14 października 2022
Obecny protokół opisuje ekstrakcję lumikanu z błony owodniowej (AM) i warunki ich przechowywania jako ekstraktu AM (AME) w temperaturze -20 °C, 4 °C i temperaturze pokojowej (RT) przez 6, 12, 20 i 32 dni w celu ilościowego określenia jego białek i stężenia lumikanu.
Metoda ta ma na celu zademonstrowanie prostej techniki ekstrakcji białek, przydatnej do uzyskiwania obfitych białek i innych czynników. Technika ta może być wykorzystana do ekstrakcji innych czynników i białek obecnych w błonie owodniowej, a także do uzyskania białek z innych źródeł, takich jak zwierzęta i tkanki roślinne. Zacznij od rozmrożenia 100 miligramów błony owodniowej uzyskanej z banku owodni.
Po rozmrożeniu dodaj 10 mililitrów sterylnego zbilansowanego roztworu soli do szalki Petriego i myj membranę przez dwie minuty. Następnie wyjąć zużyty zbilansowany roztwór soli do zlewki i powtarzać proces, aż na szalce Petriego nie będzie widoczny ślad podłoża glicerolowego. Następnie dodaj 10 mililitrów dypazy II do membrany i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla przez 30 minut.
Pod koniec inkubacji przeprowadzić mechaniczną deepitelializację za pomocą gumowego skrobaka do komórek policjanta. Następnie zwizualizuj błonę pod odwróconym mikroskopem, aby potwierdzić denabłonializację. Następnie przemyj pozbawioną nabłonka błonę owodniową sterylnym zrównoważonym roztworem soli, jak pokazano wcześniej, i umieść ją w dwumililitrowej probówce mikrowirówkowej.
Następnie zanurz probówkę zawierającą membranę w ciekłym azocie na 40 minut. Po zamrożeniu ciekłym azotem należy ręcznie zmielić membranę przez dwie do trzech minut w moździerzu, wstępnie schłodzonym w temperaturze minus 85 stopni Celsjusza, aż do uzyskania drobnego proszku. Następnie dodaj 2,5 mililitra roztworu inhibitora proteazy i rozpuścij drobno sproszkowaną błonę.
Oczyść ścianki zaprawy za pomocą noża do skalpela i przenieś mieszaninę do pięciomililitrowej tuby. Obracaj rurkę przez 30 sekund. Następnie homogenizować mieszaninę tkankową, najpierw odwirowując w stężeniu 34 g przez 20 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza, a następnie ponownie odwirowując w temperaturze 3,360 G przez 20 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza.
Pod koniec wirowania zebrać supernatant, który jest ekstraktem z błony owodniowej, w nowej probówce. Następnie podnieś 0,7 mililitra w innej dwumililitrowej probówce mikrowirówkowej dla różnych punktów czasowych i temperatur. Na całkowitą ilość białka i stężenie lumikanu w ekstrakcie z błony owodniowej miał wpływ czas i warunki przechowywania.
Stężenie białka podstawowego było podobne wśród wszystkich ekstraktów z błon owodniowych. Jednak znacznie wysokie stężenie białka odnotowano w ekstrakcie przechowywanym przez 32 dni w temperaturze czterech stopni Celsjusza i 20 dni w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza. Lumikan w ekstrakcie z błony owodniowej był istotnie wyższy w próbce przechowywanej przez okres 12 dni w porównaniu z próbkami przechowywanymi przez 30, 20 i sześć dni w temperaturze 4 i minus 20 stopni Celsjusza.
Wyniki te sugerowały, że odpowiedni czas i temperatura przechowywania do osiągnięcia najwyższego stężenia lumikanu to 12 dni w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza. Zachowaj najwyższą ostrożność podczas uziemiania zamrożonej błony owodniowej. Uziemienie powinno być delikatne, ponieważ może wypaść z zaprawy.
Potrzebne są dalsze badania w celu określenia roli ekstraktu z błony owodniowej lumikanu w komórkach nabłonka rogówki oraz określenia idealnej dawki lumikanu do reepitelializacji rogówki.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół opisuje metodę ekstrakcji lumikanu z błony owodniowej (AM) oraz jego przechowywania w różnych warunkach. Badanie określa ilościowo stężenie białka i lumikanu w różnych odstępach czasu.
Niezawodna ekstrakcja i kwantyfikacja lumikanu z ludzkiej błony owodniowej umożliwia standaryzowany dostęp do bioaktywnego składnika macierzy o potencjalnym znaczeniu dla badań nad regeneracją tkanek i oka. Zrozumienie stabilności lumikanu w określonych warunkach przechowywania wspiera powtarzalność procesów i dostarcza informacji niezbędnych do podejmowania decyzji w zakresie bioprocesingu dla zastosowań translacyjnych. Niniejszy protokół ustanawia ekstrakcję lumikanu jako możliwość wielokrotnego wykorzystania w badaniach i rozwoju w obszarze biofarmacji we wczesnych fazach oraz w opracowywaniu biomateriałów.
Niniejszy protokół ekstrakcji i kwantyfikacji wpisuje się w kontinuum od wczesnych etapów odkryć do badań przedklinicznych, wspierając zarówno badania oparte na hipotezach, jak i translacyjny rozwój biomateriałów.