Name: Ultrasonografia o wysokiej rozdzielczości do analizy ortotopowych guzów ATC w genetycznie zmodyfikowanym modelu myszy (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-10-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 41 s
Description: Poznaj ultrasonografię wysokiej rozdzielczości do monitorowania guzów ATC w modelu myszy. Ta nieinwazyjna metoda umożliwia w czasie rzeczywistym obserwację dynamiki wzrostu nowotworu tarczycy w badaniach przedklinicznych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

To badanie nie otrzymało żadnego konkretnego grantu od publicznych, komercyjnych czy nienastawionych na zysk agencji finansujących.

Niniejsze badanie zostało przeprowadzone za zgodą Komitetu ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania Uniwersytetu Syczuańskiego. TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; W tym badaniu użyto transgenicznych myszy Trp53Δex2-10/Δex2-10 10 (patrz tabela materiałów). W razie potrzeby etapy protokołu mogą być modyfikowane dla różnych gatunków zwierząt. Wykorzystano tu dwanaście myszy, w tym sześć samic i sześć samców, o średnim wieku 93 dni.
1. Przygotowanie eksperymentalne
<ol>
	<li>Włącz system ultrasonograficzny (patrz Spis materiałów) i utwórz nowy folder do przechwytywania obrazów i zbierania danych. Wybierz sondę liniową 40 MHz i kliknij wzór tkanki powierzchownej, aby aktywować przetwornik tkanek powierzchownych. Użyj "trybu B" do obrazowania tarczycy (<klasa silna = "xfig">Rysunek 1A). 
	UWAGA: Tryb B to podstawowy tryb obrazowania ultrasonograficznego. Wygląd obrazów ultrasonograficznych opiera się na fizycznych interakcjach dźwięku z tkankami w ciele. Obrazy w trybie B są tworzone jako szare obrazy11,12.</li>
	<li>Trzymaj myszy w specjalnych klatkach ze swobodnym dostępem do jedzenia i wody. Umieść klatkę na dodatkowym urządzeniu grzewczym (patrz Tabela materiałów), aby zapewnić termoregulację.</li>
	<li>Upewnij się, że wystarczająca ilość izofluranu w parowniku iO2 w zbiorniku. Jeśli zapasy są niewystarczające, wymień zbiorniki na nowe.</li>
	<li>Wyczyść platformę do obrazowania zwierząt sterylną solą fizjologiczną i włącz przycisk podgrzewania. Sprawdź, czy temperatura wynosi 38-40 °C przed umieszczeniem zwierzęcia na platformie (<silna klasa="xfig">Rysunek 1C).</li>
</ol>
2. Przygotowanie zwierząt do obrazowania
<ol>
	<li>Włącz waporyzator izofluranu. Przenieś mysz z klatki do pudełka znieczulającego.</li>
	<li>Znieczulenie zwierzęcia za pomocą mieszaniny 1%-2% izofluranu z parownika i tlenu płynącego z prędkością 0,8 l/min.</li>
	<li>Nałóż krem do depilacji od klatki piersiowej do szyi, odczekaj 30 sekund, a następnie całkowicie zetrzyj krem i sierść. Dokładnie spłucz obszar i otaczające go futro ciepłą sterylną solą fizjologiczną.</li>
	<li>Umieść znieczulone zwierzę na podgrzewanej platformie. Zakryj pysk stożkiem nosowym podłączonym do wylotu znieczulenia (<silna klasa="xfig">Rysunek 2A, B). 
	UWAGA: Mysz musi być całkowicie uspokojona w ciągu 1-2 minut. Jeśli zwierzę jest nadal aktywne, należy przeprowadzić przedłużoną indukcję izofluranu do momentu, gdy zwierzę przestanie wykazywać odruch odstawienia pedału. Upewnij się, że zwierzę oddycha stabilnie.</li>
	<li>Podczas obrazowania monitoruj tętno myszy przez podgrzewaną platformę. 
	UWAGA: System obrazowania ultrasonograficznego wyposażony jest w monitor pracy serca.</li>
	<li>Użyj taśmy klejącej, aby przymocować kończyny myszy do podgrzewanej platformy, tak aby zwierzę znajdowało się w pozycji leżącej. Upewnij się, że stożek nosowy jest stabilnie ustawiony ze stałym przepływem gazu znieczulającego (1.5 l/min).</li>
	<li>Chroń oczy, nakładając maść okulistyczną.</li>
</ol>
3. Obrazowanie guza
<ol>
	<li>Dostosuj system obrazowania, aby zoptymalizować rozdzielczość. Ustaw następujące parametry: wzmocnienie dwuwymiarowe, 25-30 dB; głębia obrazu, 10 mm; liczba stref ogniskowych, 3; i środek, 3-6 mm. 
	UWAGA: W niniejszym badaniu użyto sondy 40 MHz. Tryb B został określony do akwizycji danych.</li>
	<li>Obficie nałóż żel ultradźwiękowy (patrz Tabela materiałów) na obszar gołej skóry.</li>
	<li>Przytrzymaj sondę i umieść ją w kontakcie z żelem ultrasonograficznym na klatce piersiowej, a następnie zeskanuj od klatki piersiowej w kierunku szyi, aby zlokalizować tarczycę (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 2C). 
	UWAGA: Delikatnie dociśnij podczas skanowania; Nadmierny nacisk na szyję zwierzęcia może powodować sapanie lub bezdech. Protokół ten został opracowany w oparciu o skanowanie ręczne, ale skanowanie zmechanizowane można również wykonać za pomocą maszyny do prowadzenia sondy, takiej jak platforma do obrazowania zwierząt, która porusza się wzdłuż osi x i y.</li>
	<li>Skanuj w górę i w dół, aby zidentyfikować granice guza i ocenić jego rozmiar i kształt. 
	UWAGA: Zdrowa tarczyca zwykle pojawia się jako hipoechogeniczna, jednorodna struktura przed tchawicą. Guzy anaplastyczne powodują, że tarczyca wydaje się znacznie większa, co można łatwo zidentyfikować za pomocą skanowania szyi (<silna klasa = "xfig">Ryc. 3).</li>
	<li>Zidentyfikuj guzy ATC na podstawie tchawicy i mięśni paskowych w zależności od lokalizacji anatomicznej i echa ultrasonograficznego. 
	UWAGA: Mięśnie paska znajdują się przed tarczycą i tchawicą, a także za tarczycą. Echo ultradźwiękowe mięśni taśmy wydaje się wyższe niż w ATC, podczas gdy tłumienie występuje za tchawicą13.
	<ol>
		<li>Na podstawie wycisku całego guza potwierdź wycinek obrazu o największej średnicy guza od lewej do prawej. Naciśnij przycisk zamrażania i zmierz średnicę guza przednio-tylnego i od lewej do prawej za pomocą suwmiarki ultradźwiękowej. 
		UWAGA: Średnica przednio-tylna musi być mierzona prostopadle do średnicy guza od lewej do prawej (<silna klasa = "xfig">Rysunek 4). Wielkość guza ATC obliczono, mnożąc średnicę przednio-tylną przez średnicę guza od lewej do prawej14. Ponieważ wielkość guzów po lewej i prawej stronie była niespójna, każda strona guza została obliczona osobno. Całkowitą wielkość guzów uzyskano przez dodanie guzów obustronnych. Rozmiary zostały zarejestrowane w celu obserwacji krzywej wzrostu ATC.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zapisz nagranie jako pętlę cine, która ułatwia przeglądanie wybranych obrazów.</li>
</ol>
4. Odzyskiwanie zwierząt
<ol>
	<li>Po skanowaniu należy wytrzeć żel do ultradźwięków i usunąć taśmę krępującą z kończyn zwierzęcia.</li>
	<li>Umieść mysz na dodatkowym urządzeniu grzewczym (krok 1.2). Połóż zwierzę na boku (<silna klasa="xfig">Rysunek 2D).</li>
	<li>Gdy mysz dojdzie do siebie (~5 min), przenieś ją z powrotem do klatki.</li>
	<li>Wyczyść system ultrasonograficzny, sondę i platformę za pomocą miękkiej szmatki i chusteczek nasączonych alkoholem izopropylowym lub aldehydem glutarowym.</li>
	<li>Wyłącz system obrazowania.</li>
</ol>

<ol><li>Maniakas, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+overall+survival+in+patients+with+anaplastic+thyroid+carcinoma%2C+2000-2019%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA+Oncology%22%5BJournal%5D)">Evaluation of overall survival in patients with anaplastic thyroid carcinoma, 2000-2019.</a> JAMA Oncology. 6 (9), 1397-1404 (2020).</li>
<li>Molinaro, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaplastic+thyroid+carcinoma%3A+From+clinicopathology+to+genetics+and+advanced+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Anaplastic thyroid carcinoma: From clinicopathology to genetics and advanced therapies.</a> Nature Reviews Endocrinology. 13 (11), 644-660 (2017).</li>
<li>Champa, D., Di Cristofano, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+anaplastic+thyroid+carcinoma+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Hormones+and+Cancer%22%5BJournal%5D)">Modeling anaplastic thyroid carcinoma in the mouse.</a> Hormones and Cancer. 6 (1), 37-44 (2015).</li>
<li>Vitiello, M., Kusmic, C., Faita, F., Poliseno, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+lymph+node+volume+by+ultra-high-frequency+ultrasound+imaging+in+the+Braf%2FPten+genetically+engineered+mouse+model+of+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Analysis of lymph node volume by ultra-high-frequency ultrasound imaging in the Braf/Pten genetically engineered mouse model of melanoma.</a> Journal of Visualized Experiments. (175), e62527(2021).</li>
<li>Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+intensity+focused+ultrasound+%28LIFU%29+triggered+drug+release+from+cetuximab-conjugated+phase-changeable+nanoparticles+for+precision+theranostics+against+anaplastic+thyroid+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials+Science%22%5BJournal%5D)">Low intensity focused ultrasound (LIFU) triggered drug release from cetuximab-conjugated phase-changeable nanoparticles for precision theranostics against anaplastic thyroid carcinoma.</a> Biomaterials Science. 27 (1), 196-210 (2018).</li>
<li>Mohammed, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+detection+and+prevention+of+pancreatic+cancer%3A+Use+of+genetically+engineered+mouse+models+and+advanced+imaging+technologies%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Medicinal+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Early detection and prevention of pancreatic cancer: Use of genetically engineered mouse models and advanced imaging technologies.</a> Current Medicinal Chemistry. 19 (22), 3701-3713 (2012).</li>
<li>Wege, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+ultrasound+including+elastography+and+contrast-enhanced+ultrasound+%28CEUS%29+for+early+detection+and+characterization+of+liver+lesions+in+the+humanized+tumor+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Hemorheology+and+Microcirculation%22%5BJournal%5D)">High resolution ultrasound including elastography and contrast-enhanced ultrasound (CEUS) for early detection and characterization of liver lesions in the humanized tumor mouse model.</a> Clinical Hemorheology and Microcirculation. 52 (2-4), 93-106 (2012).</li>
<li>Greco, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+imaging+for+the+study+of+mouse+models+of+thyroid+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Preclinical imaging for the study of mouse models of thyroid cancer.</a> International Journal of Molecular Sciences. 18 (12), 2731(2017).</li>
<li>Renault, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+ultrasound+imaging+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Radiologie%22%5BJournal%5D)">High-resolution ultrasound imaging of the mouse.</a> Journal of Radiologie. 87, 1937-1945 (2006).</li>
<li>McFadden, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53+constrains+progression+to+anaplastic+thyroid+carcinoma+in+a+Braf-mutant+mouse+model+of+papillary+thyroid+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">p53 constrains progression to anaplastic thyroid carcinoma in a Braf-mutant mouse model of papillary thyroid cancer.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (16), 1600-1609 (2014).</li>
<li>Garassini, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+principles+of+ultrasonic+diagnosis%5BTitle%5D)+AND+%22GEN%22%5BJournal%5D)">Basic principles of ultrasonic diagnosis.</a> GEN. 39 (4), 283-289 (1985).</li>
<li>Aldrich, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Basic+physics+of+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">Basic physics of ultrasound imaging.</a> Critical Care Medicine. 35, 131-137 (2007).</li>
<li>Mancini, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+ultrasound+microimaging+of+thyroid+in+living+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Morphological ultrasound microimaging of thyroid in living mice.</a> Endocrinology. 150 (10), 4810-4815 (2009).</li>
<li>Ying, M., Yung, D. M., Ho, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-dimensional+ultrasound+measurement+of+thyroid+gland+volume%3A+a+new+equation+with+higher+correlation+with+3-D+ultrasound+measurement%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+in+Medicine+%26+Biology%22%5BJournal%5D)">Two-dimensional ultrasound measurement of thyroid gland volume: a new equation with higher correlation with 3-D ultrasound measurement.</a> Ultrasound in Medicine & Biology. 34 (1), 56-63 (2008).</li>
</ol>

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Protokół ten wykorzystuje ultrasonografię o wysokiej rozdzielczości do analizy ortotopowych guzów ATC w genetycznie zmodyfikowanym modelu myszy. Model transgeniczny, z genotypem TPO-cre/ERT2; BrafCA/wt; Trp53Δex2-10/Δex2-10, został opracowany w naszym laboratorium. Zwierzęta mają nadekspresję BrafV600E i brakuje im Trp53; Dootrzewnowe wstrzyknięcie tamoksyfenu zwierzętom prowadzi do wzrostu guza po około 1 miesiącu10. Guzy rosną szybko i osiągają ...

Chociaż anaplastyczny rak tarczycy (ATC) stanowi mniej niż 2% nowotworów tarczycy, powoduje ponad 50% zgonów związanych z rakiem tarczycy rocznie. Mediana czasu przeżycia po rozpoznaniu ATC wynosi tylko około 6 miesięcy i nie są dostępne żadne metody leczenia, które znacząco poprawiałyby przeżycie1,2.
Rzadkość ATC utrudniła badania nad początkiem i agresywnym postępem choroby. Niedawno udostępniono genetycznie zmodyfikowane modele myszy, które naśladują chorobę, które dostarczają informacji na temat choroby i jej reakcji na możliwe metody leczenia3,4,5. Takie badania wymagają dokładnego obrazowania guza do pomiarów i monitorowania, które zwykle wykonuje się za pomocą rezonansu magnetycznego, tomografii komputerowej lub ultrasonografii o wysokiej rozdzielczości6,7. Ultrasonografia jest szeroko stosowana w narządach myszy. Ma przewagę nad obrazowaniem rezonansu magnetycznego i tomografią komputerową, ponieważ może być wykonywany w czasie rzeczywistym i nie naraża pacjenta na promieniowanie, a niezbędny sprzęt jest na tyle mały, że można go przenosić8,9. Jednak badania nad ciągłym monitorowaniem wzrostu ATC za pomocą ultradźwięków są rzadkie; Dlatego niniejsza praca bada użyteczność ultradźwięków w tym kontekście.
Tutaj przedstawiono protokół do korzystania z ultrasonografii o wysokiej rozdzielczości do dokładnego skanowania, monitorowania i mierzenia guzów w mysim modelu ATC.

<table><tbody><tr><td>Taśma klejąca</td><td>Winner</td><td></td><td></td></tr><tr><td>System anestezjologiczny</td><td>RWDlifescience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Brafflox/wt myszy</td><td>Współpraca z Instytutem Nauk Przyrodniczych, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, Chiny</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Komora do indukcji znieczulenia</td><td>RWDlifescience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Waciki bawełniane</td><td>Winner Krem</td><td></td><td></td></tr> do <tr><td>depilacji</td><td>Veet</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Elektryczny koc grzewczy</td><td>Petbee</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Waporyzator izofluranowy</td><td>RWDlifescience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rękawiczki medyczne</td><td>Winner</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ręczniki papierowe</td><td>Breeze</td><td>B914JY</td><td></td></tr><tr><td>TPO-cre/ERT2 myszy</td><td>Współpraca z Instytutem Nauk Przyrodniczych, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, Chiny</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trp53flox/wt mice</td><td>Współpraca z Instytutem Nauk Przyrodniczych, eBond Pharmaceutical Technology Ltd, Chengdu, Chiny</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Żel do ultrasonografii</td><td>Keppler</td><td>KL-250</td><td></td></tr><tr><td>Aparat ultrasonograficzny</td><td>VisualSonics</td><td>Vevo 3100</td><td></td></tr></tbody></table>

ultrasonografia o wysokiej rozdzielczości do analizy ortotopowych guzów atc w genetycznie zmodyfikowanym modelu myszy

High-Resolution Ultrasonography for the Analysis of Orthotopic ATC Tumors in a Genetically Engineered Mouse Model

Rak anaplastyczny tarczycy (ATC) wiąże się ze złym rokowaniem i krótką medianą czasu przeżycia, ale żadne skuteczne leczenie nie poprawia znacząco wyników. Genetycznie zmodyfikowane modele mysie, które naśladują postęp ATC, mogą pomóc naukowcom w badaniu metod leczenia tej choroby. Krzyżowanie trzech różnych genotypów myszy, TPO-cre / ERT2; BrafCA/wt; Opracowano transgeniczny model ATC Trp53Δex2-10/Δex2-10. Mysi model ATC został wywołany przez dootrzewnowe wstrzyknięcie tamoksyfenu z nadekspresją BrafV600E i delecją Trp53, a guzy powstały w ciągu około 1 miesiąca. Do zbadania inicjacji i progresji guza zastosowano ultradźwięki o wysokiej rozdzielczości, a poprzez pomiar rozmiarów guza uzyskano dynamiczną krzywą wzrostu. W porównaniu z obrazowaniem rezonansu magnetycznego (MRI) i tomografią komputerową, ultradźwięki mają zalety w obserwacji mysiego modelu ATC, takie jak to, że są nieinwazyjne, przenośne, w czasie rzeczywistym i bez ekspozycji na promieniowanie. Ultradźwięki o wysokiej rozdzielczości nadają się do pomiarów dynamicznych i wielokrotnych. Jednak badanie ultrasonograficzne tarczycy u myszy wymaga odpowiedniej wiedzy anatomicznej i doświadczenia. Ten artykuł zawiera szczegółową procedurę wykorzystania ultradźwięków o wysokiej rozdzielczości do skanowania guzów w transgenicznym modelu ATC. Tymczasem wymieniono regulację parametrów ultradźwiękowych, umiejętności skanowania ultradźwiękowego, znieczulenie i rekonwalescencję zwierząt oraz inne elementy, które wymagają uwagi podczas procesu.

Średnia wielkość prawego ATC na początku badania wynosiła 4,867 mm2, a średnia wielkość lewego ATC wynosiła 5,189 mm2. Podczas czwartego pomiaru średnia wielkość prawego ATC wzrosła do 11,844 mm2, natomiast wielkość guza w lewym płacie wzrosła do 9,280 mm2. Całkowita wielkość ATC zwiększyła się z 10,057 mm2 do 15,843 mm2. W późniejszej fazie badania ATC rósł gwałtownie. W przypadku myszy oznaczonej jako „P92” (Tabela 1), wielkość guza podc...

Obecny protokół opisuje ultrasonografię wysokiej częstotliwości do wizualizacji całej tarczycy myszy i monitorowania wzrostu anaplastycznego raka tarczycy.

Ultrasonografia o wysokiej rozdzielczości do analizy ortotopowych guzów ATC w genetycznie zmodyfikowanym modelu myszy

Anaplastic thyroid carcinoma (ATC) is associated with a poor prognosis and short median survival time, but no effective treatment improves the outcomes ...

Protokół ten pomaga użytkownikom wykorzystać ultrasonografię o wysokiej rozdzielczości do skanowania, monitorowania i pomiaru guzów w mysim modelu anaplastycznego raka tarczycy. Udowodniono, że ultrasonografia jest niezawodna u myszy do obrazowania tkanek, które zajmują podobne lokalizacje ciała jak tkanki ludzkie, w tym wątroba, tarczyca i płód. Aby rozpocząć, włącz system ultrasonograficzny i utwórz nowy folder do przechwytywania obrazów i zbierania danych.Następnie wybierz sondę liniową o długości 40 megaherców, kliknij wzór tkanki powierzchownej, aby aktywować przetwornik tkanek powierzchownych i użyj wynikowego trybu B do obrazowania tarczycy. Wyczyść platformę do obrazowania zwierząt i włącz przycisk podgrzewania, aby temperatura platformy osiągnęła od 38 do 40 stopni Celsjusza przed umieszczeniem na niej zwierzęcia. Znieczul mysz i umieść ją na podgrzewanej platformie.Zakryj pysk stożkiem nosowym połączonym z wylotem znieczulenia. Następnie, trzymając mysz w pozycji leżącej, użyj taśmy klejącej, aby przymocować jej kończyny do podgrzewanej platformy. W przypadku obrazowania guza dostosuj system obrazowania, aby zoptymalizować rozdzielczość.Ustaw wzmocnienie dwuwymiarowe na 2

high-resolution-ultrasonography-for-analysis-orthotopic-atc-tumors

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Badania nad rakiem

Film demonstruje technikę ortotopowej inokulacji raka piersi na modelu mysim. Technika ta zapewnia wysoki wskaźnik nowotworzenia przy mniejszej zmienności wielkości i kształtu guza w porównaniu z wstrzyknięciem podskórnym lub niechirurgicznym.

Wstrzyknięcie ortotopowe: wszczepianie komórek rakowych specyficznych tkankowo dorosłej myszy

Generacja ortotopowego mysiego modelu anaplastycznego raka tarczycy jest opisana tutaj. Technika ta polega na chirurgicznym umieszczaniu ludzkich komórek anaplastycznego raka tarczycy w tarczycy myszy z niedoborem odporności, tworząc w ten sposób bardziej istotne klinicznie warunki do badania postępu choroby, a także do badań przesiewowych innowacyjnych interwencji terapeutycznych.

Ortotopowy mysi model anaplastycznego raka tarczycy

Sprawdzona technika szczepienia pierwotnych inwazyjnych ksenoprzeszczepów raka ortotopowego pęcherza moczowego wymaga laparotomii i mobilizacji pęcherza. Procedura ta powoduje znaczną zachorowalność u myszy, jest technicznie trudna i czasochłonna. W związku z tym opracowaliśmy wysoce precyzyjne, przezskórne podejście wykorzystujące kontrolę ultrasonograficzną.

Małoinwazyjne założenie mysich ortotopowych ksenoprzeszczepów pęcherza moczowego

Mysi model przerzutów do mózgu raka piersi jest tworzony za pomocą obrazowania ultradźwiękowego we wstrzyknięciu dosercowym komórek MDA-MB231/Br-GFP. Rozwój wieloogniskowych przerzutów wewnątrzczaszkowych monitorowano podłużnie za pomocą rezonansu magnetycznego 9,4 T o wysokiej rozdzielczości.

Iniekcja dosercowa pod kontrolą obrazowania ultrasonograficznego w celu opracowania mysiego modelu przerzutów raka piersi do mózgu, a następnie podłużnego rezonansu magnetycznego

Opisujemy metodę wykrywania rozwoju guzka guza w płucach mysiego modelu gruczolakoraka za pomocą mikrotomografii komputerowej i jej użycie do monitorowania zmian wielkości guzka w czasie i w odpowiedzi na leczenie. Dokładność oceny potwierdzono kwantyfikacją histologiczną punktu końcowego.

Wykorzystanie mikrotomografii komputerowej do oceny rozwoju guza i obserwacji odpowiedzi na leczenie w mysim modelu raka płuc

Ten protokół opisuje powstawanie mysich ortotopowych guzów pęcherza moczowego u samic myszy C57BL/6J oraz monitorowanie wzrostu guza.

Mysi ortotopowy model guza pęcherza moczowego i system wykrywania guzów

Ten artykuł opisuje wykorzystanie ultradźwięków o wysokiej rozdzielczości u genetycznie modyfikowanych myszy z rakiem trzustki. Podstawowym celem jest dostarczenie szczegółowej instrukcji wykrywania i oceny endogennych nowotworów trzustki.

Wykorzystanie ultradźwięków o wysokiej rozdzielczości do monitorowania początku i wzrostu guza w genetycznie modyfikowanych modelach raka trzustki

Tutaj prezentujemy protokół wykorzystania wspomaganego ultradźwiękami wstrzykiwania komórek nerwiaka zarodkowego (NB) i mięsaka Ewinga (ES) (ustalone linie komórkowe i komórki nowotworowe pochodzące od pacjenta) w biologicznie istotnych miejscach do tworzenia wiarygodnych modeli przedklinicznych do badań nad rakiem.

Wykorzystanie implantacji komórkowej sterowanej tkankami pod kontrolą ultradźwięków do ustalenia biologicznie istotnych ksenoprzeszczepów nowotworowych z przerzutami

Opisujemy protokół implantacji pod kontrolą ultrasonograficzną linii komórkowych rdzeniakoraka przewodowego trzustki pochodzących od myszy bezpośrednio do natywnego miejsca guza. Takie podejście spowodowało guzy trzustki wykrywalne za pomocą skanowania ultrasonograficznego w ciągu 2-4 tygodni od wstrzyknięcia i znacznie zmniejszyło odsetek wysiewu komórek nowotworowych na ścianie otrzewnej w porównaniu z chirurgiczną implantacją ortotopową.

Ortotopowa implantacja mysiego gruczolakoraka przewodowego trzustki pod kontrolą USG

Ten protokół opisuje metodę monitorowania postępu zmian morfologicznych w czasie w macicy w indukowalnym mysim modelu raka endometrium za pomocą obrazowania ultrasonograficznego z korelacją zmian ogólnych i histologicznych.

Nieinwazyjna ocena ultrasonograficzna progresji raka endometrium w kierowanej przez Pax8 delecji supresorów guza Arid1a i Pten u myszy

W tym protokole omawiamy implementację modelu udanego ortotopowego przeszczepu wątroby (OLT) u myszy. Dodatkowo omówiono adiuwanty do dalszej analizy drożności przeszczepu allogenicznego po udanym OLT u myszy, w szczególności z wykorzystaniem skanów tomografii mikrokomputerowej (microCT).

Udany ortotopowy przeszczep wątroby u myszy z wykorzystaniem angiografii tomografii mikrokomputerowej

Poznaj ultrasonografię wysokiej rozdzielczości do monitorowania guzów ATC w modelu myszy. Ta nieinwazyjna metoda umożliwia w czasie rzeczywistym obserwację dynamiki wzrostu nowotworu tarczycy w badaniach przedklinicznych.

Ultrasonografia o wysokiej rozdzielczości do analizy ortotopowych guzów ATC w genetycznie zmodyfikowanym modelu myszy

Przeglądaj więcej filmów