March 17th, 2023
Tutaj prezentujemy protokół pobierania przylegających komórek z wielowarstwowych kolb w zamknięty półautomatyczny sposób za pomocą systemu wirowania przeciwprądowego. Protokół ten może być stosowany do zbierania zarówno komórek przylegających, jak i zawiesinowych z innych platform do rozbudowy komórek z niewielkimi modyfikacjami istniejących etapów.
Wirowanie laboratoryjne jest otwartym i ręcznym procesem, który jest trudny do skalowania. Nasz protokół pokazuje, jak zamknąć i zautomatyzować dysocjację, mycie i pobieranie mezenchymalnych komórek macierzystych (MSC) w jednym przebiegu. Konfiguracja jest prosta.
Cały proces może być przeprowadzony na zewnątrz szafy bezpieczeństwa biologicznego w obiekcie klasy cGMP. Zamknięte, zautomatyzowane przetwarzanie komórek zmniejsza liczbę czynności związanych z ręczną obsługą, które mogą być podatne na ryzyko, i umożliwia zgodność z cGMP. Metoda ta może być stosowana do innych typów komórek ekspandowanych w wielowarstwowych systemach hodowli.
System wirowania przeciwprądowego umożliwia modyfikację dowolnych kroków protokołu dla różnych zastosowań. Procedurę tę zademonstruje dr Alan Lam, naukowiec z grupy bioprzetwarzania komórek macierzystych w Instytucie Technologii Bioprzetwarzania, A star w Singapurze. Aby rozpocząć montaż jednorazowego zestawu do wirowania przeciwprądowego, połącz zestaw jednorazowego użytku z jednorazowymi workami transferowymi z PVC za pomocą spawania rurowego, jak pokazano na rysunku.
Następnie, wewnątrz szafy bezpieczeństwa biologicznego, przymocuj 10-warstwową wielowarstwową kolbę zawierającą zlewające się ludzkie mezenchymalne komórki macierzyste pochodzące z galaretki Whartona lub HMSC Wharton's Jelly do niestandardowego zespołu rurek. Przenieś dołączone 10-warstwowe naczynie hodowlane z niestandardowym zespołem przewodów na stół i przyspawaj je do linii E zestawu jednorazowego użytku. Też. przyspawać sterylny port próbki do linii G zestawu jednorazowego użytku o wysokim przepływie.
Następnie podłącz linię żniwną H do sterylnej przynęty, wyposażonej w 50-mililitrową strzykawkę. Aby skonfigurować działanie instrumentu, włącz go za pomocą przełącznika z tyłu instrumentu i podłącz laptopa do portu USBC w instrumencie za pomocą dostarczonego USBC. Uruchom graficzny interfejs użytkownika wirówki przeciwprądowej lub oprogramowanie GUI z pulpitu lub menu Start i zaloguj się.
Następnie załaduj protokół, klikając przycisk Wybierz protokół na głównej stronie powitalnej. Następnie naciśnij niebieski przycisk odblokowujący na przyrządzie i otwórz szklane drzwiczki, aby załadować zmontowany zestaw jednorazowego użytku do systemu wirowania przeciwprądowego. Zacznij od zawieszenia toreb na haczykach wieszaków w kolejności, która najlepiej pokrywa je z portami rurkowymi na paskach czujnika pęcherzykowego, z 10-warstwową wielowarstwową kolbą umieszczoną pod kątem.
Dopasuj zestaw do dwóch przycisków lokalizacji zestawu. Rozciągnij rurkę pompy wokół pompy perystaltycznej i wciśnij białe złącze w kształcie bańki na miejsce. Zamocuj komorę wirówki, podnosząc srebrną dźwignię wspornika komory wirówki przeciwprądowej i zabezpieczając ją, ustawiając dźwignię w pozycji pionowej.
Wciśnij rurkę z każdego portu w zestawie do ścieżek wzdłuż pasków czujnika pęcherzykowego. Zamknij drzwi, naciskając zatrzask drzwi. Naciśnij przycisk Inicjuj w graficznym interfejsie użytkownika.
Pojawi się lista kontrolna. Pierwsze cztery elementy to kontrole instrumentów, podczas gdy ostatnie dwa to kontrole użytkownika. W tym momencie upewnij się, że worki i połączenia są zgodne z obrazem zestawu, a ręczna zaciski są otwarte.
Naciśnij przycisk Potwierdź, aby wyświetlić ekran Wejścia protokołu. Ustaw wartość w oknie dialogowym wprowadzania danych lub objętości zbioru na 45 mililitrów i naciśnij Potwierdź. Naciśnij zielony przycisk start na instrumencie, aby rozpocząć działanie protokołu.
Po zakończeniu wstępnego zalewania upewnij się, że zużyte podłoże zostało całkowicie wypompowane do worka na odpady. W krokach pauzy, jak zaznaczono w tabeli przepływu pracy, podnieś wielowarstwową kolbę do góry i potrząśnij nią, aby równomiernie rozprowadzić bufor na wszystkie tace. Po zakończeniu umieść 10-warstwową wielowarstwową kolbę z powrotem w pierwotnej pozycji rysowania, aby przejść do następnych kroków.
W krokach 20 i 23 upewnij się, że trypsynizowane komórki zostały całkowicie przeniesione do worka pośredniego. Dobrze wymieszaj worek pośredni ręcznie w kroku 25. W kroku 26 użyj dwumililitrowej strzykawki z przynętą, aby pobrać próbkę przez port pobierania próbek.
W krokach 29 i 30 sprawdź stabilne tworzenie się fluidyzacyjnego łoża komórek. Powinno być jak pokazane tutaj fluidalne złoże komórkowe. Przebieg jest zakończony na rampie do zatrzymania, a wszystkie wartości szczypania w systemie wirowania przeciwprądowego zamkną się automatycznie.
Po zakończeniu działania protokołu naciśnij niebieski przycisk odblokowujący na instrumencie i otwórz szklane drzwi. Aseptycznie uszczelnić linię pobierania za pomocą ręcznej zgrzewarki do probówek i ostrożnie przenieść szczelnie zapieczętowaną strzykawkę wypełnioną skoncentrowanym pobraniem komórek do komory bezpieczeństwa biologicznego w celu zliczenia komórek i kriokonserwacji. Ponownie odłącz komorę za pomocą dźwigni.
Wyciągnij złącze żarówki z oprawy i ostrożnie wyjmij zestaw i wrzuć go do torby na wypadek zagrożenia biologicznego. Wyczyść instrument chusteczkami na etanol i zamknij drzwi. Na koniec najpierw zamknij aplikację GUI, a nie wyłącz przełącznik z tyłu instrumentu.
M.d.com Wharton's Jelly rozmnażały się dobrze, gdy były rozprężane zarówno w pożywkach zawierających surowicę, jak i bezzawierających surowicy, wolnych od kseno. Jednak osoby w pożywce wolnej od surowicy i ksenotypu wykazywały nieco dłuższą morfologię w kształcie wrzeciona przypominającą fibroblasty, z większą średnią wielkością komórek wynoszącą 17 mikronów, w porównaniu do 15 mikronów w pożywce surowicy. W obu pożywkach we wszystkich trzech przejściach, HMSC Wharton's Jelly konsekwentnie osiągały maksymalną gęstość komórek około 23 000 komórek na centymetr kwadratowy i czas podwojenia populacji wynoszący 34 godziny.
Kiedy HMSC Wharton's Jelly zostały rozprężone w 10-warstwowych naczyniach hodowlanych przy użyciu zademonstrowanego wirowania przeciwprądowego, osiągnięto dziesięciokrotne zmniejszenie objętości, generując stężenie komórek sięgające 5,3 miliona komórek na mililitr. Protokół konsekwentnie osiągał wysoką regenerację komórek wynoszącą około 98% i wysoką żywotność komórek wynoszącą około 99% przez trzy niezależne serie. HMSC Wharton's Jelly zebrane przy użyciu obu metod wykazywały charakterystyczne profile markerów powierzchniowych, które są dodatnie CD73, CD90 i CD105, a także ujemne CD34 i CD45.
Komórki zebrane z wirowania przeciwprądowego wykazywały podobny test fibroblastów tworzących kolonie lub potencjał CFU, w porównaniu z tymi zebranymi przez wirowanie ręczne. W obu metodach komórki zachowały zdolność różnicowania się w adipocyty, osteoblasty i chondrocyty. Profile wydzielania cytokin w komórkach po odwirowaniu przeciwprądowym były porównywalne z wirowaniem przed przepływem.
Upewnij się, że zestaw jednorazowego użytku został skompletowany w odniesieniu do konfiguracji łóżka, umieść go w tym konstruktorze protokołu systemu centryfuzji przeciwprądowej. Protokół wymywania zanieczyszczeń resztkowych z produktu końcowego może być stosowany w zastosowaniach klinicznych w celu wsparcia użytkowników w spełnieniu kryteriów dopuszczenia partii do obrotu. Aby przyspieszyć proces przenoszenia płynów do przetwarzania na dużą skalę, można użyć zewnętrznych pomp do przeniesienia trypsynizowanej zawartości do worka transferowego, zamiast bezpośredniego zbierania z wielowarstwowej kolby.
Ten artykuł przedstawia protokół zamkniętego i zautomatyzowanego pozyskiwania komórek macierzystych mezenchymalnych (MSCs) za pomocą systemu wirowania przeciwprądowego. Metoda zwiększa efektywność i zgodność w przetwarzaniu komórek, stosowna do różnych typów komórek w wielowarstwowym systemie kulturowym.
Closed, semi-automated workflows for human mesenchymal stem cell (hMSC) processing address critical bottlenecks in scale, reproducibility, and regulatory compliance for cell-based therapeutics. This protocol enables high-yield, high-viability cell harvests while supporting cGMP requirements and minimizing manual intervention. The approach is directly relevant for biopharma teams advancing cell therapy candidates through early development and manufacturing readiness.
This closed, semi-automated protocol integrates from early discovery through preclinical development, supporting scalable cell expansion, harvesting, and preparation for translational studies.