord?
Astrocytes are isolated using a dissection protocol that includes enzyme treatment to dissociate cells and cleanup to ensure purity.
What types of cellular outcomes are measured?
Outcomes include cell morphology, expression of neuronal markers, and functionality such as action potential firing.
Can this method be adapted for other CNS regions?
Yes, the protocol is designed to isolate astrocytes from various CNS regions such as the cerebral cortex and cerebellum.
What limitations should researchers consider?
Care must be taken during dissections to avoid contamination and ensure the accuracy of results obtained from astrocyte cultures.

Tutaj opisujemy szczegółowy protokół generowania wysoce wzbogaconych kultur astrocytów pochodzących z różnych regionów ośrodkowego układu nerwowego myszy po urodzeniu i ich bezpośredniej konwersji w funkcjonalne neurony przez wymuszoną ekspresję czynników transkrypcyjnych.

Astrocyty są interesującą autogenną populacją, która może być celem bezpośredniego programowania neuronalnego. Protokół ten zapewnia niezawodną technikę izolowania astrocytów hodowlanych o wysokiej czystości z różnych regionów lub ośrodkowego układu nerwowego. Protokół ten został zaprojektowany i zoptymalizowany w celu zbadania zdolności astrocytów do przeprogramowania w funkcjonalne neurony bez czynników zakłócających, takich jak różnice w czystości astrocytów w różnych populacjach startowych.

Demonstracja procedury zostanie przeprowadzona przez Boba Hersbacha, postdoca w laboratorium, oraz Tatianę Simon, pomoc techniczną w naszym laboratorium. Na początek umieść tułów uświęconej myszy na 35-milimetrowej szalce Petriego i trzymaj ją na lodzie. Otwórz skórę nożyczkami i usuń kręg małymi nożyczkami.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Astrocyty przeprogramowanie neuronów ośrodkowy układ nerwowy protokół izolacji ekstrakcja rdzenia kręgowego pożywka hodowlana mieszanka enzymów zestaw do dysocjacji posiew komórkowy szafa bezpieczeństwa biologicznego poli-D-lizyna czystość astrocytów transdyferencja myszy P2

Related Videos

Izolacja astrocytów: metoda uzyskiwania czystego przygotowania astrocytów korowych myszy

06:41

Izolacja astrocytów: metoda uzyskiwania czystego przygotowania astrocytów korowych myszy

Related Videos

4.2K Views

Prosta technika izolacji i hodowli mysich astrocytów

04:51

Prosta technika izolacji i hodowli mysich astrocytów

Related Videos

855 Views

Bezpośrednie przeprogramowanie neuronów astrocytów myszy w neurony

02:12

Bezpośrednie przeprogramowanie neuronów astrocytów myszy w neurony

Related Videos

463 Views

Stereotaktyczne wstrzykiwanie wektorów wirusowych do przeprogramowania komórek glejowych w modelu mysim

03:58

Stereotaktyczne wstrzykiwanie wektorów wirusowych do przeprogramowania komórek glejowych w modelu mysim

Related Videos

431 Views

Izolacja i hodowla astrocytów korowych myszy

11:25

Izolacja i hodowla astrocytów korowych myszy

Related Videos

94.4K Views

Modelowanie patogenezy gwiaździaka in vitro i in vivo przy użyciu astrocytów korowych lub nerwowych komórek macierzystych od warunkowych, genetycznie zmodyfikowanych myszy

10:13

Modelowanie patogenezy gwiaździaka in vitro i in vivo przy użyciu astrocytów korowych lub nerwowych komórek macierzystych od warunkowych, genetycznie zmodyfikowanych myszy

Related Videos

13.9K Views

Szybkie różnicowanie neuronalne indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych do pomiaru aktywności sieci na układach mikroelektrod

09:20

Szybkie różnicowanie neuronalne indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych do pomiaru aktywności sieci na układach mikroelektrod

Related Videos

28K Views

Szybka i swoista izolacja immunomagnetyczna pierwotnych oligodendrocytów myszy

09:32

Szybka i swoista izolacja immunomagnetyczna pierwotnych oligodendrocytów myszy

Related Videos

14.6K Views

Jednoczesna izolacja pierwotnych astrocytów i mikrogleju w celu zakażenia pasożytami pierwotniaków

09:34

Jednoczesna izolacja pierwotnych astrocytów i mikrogleju w celu zakażenia pasożytami pierwotniaków

Related Videos

8.2K Views

Elektroporacja in utero wieloadresowalnych markerów kolorystycznych integrujących genom (MAGIC) w celu indywidualizacji astrocytów korowych myszy

06:47

Elektroporacja in utero wieloadresowalnych markerów kolorystycznych integrujących genom (MAGIC) w celu indywidualizacji astrocytów korowych myszy

Related Videos

6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code