-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Jednoetapowa strategia endogennego znakowania genów w oparciu o CRISPR u Drosophila melanogas...
Jednoetapowa strategia endogennego znakowania genów w oparciu o CRISPR u Drosophila melanogas...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
One-step CRISPR-based Strategy for Endogenous Gene Tagging in Drosophila melanogaster

Jednoetapowa strategia endogennego znakowania genów w oparciu o CRISPR u Drosophila melanogaster

Full Text
1,598 Views
07:23 min
January 26, 2024

DOI: 10.3791/64729-v

Yangbo Xiao*1, Ye Yuan*2, Swathi Yadlapalli1,2,3

1Department of Cell and Developmental Biology,University of Michigan, 2Cellular and Molecular Biology Program,University of Michigan, 3Michigan Neuroscience Institute Affiliate,University of Michigan

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a simplified endogenous gene tagging protocol for Drosophila, utilizing a PCR-based technique for marker-free identification of successful genetic modifications. The approach facilitates the development of stable knock-in lines, demonstrated through a fluorescent protein example, and can be adapted for additional genetic modifications.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Genetics
  • Drosophila research

Background

  • Gene editing technologies such as CRISPR have accelerated genetic modifications in model organisms.
  • Endogenous tagging allows for observing protein behaviors and interactions.
  • Efficient genotyping methods are essential for confirming successful modifications.

Purpose of Study

  • To streamline the process of creating and confirming genetically modified Drosophila lines.
  • To provide a protocol that minimizes time in genotyping procedures.
  • To expand the applicability of CRISPR homologous recombination techniques.

Methods Used

  • Utilized CRISPR homologous recombination in Drosophila for gene editing.
  • Key interventions included designing sgRNAs and constructing donor plasmids.
  • Involved PCR screening of modified lines to validate successful edits.
  • Critical steps included leg dissection for sample collection and PCR amplification using specific primers.

Main Results

  • The study successfully demonstrated an efficient method for generating fluorescent protein knock-ins in Drosophila.
  • Highlighted a reduction in genotyping time and increased accuracy in confirming genetic edits.
  • Resulting fly lines exhibited desirable protein localization patterns necessary for further biological studies.

Conclusions

  • This protocol significantly simplifies the generation and validation of genetically modified Drosophila lines.
  • It enhances researchers' ability to utilize Drosophila models for various genetic studies.
  • The method's efficiency and flexibility may advance understanding of protein function and gene interactions in vivo.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of this gene tagging protocol?
The protocol offers a simplified approach to generating genetically modified lines, significantly reducing the time and effort needed for genotyping.
How is the main biological model implemented in this study?
Drosophila is used as a model organism where specific fluorescent proteins are tagged endogenously to study genetic modifications.
What types of data or outcomes are obtained using this method?
The method produces genetically modified Drosophila lines and confirms edits through PCR, leading to insights on protein localization and genetic interactions.
How can this method be applied or adapted in other studies?
This protocol can be adapted for various genetic interventions beyond fluorescent tagging, such as knockouts or other mutations in Drosophila.
What are some key limitations of this protocol?
While efficient, the method requires careful design of sgRNAs and donor plasmids and may have limitations based on the specific gene targets.

Tutaj prezentujemy uproszczony protokół endogennego znakowania genów dla Drosophila, który wykorzystuje technikę opartą na PCR do bezmarkerowej identyfikacji udanych modyfikacji genetycznych, ułatwiając rozwój stabilnych linii knock-in.

Celem tego protokołu jest wygenerowanie endogennej edytowanej linki muchowej. Jako przykład pokazujemy białko fluorescencyjne knock-in, ale można je również zastosować do innych knock-in, knockout, a także generowania mutacji. Nasz protokół jest metodą opartą na rekombinacji homologicznej CRISPR, więc nie ma prawie żadnych ograniczeń co do miejsc mutacji.

Co więcej, nasz protokół znacznie skrócił czas i wysiłek związany z etapami genotypowania. Aby rozpocząć, otwórz stronę internetową fly CRISPR, aby zaprojektować sgRNA dla Drosophila i wprowadź około 100 sekwencji par zasad otaczających żądane miejsce knock-in. Wybierz cele CRISPR z opcją pięciu głównych guanin.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

CRISPR endogenne znakowanie genów Drosophila melanogaster fluorescencyjne białko knock-in projektowanie SgRNA rekombinacja homologiczna protokół genotypowania peptyd łącznikowy wektor dawcy sekwencje PAM znakowanie wewnętrzne znakowanie N-końca znakowanie C-końca budowa plazmidu sekwencjonowanie Sangera

Related Videos

Badania przesiewowe pod kątem modyfikacji genomu: metoda identyfikacji mutantów generowanych przez CRISPR u Drosophila

03:48

Badania przesiewowe pod kątem modyfikacji genomu: metoda identyfikacji mutantów generowanych przez CRISPR u Drosophila

Related Videos

3.7K Views

Rekombinowanie homologicznych konstruktów rekombinacji u Drosophila

14:23

Rekombinowanie homologicznych konstruktów rekombinacji u Drosophila

Related Videos

19.8K Views

Wydajna produkcja i identyfikacja nokautów genów generowanych przez CRISPR/Cas9 w systemie modelowym Danio rerio

11:27

Wydajna produkcja i identyfikacja nokautów genów generowanych przez CRISPR/Cas9 w systemie modelowym Danio rerio

Related Videos

23.2K Views

Szybki i łatwy proces generowania punktowych mutantów genomowych u C. elegans przy użyciu rybonukleoprotein CRISPR/Cas9

08:37

Szybki i łatwy proces generowania punktowych mutantów genomowych u C. elegans przy użyciu rybonukleoprotein CRISPR/Cas9

Related Videos

8.2K Views

Endogenne znakowanie białek w ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórkach macierzystych przy użyciu CRISPR/Cas9

14:48

Endogenne znakowanie białek w ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórkach macierzystych przy użyciu CRISPR/Cas9

Related Videos

28.4K Views

Skuteczna strategia generowania specyficznych tkankowo binarnych systemów transkrypcyjnych u Drosophila poprzez edycję genomu

10:01

Skuteczna strategia generowania specyficznych tkankowo binarnych systemów transkrypcyjnych u Drosophila poprzez edycję genomu

Related Videos

9.6K Views

Wizualizacja i śledzenie endogennych mRNA w żywych komorach jajowych Drosophila melanogaster

07:39

Wizualizacja i śledzenie endogennych mRNA w żywych komorach jajowych Drosophila melanogaster

Related Videos

8K Views

Badanie funkcjonalne in vivo rzadkich wariantów ludzkich związanych z chorobą przy użyciu Drosophila

06:41

Badanie funkcjonalne in vivo rzadkich wariantów ludzkich związanych z chorobą przy użyciu Drosophila

Related Videos

14.4K Views

Edycja CRISPR/Cas9 genu rbm-3.2 C. elegans przy użyciu markera przesiewowego dpy-10 Co-CRISPR i złożonych kompleksów rybonukleoproteinowych.

07:46

Edycja CRISPR/Cas9 genu rbm-3.2 C. elegans przy użyciu markera przesiewowego dpy-10 Co-CRISPR i złożonych kompleksów rybonukleoproteinowych.

Related Videos

6.6K Views

Wszechobecne i specyficzne tkankowo celowanie RNA u Drosophila melanogaster przy użyciu CRISPR/CasRx

06:37

Wszechobecne i specyficzne tkankowo celowanie RNA u Drosophila melanogaster przy użyciu CRISPR/CasRx

Related Videos

3.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code