Name: Ekstrakcja ślimaka z ludzkiej kości skroniowej: protokół zwłok (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-08-18T13:40:00.000+00:00
Duration: 6 min 42 s
Description: Poznaj metodę ekstrakcji ślimaka z ludzkiej kości skroniowej zwłokziej przy użyciu wiertła diamentowego. Technika ta minimalizuje urazy i jest kluczowa dla badań nad implantami ślimakowymi oraz neurobiologii słuchu.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Matti Iso-Mustajärvi otrzymuje granty badawcze od fińskiego rządowego funduszu badawczego (VTR), Fundacji Naukowej Instrumentarium, Regionalnego Grantu North Savo oraz Fińskiego Towarzystwa Chirurgii Ucha. Aarno Dietz otrzymuje granty badawcze z Akademii Fińskiej (grant nr 333525) oraz grant regionalny North Savo.

W tym badaniu użyto kości skroniowych (TB) pobranych z ludzkiego ciała poddanego sekcji zwłok. Badanie uzyskało aprobatę instytucjonalną i spełniło wymagania Deklaracji Helsińskiej w sprawie etycznego wykorzystania materiału ludzkiego. Szpital Uniwersytecki w Kuopio został zatwierdzony do stosowania w kościach skroniowych w Kuopio przez fiński Krajowy Organ Nadzoru ds. Opieki Społecznej i Zdrowia (NRO: 9202/06.01.03.01/2013), a badanie przeprowadzono zgodnie z fińskimi przepisami i ustawami. Wszystkie kości zostały zebrane anonimowo podczas medycznej sekcji zwłok.
1. Usunięcie tkanki miękkiej z powierzchni gruźlicy
<ol>
	<li>Usuń tkankę miękką z powierzchni gruźlicy za pomocą ostrza chirurgicznego i raspatorium.</li>
	<li>Resztę operacji przeprowadź pod mikroskopem chirurgicznym i szybkoobrotową wiertarką chirurgiczną z systemem irygacyjnym. Do przeprowadzenia sekcji należy używać przyrządów dousznych, takich jak mikrodysektorium. 
	UWAGA: Potrzebne ostrza wiertła to wiertło do cięcia 5 mm, nieoszlifowane wiertło diamentowe 3 mm i cienkie wiertło diamentowe 2 mm. Podczas gdy mniejsze wiertła diamentowe mogą być używane do otwierania krytycznych i małych konstrukcji, ogólnie rzecz biorąc, wiertło diamentowe o średnicy 2 mm będzie odpowiednie do tej procedury.</li>
</ol>
2. Mastoidektomia (<silna klasa="xfig">Rysunek 4)
<ol>
	<li>Otwórz korę i zidentyfikuj nakrywkę za pomocą szybkoobrotowego wiertła chirurgicznego (np. wiertła do cięcia 5 mm).</li>
	<li>Podążaj za nakrywką oraz górną i tylną stroną zewnętrznego przewodu słuchowego (EWG) do antrum za pomocą wiertła tnącego 5 mm.</li>
	<li>Otwórz antrum i zidentyfikuj ciało kowadełka przez otwarcie antrum do ucha środkowego. W zależności od anatomii zrób to za pomocą wiertła do cięcia 5 mm lub wiertła diamentowego 3 mm.</li>
	<li>Zidentyfikuj wypukłość bocznego kanału półkolistego (LSC).</li>
	<li>Użyj krótkiej nogi kowadełka jako punktu orientacyjnego do identyfikacji nerwu twarzowego (FN) za EWG.</li>
	<li>Wiercić wzdłuż FN w kierunku końcówki wyrostka sutkowatego, aż otworzy się przestrzeń niższa od EWG.</li>
	<li>Rozwiercić kąt zatokowy i zatokę esicy w tylnej części jamy wyrostka sutkowatego, aby stworzyć więcej miejsca do usunięcia ślimaka. Anatomiczne punkty orientacyjne i linie cięcia są przedstawione w <silna klasa="xfig">Rysunek 5.</li>
</ol>
3. Tympanotomia tylna, usunięcie tylnych części EEC i odsłonięcie ucha środkowego
<ol>
	<li>Otwórz zachyłek twarzowy między nerwem twarzowym a zewnętrznym kanałem słuchowym za pomocą wiertła diamentowego o średnicy 2 mm. Zidentyfikuj strunę bębenkową między FN a EWG. W celu ekstrakcji ślimaka usuń strunę bębenkową.</li>
	<li>Po otwarciu tympanotomii tylnej należy zidentyfikować staw inkubapedowy i otworzyć staw.</li>
	<li>Przetnij ścięgno strzemiączkowe za pomocą mikroostrza lub mikronożyczek, aby uniknąć zwichnięcia strzemiączka podczas dolnego cięcia ekstrakcji (krok 6.3, mięsień strzemiączkowy jest wiercony i wycinany).</li>
	<li>Wywierć przyporę i usuń kowadełko. Otwórz staw wklęsły, aby uniknąć zwichnięcia podstawy strzemiączka i otwórz przedsionek przez owalne okienko (krok 3.2).</li>
	<li>Usuń tylną część kostnego zewnętrznego przewodu słuchowego z młoteczkiem, błoną bębenkową i skórą zewnętrznego kanału słuchowego, aby uzyskać więcej miejsca. Usunąć tkankę miękką za pomocą odsysania i mikrodyssektorium. 
	UWAGA: Przetnij ścięgno napinacza błony bębenkowej przed usunięciem młoteczka, aby ułatwić usunięcie.</li>
</ol>
4. Usunięcie tkanek znajdujących się za ślimakiem (<silna klasa="xfig">Rysunek 5A-C i <silna klasa="xfig">Rysunek 6)
<ol>
	<li>Wywierć tylną część wzdłuż tylnej strony odcinka bębenkowego FN, podążając za tylną skorupą LSC i tylnym kanałem półkolistym (PSC). Kanały półkoliste prowadzą do przedsionka, który jest przednią granicą wiercenia w celu usunięcia tylnych części ślimaka.</li>
	<li>Kontynuuj wiercenie w kierunku ujścia przewodu słuchowego wewnętrznego (IAC).</li>
	<li>Uformuj linię cięcia w środkowym dole, używając górnego kanału półkolistego (SSC) jako punktu orientacyjnego i podążaj za nią przez nakrywkę. Otwórz SSC z wyższego podejścia przez środkowy dół, ponieważ wypukłość SSC można często zidentyfikować w środkowym dole. Odsłoń zwój kolanowy (GG) FN za pomocą wiertła diamentowego, aby służył jako punkt orientacyjny dla SSC ze środkowego dołu (patrz krok 6.2).</li>
	<li>Kontynuuj wiercenie pionowo w kierunku czubka wyrostka sutkowatego, zaczynając od przedsionka. Okrągłe okienko jest punktem orientacyjnym do identyfikacji podstawnego skrętu ślimaka w uchu środkowym i działa jako ograniczająca przednia granica.</li>
	<li>Otwórz tylne cięcie niżej, aż znajdzie się poniżej poziomu podstawowego skrętu ślimaka.</li>
</ol>
5. Usunięcie bocznej i dolnej części kości skroniowej (<silna klasa="xfig">Rysunek 5E)
<ol>
	<li>Zidentyfikuj okrągłe okienko, podstawowy skręt ślimaka i kanał tętnicy szyjnej wewnętrznej (ICA) przed zwojem podstawy ślimaka. Obserwuj ICA w przedniej części ucha środkowego, przyśrodkowo do otworu trąbki Eustachiusza.</li>
	<li>Wywiercić w dnie ucha środkowego równolegle do zwoju podstawowego łączącego nacięcie między ICA a nacięciem tylnym do FN poniżej przedsionka.</li>
	<li>Użyj nożyczek lub mikroostrza do przecięcia FN, aby uniknąć jego nadmiernego wiercenia, ponieważ FN służy jako dobry punkt orientacyjny dla orientacji podczas usuwania ślimaka i po usunięciu ślimaka. 
	UWAGA: Mięsień strzemiączkowy jest przecinany za pomocą FN, ponieważ został odsłonięty w dolnym cięciu.</li>
	<li>Kontynuuj wiercenie, aby stworzyć przestrzeń pod zwojem podstawowym, aby ułatwić przeprowadzenie gorszego cięcia. 
	UWAGA: W zależności od indywidualnej anatomii gruźlicy, bulbus jugulare może zostać otwarty podczas wiercenia dna ucha środkowego.</li>
	<li>Wywierć przednio-bocznie do ICA, aby otworzyć staw żuchwowy.</li>
	<li>Po otwarciu stawu żuchwowego zidentyfikuj ICA i skręt podstawny. Następnie należy usunąć boczne części gruźlicy bez ryzyka uszkodzenia ślimaka.</li>
	<li>Wytnij górne części na dachu ucha środkowego, rozwiercając nakrywkę od poziomu ucha środkowego aż do zatoki esicy. 
	UWAGA: Zazwyczaj łatwo jest utworzyć otwór na poziomie CUW.</li>
</ol>
6. Usuwanie przedniej i dolnej części TB (<silna klasa="xfig">Rysunek 5D,E)
<ol>
	<li>Rozwiercić ICA przez ucho środkowe. ICA wykonuje zwrot przyśrodkowo do przodu w stosunku do ślimaka; W ten sposób ten zwój służy jako przednia granica ślimaka.</li>
	<li>Kontynuować wiercenie powyżej od zakrętu ICA, równolegle do trasy ICA. Kontynuuj wiercenie przyśrodkowo zgodnie z przebiegiem ICA i usuń nadmiar kości zarówno w górę, jak i w dół ICA. 
	UWAGA: Nie należy wysuwać wiercenia do tyłu ICA, aby uniknąć uszkodzenia ślimaka.</li>
	<li>Wywiercić niżej wzdłuż podstawowego zwoju ślimaka, około 1-1,5 cm na cięcie w tylnych częściach.</li>
	<li>W przypadku gorszego cięcia należy pozostawić odpowiedni margines bezpieczeństwa między skrętem podstawowym a wierceniem, aby zapewnić zachowanie ślimaka. 
	UWAGA: w razie potrzeby nadmiar kości w tym miejscu można ostrożnie wygładzić po usunięciu ślimaka.</li>
</ol>
7. Usuwanie przyśrodkowych części gruźlicy (<silna klasa="xfig">Rysunek 5F)
<ol>
	<li>Podążaj za twarzą w kierunku GG na podniebieniu ucha środkowego.</li>
	<li>Odsłoń GG za pomocą nieoszlifowanego wiertła diamentowego o średnicy 3 mm i kontynuuj wiercenie przez nakrywkę do środkowego dołu.</li>
	<li>Wywierć GG od środkowego dołu i podążaj wzdłuż FN proksymalnie do GG do IAC.</li>
	<li>Użyj IAC, GG i SSC jako punktów orientacyjnych, aby utworzyć linię cięcia przyśrodkowego do ślimaka. IAC tworzy kąt około 70° z podstawowym skrętem ślimaka. Wykonać wiercenie od proksymalnych części IAC do proksymalnych części poziomego segmentu ICA.</li>
	<li>Połącz linię przyśrodkową, najpierw wystawiając IAC na dolne cięcie.</li>
</ol>
8. Finalizacja ekstrakcji
<ol>
	<li>Użyj cienkiego wiertła diamentowego (np. wiertła 3-5 mm), aby w razie potrzeby ostrożnie naszlifować nadmiar kości wokół ślimaka, aby zmniejszyć rozmiar próbki.</li>
	<li>Uważnie obserwuj kolor kości podczas przycinania; jeśli kość zacznie się zmieniać, stając się półprzezroczysta, przerwij wiercenie.</li>
	<li>Teraz powinien być kawałek o wymiarach 1,5 cm x 1,5 cm zawierający nienaruszony ślimak. Zachowaj orientację, używając FN, strzemiączek i RW.</li>
</ol>

<ol><li>Francis, H. W., Niparko, J. K. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFrancis%2C+HW+%22Temporal+Bone+Dissection+Guide%22">Temporal Bone Dissection Guide</a>. , Thieme Medical Publishers, Inc., New York. (2016).</li>
<li>Rask-Andersen, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+cochlea%3A+anatomical+characteristics+and+their+relevance+for+cochlear+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+Record%3A+Advances+in+Integrative+Anatomy+and+Evolutionary+Biology%22%5BJournal%5D)">Human cochlea: anatomical characteristics and their relevance for cochlear implantation.</a> The Anatomical Record: Advances in Integrative Anatomy and Evolutionary Biology. 295 (11), 1791-1811 (2012).</li>
<li>Yost, W. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aYost%2C+WA+%22Fundamentals+of+Hearing%2C+An+Introduction%22">Fundamentals of Hearing, An Introduction</a>. , 5th edition, Emerald Group Publishing Limited. Bingley, WA, UK. (2006).</li>
<li>Putz, R., Pabst, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPutz%2C+R+%22Sobotta-Atlas+of+Human+Anatomy%3A+Head%2C+Neck%2C+Upper+Limb%2C+Thorax%2C+Abdomen%2C+Pelvis%2C+Lower+Limb%22">Sobotta-Atlas of Human Anatomy: Head, Neck, Upper Limb, Thorax, Abdomen, Pelvis, Lower Limb</a>. , Elsevier Health Sciences. (2006).</li>
<li>Wurfel, W., Lanfermann, H., Lenarz, T., Lenarz, T., Majdani, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cochlear+length+determination+using+cone+beam+computed+tomography+in+a+clinical+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Hearing+Research%22%5BJournal%5D)">Cochlear length determination using cone beam computed tomography in a clinical setting.</a> Hearing Research. 316, 65-72 (2014).</li>
<li>Avci, E., Nauwelaers, T., Lenarz, T., Hamacher, V., Kral, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variations+in+microanatomy+of+the+human+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Variations in microanatomy of the human cochlea.</a> The Journal of Comparative Neurology. 522 (14), 3245-3261 (2014).</li>
<li>Biedron, S., Prescher, A., Ilgner, J., Westhofen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+internal+dimensions+of+the+cochlear+scalae+with+special+reference+to+cochlear+electrode+insertion+trauma%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">The internal dimensions of the cochlear scalae with special reference to cochlear electrode insertion trauma.</a> Otology & Neurotology. 31 (5), 731-737 (2010).</li>
<li>Lane, J., Witte, R., Driscoll, C., Camp, J., Richard, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+microscopy+of+the+middle+and+inner+ear%3A+Part+I%3A+CT+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Anatomy%22%5BJournal%5D)">Imaging microscopy of the middle and inner ear: Part I: CT microscopy.</a> Clinical Anatomy. 17 (8), 607-612 (2004).</li>
<li>Sipari, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cochlear+implantation+with+a+novel+long+straight+electrode%3A+The+Insertion+results+evaluated+by+imaging+and+histology+in+human+temporal+bones%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">Cochlear implantation with a novel long straight electrode: The Insertion results evaluated by imaging and histology in human temporal bones.</a> Otology & Neurotology. 39 (9), e784-e793 (2018).</li>
<li>Iso-Mustajärvi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+slim+modiolar+electrode+array+for+cochlear+implantation%3A+A+radiological+and+histological+study%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">A new slim modiolar electrode array for cochlear implantation: A radiological and histological study.</a> Otology & Neurotology. 38 (9), e327-e334 (2017).</li>
<li>Teymouri, J., Hullar, T., Holden, T., Chole, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Verification+of+computed+tomographic+estimates+of+cochlear+implant+array+position%3A+a+micro-CT+and+histologic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">Verification of computed tomographic estimates of cochlear implant array position: a micro-CT and histologic analysis.</a> Otology & Neurotology. 32 (6), 980-986 (2011).</li>
<li>Postnov, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+micro-CT+scanning+as+an+innovative+tool+for+evaluation+of+the+surgical+positioning+of+cochlear+implant+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Otolaryngologica%22%5BJournal%5D)">High resolution micro-CT scanning as an innovative tool for evaluation of the surgical positioning of cochlear implant electrodes.</a> Acta Otolaryngologica. 126 (5), 467-474 (2006).</li>
<li>Escudé, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+size+of+the+cochlea+and+predictions+of+insertion+depth+angles+for+cochlear+implant+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Audiology+%26+Neurootology%22%5BJournal%5D)">The size of the cochlea and predictions of insertion depth angles for cochlear implant electrodes.</a> Audiology & Neurootology. 11 (suppl 1), 27-33 (2006).</li>
<li>Vaisbuch, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+approach+for+rapid+and+minimally+traumatic+recovery+of+human+inner+ear+tissues+from+deceased+organ+donors%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">Surgical approach for rapid and minimally traumatic recovery of human inner ear tissues from deceased organ donors.</a> Otology & Neurotology. 43 (4), e519-e525 (2022).</li>
<li>Pinhasi, R., Fernandes, D., Sirak, K., Cheronet, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolating+the+human+cochlea+to+generate+bone+powder+for+ancient+DNA+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Isolating the human cochlea to generate bone powder for ancient DNA analysis.</a> Nature Protocols. 14 (4), 1194-1205 (2019).</li>
</ol>

Autorzy nie zgłaszają konfliktu interesów.

Istnieje kilka punktów orientacyjnych, których należy przestrzegać przy usuwaniu ślimaka, więc ta procedura może być wykonywana systematycznie, jeśli anatomia gruźlicy jest normalna (brak wad rozwojowych gruźlicy). Najbardziej krytycznymi elementami procedury usuwania są niższy margines i medialna proporcja między IAC a ICA. Zalecamy zachowanie nieco większego marginesu i w razie potrzeby dokładne honowanie ewentualnego nadmiaru kości po wyjęciu bloku. Ważne jest, aby unikać otwierania ślimaka, ponieważ może to spowodowa...

Ucho wewnętrzne to delikatny narząd, który zapewnia nam zmysł słuchu i równowagę. Ucho wewnętrzne znajduje się u podstawy czaszki w części skalistej kości skroniowej (TB). Gruźlica obejmuje kilka kluczowych struktur anatomicznych, które skręcają się i obracają wewnątrz kości. W ten sposób gruźlica tworzy trudną do zrozumienia jednostkę anatomiczną1. Rask-Andersen i wsp., w swoim przeglądzie2, omawiają historię badań nad ślimakiem i zrozumienie jego mikrostruktur.
Ucho wewnętrzne obejmuje kanały półkoliste, przedsionek i ślimak. Trzy kanały półkoliste i przedsionek tworzą układ przedsionkowy, w którym znajdują się receptory równowagi3,4. Ślimak jest strukturą przypominającą muszlę, która jest połączona z przedsionkiem. Ślimak przekształca mechaniczne fale dźwiękowe w sygnały neuronowe. Normalny ślimak wykonuje dwa i pół obrotu i kończy się na wierzchołku ślimaka. Średnia długość przewodu ślimakowego wynosi 37,6 mm; Istnieje jednak znaczna różnorodność między osobami<klasa SUP="xref">5. Ponadto ucho wewnętrzne można podzielić na błędnik kostny (torebka uszna), utworzony przez kostne brzegi ucha wewnętrznego, oraz błędnik błoniasty wewnątrz torebki usznej. Nerw z ucha wewnętrznego przechodzi przez wewnętrzny kanał akustyczny (IAC) i dzieli się na włókna nerwowe przedsionkowe i nerw ślimakowy. Nerw ślimakowy jest utworzony z aksonów spiralnych neuronów zwojowych, które leżą w modiolusie ślimaka cochlea3. Nerw twarzowy (FN) przechodzi również przez IAC; przechodzi górnie wzdłuż ślimaka, wykonując ciasny, około 110° skręt do tyłu i w dół przez ucho środkowe, aż opuszcza gruźlicę przez jamę wyrostka sutkowatego od otworu rylcowo-sutkowego u podstawy czaszki1,4. W pobliżu ślimaka znajduje się kilka innych istotnych struktur, np. kosteczki słuchowe (młoteczek, kowadełko i strzemiączko) w uchu środkowym, tętnica szyjna (ICA) (która powstaje poniżej ślimaka, a następnie skręca przyśrodkowo na poziomie podstawnego skrętu ślimaka), płytka środkowego dołu (tegmen) i bulbus jugulare, który jest niższy od ucha środkowego. Dostęp do ślimaka podczas operacji jest zwykle wykonywany przez komórki powietrzne wyrostka sutkowatego. Największa komórka powietrzna w jamie wyrostka sutkowatego nazywana jest antrum, która komunikuje się z uchem środkowym za pośrednictwem aditus. Rozmiar i organizacja tych komórek powietrznych wyrostka sutkowatego różnią się znacznie, nawet pod względem "normalnej anatomii". Wypukłość bocznego kanału półkolistego jest zwykle obecna na dnie antrum. Anatomia kości skroniowej z wieloma punktami orientacyjnymi jest przedstawiona w Rysunek 1 i <silna klasa="xfig">Rysunek 2. Anatomia radiologiczna gruźlicy z punktu widzenia środkowego dołu jest przedstawiona na rysunku Rysunek 3.
Ekstrakcja ślimaka z ludzkiej kości skroniowej może być wymagana do różnych badań ucha wewnętrznego. W badaniach histologicznych ucho wewnętrzne jest zwykle ekstrahowane z kości skroniowej, aby ułatwić jego przetwarzanie histologiczne; podobnie niektóre urządzenia do mikrotomografii komputerowej (mikro-CT) mają stosunkowo ograniczoną przestrzeń, aby pomieścić próbkę i mogą nie radzić sobie z pełnymi kośćmi skroniowymi; Dodatkowo, jakość obrazu może być poprawiona, gdy ślimak został odizolowany6,7,8,9. Szczególnie w przypadku opracowywania i testowania nowych matryc elektrod implantu ślimakowego przeprowadza się przetwarzanie histologiczne i/lub mikrotomografię komputerową w celu określenia położenia elektrody w środku ślimaka9,10,11,12. Ponadto histologię można przeprowadzić przy zmniejszonym zużyciu roztworów przetwórczych, gdy próbka jest mała.
Niemniej jednak, ekstrakcja ślimaka wymaga dogłębnego zrozumienia otaczających struktur, zwłaszcza gdy celem jest uniknięcie nadmiaru kości w próbce. Na pierwszy rzut oka anatomia gruźlicy może wydawać się trudna do zrozumienia. Jednak ostatecznie struktury anatomiczne wewnątrz gruźlicy służą jako granice wokół ślimaka, które można wykorzystać podczas ekstrakcji. Przypadkowe otwarcie ślimaka może prowadzić do urazowego uszkodzenia delikatnych struktur wewnątrz tej tkanki, a tym samym do wadliwej próbki, co może prowadzić do konieczności wyrzucenia ślimaka.
Ten artykuł przedstawia metodę niezawodnego wydobywania całego ślimaka z kości skroniowej poprzez wiercenie podczas obserwacji następujących anatomicznych punktów orientacyjnych.

<table><tbody><tr><td>Ostrza wiertnicze do wiertarki</td><td></td><td>Nie dotyczy Patrz</td><td>poniżej. Ostrza wiertnicze powinny być odpowiednie dla Twojego systemu wiertniczego</td></tr><tr><td>Wiertarka chirurgiczna o dużej prędkości</td><td>&nbsp; Medtronic</td><td>https://www.medtronic.com/us-en/healthcare-professionals/products/neurological/powered-surgical-instruments/midas-rex-mr8.html</td><td>Istnieje wielu dostawców wierteł chirurgicznych z różnych kategorii. Zalecany jest ten z systemem nawadniania (np. Stryker, Bbraun, Medtronic itp.)</td></tr><tr><td>Mikroskop operacyjny</td><td>Zeiss</td><td>https://www.leica-microsystems.com/products/surgical-microscopes/</td> <td>mikroskop do mikrochirurgicznego przygotowania kości skroniowej. Wysoce zalecane mikroskopy to Zeiss, Leica itp.</td></tr><tr><td>Uchwyt kości skroniowej</td><td>Stortz</td><td>N/A</td><td>Cup do mocowania kości skroniowej podczas wiercenia</td></tr></tbody></table>

ekstrakcja ślimaka z ludzkiej kości skroniowej: protokół zwłok

Extracting the Cochlea from a Human Temporal Bone: A Cadaveric Protocol

Ekstrakcja ślimaka ze zwłok ludzkiej kości skroniowej może być wymagana do różnych badań ucha wewnętrznego. W celu oceny histologicznej ucho wewnętrzne musi zostać usunięte z kości skroniowej, aby ułatwić przetwarzanie histologiczne; Podobnie, niektóre urządzenia do tomografii mikrokomputerowej są zbyt małe, aby pomieścić całe kości skroniowe; Dodatkowo jakość obrazu może ulec poprawie, gdy ślimak jest odizolowany.
Ucho wewnętrzne znajduje się w części skroniowej kości skroniowej. Ucho wewnętrzne można podzielić na błędnik kostny lub torebkę uszną i błędnik błoniasty wewnątrz torebki usznej. Ponadto ucho wewnętrzne można podzielić na układ przedsionkowy (kanały półkoliste i przedsionek) oraz ślimak. Ocena lokalizacji i orientacji ślimaka w kości skroniowej jest trudna, ponieważ jest on osadzony w strukturach kostnych i dlatego nie można go bezpośrednio uwidocznić. Niemniej jednak istnieją odrębne struktury anatomiczne, które mogą pomóc w kierowaniu procesem, aby umożliwić niezawodne wiercenie ślimaka. Punktami orientacyjnymi w tylnych częściach ślimaka są nerw twarzowy, kanały półkoliste i przedsionek. Pośrodku dolne granice ślimaka są identyfikowane przez okrągłe okienko i podstawowy obrót ślimaka. W przedniej granicy napotyka się tętnicę szyjną; punktem orientacyjnym dla górnej granicy jest zwój kolanowy (GG) nerwu twarzowego. Struktury przyśrodkowe są określone przez lokalizacje wewnętrznego kanału słuchowego, kanału półkolistego górnego i kanału tętnicy szyjnej wewnętrznej.
W tym artykule przedstawiamy metodę niezawodnego wydobywania ślimaka z kości skroniowej poprzez wiercenie, podążając za kilkoma anatomicznymi punktami orientacyjnymi.

W przypadku powodzenia ślimak jest wyodrębniany z kości skroniowej bez konieczności otwierania przedstankowej komory ślimaka. W przypadku niepowodzenia dochodzi do powstania otworu wewnątrz ślimaka oraz uszkodzenia błonastego labiryntu tkanki.
Niniejsza metoda ekstrakcji została zastosowana w 36 zwłokowych TB podczas naszych badań nad elektrodami implantów ślimakowych (Tabela 1). W 33 TB ekstrakcja przebiegła pomyślnie, nie powodując żadnych uszkodzeń ślimaka. W dwóch z 36 TB ...

Ten artykuł przedstawia niezawodną metodę ekstrakcji ludzkiego ślimaka z kości skroniowej zwłok poprzez wiercenie, podążając za wyraźnymi anatomicznymi punktami orientacyjnymi.

Ekstrakcja ślimaka z ludzkiej kości skroniowej: protokół zwłok

The extraction of the cochlea from a cadaver human temporal bone may be required for different studies of the inner ear. For histological evaluations, the ...

Metoda ta jest istotna, ponieważ pokazuje, w jaki sposób ślimak można uzyskać do celów badawczych z kości skroniowej zwłok poprzez śledzenie kluczowych struktur anatomicznych wewnątrz ślimaka. Ta technika wymaga ciężkiego wiercenia chirurgicznego. Nauczenie się tego procesu może wymagać praktyki i powodować ryzyko urazu ślimaka.Ponadto anatomia kości skroniowej może być wyzwaniem dla początkujących. Wizualna demonstracja tej metody zapewnia techniczny wgląd w wiercenie i eksponowanie anatomicznych punktów orientacyjnych, które nie mogą być przedstawione w formie pisemnej lub graficznej tak dobrze, jak w formie wideo. Zacznij od otwarcia zagłębienia twarzowego między nerwem twarzowym a zewnętrznym kanałem słuchowym za pomocą dwumilimetrowego wiertła diamentowego.Znajdź pozycję struny bębenkowej między nerwem twarzowym a zewnętrznym kanałem słuchowym i ostrożnie odłącz strunę bębenkową. Po otwarciu tympanotomii tylnej należy zidentyfikować i otworzyć staw inkubapedowy. Przetnij ścięgno strzemiączkowe mikronożyczkami, aby zapobiec zwichnięciu strzemiączka podczas dolnego cięcia ekstrakcyjnego.Następnie wyciągnij kowadełko i wywierć przyporę. Wyodrębnij tylną część kostnego zewnętrznego przewodu słuchowego z młoteczkiem, błoną bębenkową i skórą. Usuń tkankę miękką, a dokładniej pozostałość błony bębenkowej, wraz z resztą skóry zewnętrznego przewodu słuchowego za pomocą ssania i mikrodysektorium.Wywierć wzdłuż tylnej strony części bębenkowej nerwu twarzowego. Utwórz linię cięcia w środkowym dole, używając górnego kanału półkolistego jako odniesienia i kontynuuj z nią przez nakrywkę. Otwórz górny kanał półkolisty z górnego podejścia przez środkowy dół.Następnie otwórz boczny kanał półkolisty i tylny kanał półkolisty. Kontynuuj wiercenie pionowo w kierunku czubka wyrostka sutkowatego, zaczynając od przedsionka, a następnie otwórz tylne cięcie niżej, aż poniżej poziomu podstawnego zwoju ślimaka. Odsłoń zwój kolanowy nerwu twarzowego za pomocą wiertła diamentowego.Podążaj za nerwem twarzowym do wewnętrznego kanału słuchowego i odkryj punkty orientacyjne. Następnie otwórz błędnikowy odcinek nerwu twarzowego i podążaj za nim do wewnętrznego przewodu słuchowego. Przewiercić wewnętrzny przewód słuchowy.Wywierć przestrzeń w przedniej części ucha środkowego, aby otworzyć staw żuchwy. Zidentyfikuj okrągłe okno, podstawowy skręt ślimaka i kanał tętnicy szyjnej wewnętrznej przed zwojem podstawy ślimaka. Poszukaj tętnicy szyjnej wewnętrznej z przodu ucha środkowego, przyśrodkowo do ujścia trąbek Eustachiusza.Użyj nożyczek, aby przeciąć nerw twarzowy. Wywierć dno ucha środkowego pod skrętem podstawowym, aby zrobić miejsce na dolne cięcie. Następnie wywierć przednio-bocznie do tętnicy szyjnej wewnętrznej, aby otworzyć staw żuchwowy.Po otwarciu stawu żuchwowego zlokalizuj tętnicę szyjną wewnętrzną i skręt podstawny, a następnie usuń boczne części kości skroniowej bez uszkodzenia ślimaka. Rozwierć nakrywkę od poziomu ucha środkowego do zatoki esicy i kontynuuj cięcie do zatoki. Rozwiercić tętnicę szyjną wewnętrzną przez ucho środkowe.Kontynuuj wiercenie równoległe w górę od skrętu tętnicy szyjnej wewnętrznej. Usuń nadmiar kości powyżej i poniżej tętnicy. Następnie wydrąż około jednego do 1,5 centymetra wzdłuż podstawowego zwoju ślimaka.Wykorzystując przyśrodkowe części tętnicy szyjnej i wewnętrzny przewód słuchowy jako punkty odniesienia, uformuj linię nacięcia przyśrodkową do ślimaka. Wykonaj wiercenie od bliższego wewnętrznego przewodu słuchowego do bliższych części poziomego odcinka tętnicy szyjnej wewnętrznej. Na koniec połącz linię przyśrodkową, wystawiając wewnętrzny przewód słuchowy na dolne cięcie.Sfinalizuj połączenie z tylnym cięciem do przyśrodkowego cięcia i wydobądź ślimak. Za pomocą cienkiego wiertła diamentowego delikatnie przytnij nadmiar kości wokół ślimaka. W tym momencie powinien znajdować się kawałek o wymiarach 1,5 na 1,5 centymetra zawierający nienaruszony ślimak.Upewnij się, że utrzymujesz orientację za pomocą nerwu twarzowego, strzemiączka i okrągłego okienka. Udaną ekstrakcję ślimaka przeprowadzono u 33 z 36 zwłok. Miara A to największa odległość od okrągłego okna do ściany bocznej, podczas gdy miara B to prostopadła odległość ślimaka.Technika ta pomaga zapewnić systematyczne podejście do uzyskania nienaruszonego, całego ślimaka. Technika ta jest szczególnie przydatna w przedklinicznych badaniach nad implantem ślimakowym. Dodatkowo może być przydatny do uzyskiwania mniejszych próbek do innych celów w badaniach ślimakowych.na przykład do mikrotomografii komputerowej.

extracting-the-cochlea-from-a-human-temporal-bone-a-cadaveric-protocol

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film demonstruje metodę oceny synaps wstęgowych w określonych regionach ślimaka myszy. Wykorzystuje techniki barwienia immunologicznego i obrazowania konfokalnego w celu identyfikacji funkcjonalnych synaps w różnych regionach częstotliwości w każdym skręcie ślimaka.

Ocena synaps wstęgowych w określonych obszarach częstotliwości ślimaka myszy

Obrazowanie na żywo ślimaka embrionalnego ssaka jest wyzwaniem, ponieważ procesy rozwojowe przebiegają w tempie czasowym przez dziesięć dni. W tym miejscu przedstawiamy metodę hodowli, a następnie obrazowania embrionalnej tkanki eksplantatu ślimaka pobranej od fluorescencyjnej myszy reporterowej w ciągu pięciu dni.

Długoterminowe obrazowanie poklatkowe eksplantatów ślimaka myszy

Istnieją różne metody wprowadzania czynników ototoksycznych do ślimaków modeli zwierzęcych. Przedstawiono protokół chirurgiczny dostarczania środków ototoksycznych do wnęki okrągłego okna. Procedura jest niezawodna, tworzy ukierunkowane zmiany wewnątrzślimakowe i pozwala uniknąć mechanicznych uszkodzeń mikroarchitektury. Możliwe jest badanie samonaprawy/regeneracji ślimaka.

Mysie podejście oparte na okrągłym oknie do dostarczania czynników ototoksycznych: szybka i niezawodna technika indukowania zwyrodnienia komórek ślimakowych

Pierwotne rzęski wpływają na różne szlaki sygnałowe. Ślimak ssaków jest idealny do badania sygnalizacji biegunowości komórek płaskich (PCP). Dysfunkcja rzęsek wpływa na rozrost ślimaka, wzór komórkowy i orientację komórek rzęsatych, odczyty PCP. Naszym celem jest analiza sygnalizacji PCP w ślimaku myszy za pomocą analizy fenotypowej, immunohistochemii i skaningowej mikroskopii elektronowej.

Ocena fenotypów polaryzacji komórek płaskich w ślimaku myszy z mutacją ciliopatii

Przedstawiamy metodę izolowania dorosłego organu Cortiego jako trzech nienaruszonych zwojów ślimaka (wierzchołek, środek i podstawa). Demonstrujemy również procedurę barwienia immunologicznego za pomocą fluorescencyjnie znakowanych przeciwciał. Razem techniki te pozwalają na badanie komórek rzęsatych, komórek podporowych i innych typów komórek znajdujących się w ślimaku.

Rozwarstwienie całej góry i immunofluorescencja ślimaka dorosłej myszy

Celem tego protokołu jest zademonstrowanie przygotowania, hodowli, leczenia i barwienia immunologicznego eksplantatów ślimakowych u noworodków myszy. Technika ta może być wykorzystana jako narzędzie przesiewowe in vitro w badaniach słuchu.

Technika eksplantatu ślimakowego u noworodków jako narzędzie przesiewowe in vitro w badaniach słuchu

Celem tego protokołu jest zademonstrowanie skutecznej metody decelularyzacji i odkamieniania ślimaków myszy w celu wykorzystania ich jako rusztowań do zastosowań inżynierii tkankowej.

Protokół decelularyzacji ślimaków myszy w inżynierii tkankowej ucha wewnętrznego

Ten manuskrypt opisuje eksperymentalny protokół oceny cech morfologicznych i statusu funkcjonalnego synaps wstęgowych u normalnych myszy. Prezentowany model nadaje się również do modeli z ograniczeniami synaptopatii ślimakowej wywołanych hałasem i związanych z wiekiem. Omówiono również korelacyjne wyniki poprzednich badań na myszach.

Ocena morfologiczna i funkcjonalna synaps wstęgowych w określonych obszarach częstości ślimaka myszy

Ten artykuł przedstawia zmodyfikowaną metodę przygotowania powierzchni ślimaka, która wymaga odwapnienia i użycia kleju komórkowego i tkankowego do przyklejenia kawałków nabłonka ślimaka do 10 mm okrągłych szkiełek nakrywkowych do immunohistochemii u dorosłych ślimaków myszy.

Przygotowanie powierzchni ślimaka u dorosłej myszy

Ten artykuł opisuje technikę szybkiego cięcia kości skroniowej człowieka, która wykorzystuje mikropiłę z podwójnymi diamentowymi ostrzami do generowania cienkich plasterków do szybkiego odwapnienia i analizy immunohistochemii kości skroniowej.

Szybkie cięcie kości skroniowej człowieka w celu oceny patologii ucha środkowego związanej z COVID-19

Tutaj prezentujemy szczegółowy protokół izolacji i hodowli pierwotnych komórek rzęsatych ślimaka od myszy. Początkowo narząd Cortiego został wypreparowany z noworodków (w wieku 3-5 dni) mysich ślimaków pod mikroskopem. Następnie komórki trawiono enzymatycznie do zawiesiny jednokomórkowej i identyfikowano za pomocą immunofluorescencji po kilku dniach w hodowli.

Izolacja i hodowla pierwotnych komórek rzęsatych ślimaka od nowonarodzonych myszy

Poznaj metodę ekstrakcji ślimaka z ludzkiej kości skroniowej zwłokziej przy użyciu wiertła diamentowego. Technika ta minimalizuje urazy i jest kluczowa dla badań nad implantami ślimakowymi oraz neurobiologii słuchu.

Ekstrakcja ślimaka z ludzkiej kości skroniowej: protokół zwłok

Przeglądaj więcej filmów