Name: Zbieranie pasożytów morskich gnathiidae isopodów za pomocą pułapek świetlnych (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-09-25T14:35:00.000+00:00
Duration: 6 min 43 s
Description: Naucz się zbierać pasożyty morskie Gnathiidae za pomocą pułapek świetlnych na rafach koralowych. Ta metoda umożliwia badanie dynamiki populacji izopodów i ich interakcji z rybami rafowymi.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Finansowanie zostało zapewnione przez Narodową Fundację Nauki Stanów Zjednoczonych (NSF OCE 2023420 i DEB 2231250, P. Sikkel PI). Dziękujemy gminie Dumaguete City, Negros Oriental, Filipiny, za zgodę na przeprowadzenie tego badania. Dziękujemy również wielu wolontariuszom za ich pomoc w terenie oraz pracownikom i naszym kolegom z Instytutu Nauk o Środowisku i Morzu Uniwersytetu Silliman za ich wsparcie.

Pobieranie próbek zostało dozwolone przez Departament Rolnictwa-Biuro Rybołówstwa i Zasobów Wodnych (0154-18 DA-BFAR) zgodnie z filipińskimi przepisami i regulacjami (RA 9147; FAO 233) i zatwierdzone przez komisję etyki zwierząt Uniwersytetu Silliman (SU).
1. Pułapki świetlne
<ol>
	<li>budowa
	<ol>
		<li>Zbuduj pułapki świetlne z komercyjnych rur z polichlorku winylu (PVC) pierwotnie zaprojektowanych do instalacji wodno-kanalizacyjnych. Użyj PCV o średnicy 10-15 cm przyciętego do długości 30-40 cm (<silna klasa="xfig">Rysunek 1).</li>
		<li>Do obu końców rurek dodaj "nakrętki" z PVC z przezroczystym akrylowym lejkiem umieszczonym w środku otworu i przyklej na miejscu przezroczystym klejem epoksydowym (<silna klasa = "xfig">Rysunek 1). Pozostaw do wyschnięcia.</li>
		<li>Upewnij się, że jeden koniec rurki ma przykręcaną lub w inny sposób zdejmowaną pokrywę i że oba końce są wodoszczelne, gdy syfon jest "zamknięty" (np. z dodatkiem O-ringu).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Źródło światła
	<ol>
		<li>Przed rozmieszczeniem włącz podwodną latarkę/latarkę (patrz Tabela materiałów) i umieść ją w rurze, skierowaną w stronę jednego z przezroczystych lejków, tak aby światło z latarki podwodnej oświetlało obszar przed jedną stroną rury. W razie potrzeby zamiast latarek podwodnych można użyć chemicznych pałeczek świecących, chociaż ich natężenie światła jest niższe. 
		UWAGA: Światło przyciąga różne małe organizmy nocne31, w tym gnathiidae, i zmusza je do wpłynięcia do rurki przez przezroczysty lejek. Po wejściu do rury nie są w stanie uciec ze względu na geometrię pułapki świetlnej (mały otwór lejka) i ciągłą obecność źródła światła.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Umieszczenie
	<ol>
		<li>Znajdując się w wodzie w miejscu rozmieszczenia, napełnij pułapki świetlne przy włączonym świetle wodą morską i zabezpiecz oba końce. Aby upewnić się, że palnik nie znajduje się poniżej lub nie blokuje końcówki lejka, przechyl "przód" rurki do góry, aby palnik mógł odsunąć się od lejka.</li>
		<li>Umieść pułapki na dnie morskim, w piasku lub gruzie, obok głów koralowców lub innych złożonych struktur, o których wiadomo, że przyciągają ryby. Skoncentruj stożek świetlny "do wewnątrz", w kierunku obszarów, w których gromadzą się ryby. 
		UWAGA: W płytkiej wodzie pułapki można umieszczać, nurkując na wstrzymanym oddechu. Głębsze rozmieszczenie wymaga nurkowania.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Pobierania
	<ol>
		<li>Bezpośrednio przed wyjęciem pułapki należy uszczelnić otwory obu lejków (na obu końcach rurki) kawałkiem plasteliny lub gumowym korkiem, zatrzymując całą wodę morską i zawarte w niej organizmy. 
		UWAGA: Organizmy pozostaną w pułapce, gdy baterie w światłach się wyczerpią i światło przestanie świecić. Zapewnia to elastyczność podczas wyjmowania pułapek ("czas namaczania"). Czynniki, które należy wziąć pod uwagę przy podejmowaniu decyzji o czasie namaczania, przedstawiono poniżej (patrz Dyskusja).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>transport
	<ol>
		<li>Gdy pułapki zostaną wydobyte z dna, zanieś je do łodzi lub dopłyń do brzegu.</li>
		<li>Utrzymuj pułapki o temperaturze zbliżonej do temperatury otoczenia wody morskiej po usunięciu z oceanu.</li>
		<li>Przetransportuj je do laboratorium w celu przetworzenia tak szybko, jak to możliwe, ponieważ po usunięciu z oceanu nie będzie zachodzić wymiana gazu ani wody.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2 Przetwarzanie laboratoryjne
<ol>
	<li>Przechowywanie i filtrowanie próbek
	<ol>
		<li>Gdy pułapki świetlne zostaną usunięte z oceanu i przywiezione z powrotem do laboratorium, opróżnij ich zawartość do wiader ze świeżą wodą morską.</li>
		<li>Dodaj napowietrzanie, aby utrzymać organizmy przy życiu do czasu filtrowania.</li>
		<li>Przefiltruj zawartość wiadra, przelewając przez lejek wyłożony siatką planktonową o wielkości 50-100 μm, a następnie opróżnij zawartość do pojemnika o pojemności 100 ml ze świeżą wodą morską.</li>
		<li>Użyj pipety, aby pobrać z tego mniejszego pojemnika, aby umieścić porcje próbki na szalce Petriego do mikroskopii. Powtarzać tę czynność, aż cała próbka zostanie przetworzona.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Identyfikacja i hodowla równonogów Gnathiidae
	<ol>
		<li>Ponieważ próbki pułapek świetlnych przyciągają wiele gatunków małych bezkręgowców, należy je dokładnie przebadać, aby zidentyfikować i usunąć równonogi gnathiidae. Do tego zadania najlepsze jest powiększenie 10-20x (<silna klasa="xfig">Rysunek 2). 
		UWAGA: Identyfikacja gnathiidae na poziomie rodziny nie wymaga żywych okazów. Jednak dorosłe gnathiidae, które rzadko są łapane w pułapki świetlne, są potrzebne do morfologicznej identyfikacji i rozmnażania gatunków (zobacz odniesienie1,3,9 dla metodologii hodowli i hodowli gnathiidae w niewoli).</li>
		<li>W przypadkach, gdy gnathiidae muszą być utrzymywane przy życiu w celu hodowli, delikatnie usuń je pipetą i umieść w małych plastikowych pojemnikach ze świeżą wodą morską.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Sikkel, P. C., Welicky, R. L. The ecological significance of parasitic crustaceans. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSikkel%2C+PC+%22Parasitic+Crustacea%22">Parasitic Crustacea</a>. 17 (17), Springer. Cham. 421-477 (2019).</li>
<li>Svavarsson, J., Bruce, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+gnathiid+isopod+crustaceans+%28Cymothoida%29+from+Heron+Island+and+Wistari+Reef%2C+southern+Great+Barrier+Reef%5BTitle%5D)+AND+%22Zootaxa%22%5BJournal%5D)">New gnathiid isopod crustaceans (Cymothoida) from Heron Island and Wistari Reef, southern Great Barrier Reef.</a> Zootaxa. 4609 (1), 4609(2019).</li>
<li>Shodipo, M. O., Sikkel, P. C., Smit, N. J., Hadfield, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+record+and+molecular+characterisation+of+two+Gnathia+species+%28Crustacea%2C+Isopoda%2C+Gnathiidae%29+from+Philippine+coral+reefs%2C+including+a+summary+of+all+Central-Indo+Pacific+Gnathia+species%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%3A+Parasites+and+Wildlife%22%5BJournal%5D)">First record and molecular characterisation of two Gnathia species (Crustacea, Isopoda, Gnathiidae) from Philippine coral reefs, including a summary of all Central-Indo Pacific Gnathia species.</a> International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 14, 355-367 (2021).</li>
<li>Losey, G. S. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleaning+symbiosis+in+Puerto+Rico+with+comparison+to+the+tropical+Pacific%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Cleaning symbiosis in Puerto Rico with comparison to the tropical Pacific.</a> 4 (4), 960-970 (1974).</li>
<li>Grutter, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasite+infestation+increases+on+coral+reefs+without+cleaner+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Parasite infestation increases on coral reefs without cleaner fish.</a> Coral Reefs. 37, 15-24 (2018).</li>
<li>Smit, N. J., Davies, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+curious+life-style+of+the+parasitic+stages+of+gnathiid+isopods%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Parasitology.+58%22%5BJournal%5D)">The curious life-style of the parasitic stages of gnathiid isopods.</a> Advances in Parasitology. 58. , 289-391 (2004).</li>
<li>Tanaka, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+history+of+gnathiid+isopods-current+knowledge+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Plankton+and+Benthos+Research%22%5BJournal%5D)">Life history of gnathiid isopods-current knowledge and future directions.</a> Plankton and Benthos Research. 2 (1), 1-11 (2007).</li>
<li>Sikkel, P. C., Schaumburg, C. S., Mathenia, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diel+infestation+dynamics+of+gnathiid+isopod+larvae+parasitic+on+Caribbean+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Diel infestation dynamics of gnathiid isopod larvae parasitic on Caribbean reef fish.</a> Coral Reefs. 25, 683-689 (2006).</li>
<li>Santos, T. R. N., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Habitat+associations+of+fish-parasitic+gnathiid+isopods+in+a+shallow+reef+system+in+the+central+Philippines%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biodiversity%22%5BJournal%5D)">Habitat associations of fish-parasitic gnathiid isopods in a shallow reef system in the central Philippines.</a> Marine Biodiversity. 4, 83-96 (2019).</li>
<li>Nagel, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+vision+in+host-finding+behaviour+of+the+ectoparasite+Gnathia+falcipenis+%28Crustacea%29%5BTitle%5D)+AND+%22Isopoda%29.+Marine+and+Freshwater+Behaviour+and+Physiology%22%5BJournal%5D)">The role of vision in host-finding behaviour of the ectoparasite Gnathia falcipenis (Crustacea).</a> Isopoda). Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. 42 (1), 31-42 (2009).</li>
<li>Sikkel, P. C., Sears, W. T., Weldon, B., Tuttle, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+experimental+field+test+of+host-finding+mechanisms+in+a+Caribbean+gnathiid+isopod%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biology%22%5BJournal%5D)">An experimental field test of host-finding mechanisms in a Caribbean gnathiid isopod.</a> Marine Biology. 158, 1075-1083 (2011).</li>
<li>Vondriska, C., Dixson, D. L., Packard, A. J., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentially+susceptible+host+fishes+exhibit+similar+chemo-attractiveness+to+a+common+coral+reef+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22Symbiosis%22%5BJournal%5D)">Differentially susceptible host fishes exhibit similar chemo-attractiveness to a common coral reef ectoparasite.</a> Symbiosis. 81 (3), 247-253 (2020).</li>
<li>Grutter, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasite+infection+rather+than+tactile+stimulation+is+the+proximate+cause+of+cleaning+behaviour+in+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Royal+Society+of+London.+Series+B%3A+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">Parasite infection rather than tactile stimulation is the proximate cause of cleaning behaviour in reef fish.</a> Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. 268 (1474), 1361-1365 (2001).</li>
<li>Sikkel, P. C., Cheney, K. L., Côté, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+evidence+for+ectoparasites+as+a+proximate+cause+of+cleaning+interactions+in+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Behaviour%22%5BJournal%5D)">In situ evidence for ectoparasites as a proximate cause of cleaning interactions in reef fish.</a> Animal Behaviour. 68 (2), 241-247 (2004).</li>
<li>Sikkel, P. C., Herzlieb, S. E., Kramer, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compensatory+cleaner-seeking+behavior+following+spawning+in+female+yellowtail+damselfish%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Ecology+Progress+Series%22%5BJournal%5D)">Compensatory cleaner-seeking behavior following spawning in female yellowtail damselfish.</a> Marine Ecology Progress Series. , 1-11 (2005).</li>
<li>Triki, Z., Grutter, A. S., Bshary, R., Ros, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+short-term+exposure+to+ectoparasites+on+fish+cortisol+and+hematocrit+levels%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biology%22%5BJournal%5D)">Effects of short-term exposure to ectoparasites on fish cortisol and hematocrit levels.</a> Marine Biology. 163, 1-6 (2016).</li>
<li>Hayes, P. M., Smit, N. J., Grutter, A. S., Davies, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unexpected+response+of+a+captive+blackeye+thicklip%2C+Hemigymnus+melapterus+%28Bloch%29%2C+from+Lizard+Island%2C+Australia%2C+exposed+to+juvenile+isopods+Gnathia+aureamaculosa+Ferreira+%26+Smit%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Fish+Diseases%22%5BJournal%5D)">Unexpected response of a captive blackeye thicklip, Hemigymnus melapterus (Bloch), from Lizard Island, Australia, exposed to juvenile isopods Gnathia aureamaculosa Ferreira & Smit.</a> Journal of Fish Diseases. 34 (7), 563-566 (2011).</li>
<li>Grutter, A. S., Pickering, J. L., McCallum, H., McCormick, M. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+micropredatory+gnathiid+isopods+on+young+coral+reef+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Impact of micropredatory gnathiid isopods on young coral reef fishes.</a> Coral Reefs. 27 (3), 655-661 (2008).</li>
<li>Artim, J. M., Sellers, J. C., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropredation+by+gnathiid+isopods+on+settlement-stage+reef+fish+in+the+eastern+Caribbean+Sea%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+Marine+Science%22%5BJournal%5D)">Micropredation by gnathiid isopods on settlement-stage reef fish in the eastern Caribbean Sea.</a> Bulletin of Marine Science. 91 (4), 479-487 (2015).</li>
<li>Sellers, J. C., Holstein, D. M., Botha, T. L., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lethal+and+sublethal+impacts+of+a+micropredator+on+post-settlement+Caribbean+reef+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">Lethal and sublethal impacts of a micropredator on post-settlement Caribbean reef fishes.</a> Oecologia. 189, 293-305 (2019).</li>
<li>Allan, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasite+infection+directly+impacts+escape+response+and+stress+levels+in+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Parasite infection directly impacts escape response and stress levels in fish.</a> Journal of Experimental Biology. 223 (16), (2020).</li>
<li>Spitzer, C. A., Anderson, T. W., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Habitat+associations+and+impacts+on+a+juvenile+fish+host+by+a+temperate+gnathiid+isopod%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%3A+Parasites+and+Wildlife%22%5BJournal%5D)">Habitat associations and impacts on a juvenile fish host by a temperate gnathiid isopod.</a> International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 17, 65-73 (2022).</li>
<li>Sikkel, P. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nocturnal+migration+reduces+exposure+to+micropredation+in+a+coral+reef+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+Marine+Science%22%5BJournal%5D)">Nocturnal migration reduces exposure to micropredation in a coral reef fish.</a> Bulletin of Marine Science. 93 (2), 475-489 (2017).</li>
<li>Artim, J. M., Hook, A., Grippo, R. S., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predation+on+parasitic+gnathiid+isopods+on+coral+reefs%3A+a+comparison+of+Caribbean+cleaning+gobies+with+non-cleaning+microcarnivores%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Predation on parasitic gnathiid isopods on coral reefs: a comparison of Caribbean cleaning gobies with non-cleaning microcarnivores.</a> Coral Reefs. 36, 1213-1223 (2017).</li>
<li>Artim, J. M., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+coral+repels+a+common+reef+fish+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Live coral repels a common reef fish ectoparasite.</a> Coral Reefs. 32, 487-494 (2013).</li>
<li>Paula, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+corals+on+the+abundance+of+a+fish+ectoparasite+in+the+Great+Barrier+Reef%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">The role of corals on the abundance of a fish ectoparasite in the Great Barrier Reef.</a> Coral Reefs. 40, 535-542 (2021).</li>
<li>Sikkel, P. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+abundance+of+fish-parasitic+gnathiid+isopods+associated+with+warm-water+bleaching+events+on+the+northern+Great+Barrier+Reef%5BTitle%5D)+AND+%22Coral+Reefs%22%5BJournal%5D)">Changes in abundance of fish-parasitic gnathiid isopods associated with warm-water bleaching events on the northern Great Barrier Reef.</a> Coral Reefs. 38 (4), 721-730 (2019).</li>
<li>Shodipo, M. O., Duong, B., Graba-Landry, A., Grutter, A. S., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+acute+seawater+temperature+increase+on+the+survival+of+a+fish+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22In+Oceans%22%5BJournal%5D)">Effect of acute seawater temperature increase on the survival of a fish ectoparasite.</a> In Oceans. 1 (4), (2020).</li>
<li>Artim, J. M., Nicholson, M. D., Hendrick, G. C., Brandt, M., Smith, T. B., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abundance+of+a+cryptic+generalist+parasite+reflects+degradation+of+an+ecosystem%5BTitle%5D)+AND+%22Ecosphere%22%5BJournal%5D)">Abundance of a cryptic generalist parasite reflects degradation of an ecosystem.</a> Ecosphere. 11 (10), (2020).</li>
<li>Richardson, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+continuous+plankton+recorder+data%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Oceanography%22%5BJournal%5D)">Using continuous plankton recorder data.</a> Progress in Oceanography. 68 (1), 27-74 (2006).</li>
<li>McLeod, L. E., Costello, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light+traps+for+sampling+marine+biodiversity%5BTitle%5D)+AND+%22Helgoland+Marine+Research%22%5BJournal%5D)">Light traps for sampling marine biodiversity.</a> Helgoland Marine Research. 71 (1), 1-8 (2017).</li>
<li>Artim, J. M., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+sampling+methodologies+and+estimation+of+population+parameters+for+a+temporary+fish+ectoparasite%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%3A+Parasites+and+Wildlife%22%5BJournal%5D)">Comparison of sampling methodologies and estimation of population parameters for a temporary fish ectoparasite.</a> International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 5 (2), 145-157 (2016).</li>
<li>Pagán, J. A., Veríssimo, A., Sikkel, P. C., Xavier, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hurricane-induced+disturbance+increases+genetic+diversity+and+population+admixture+of+the+direct-brooding+isopod%2C+Gnathia+marleyi%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+reports%22%5BJournal%5D)">Hurricane-induced disturbance increases genetic diversity and population admixture of the direct-brooding isopod, Gnathia marleyi.</a> Scientific reports. 10 (1), (2020).</li>
<li>Doherty, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-traps%3A+selective+but+useful+devices+for+quantifying+the+distributions+and+abundances+of+larval+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+Marine+Science%22%5BJournal%5D)">Light-traps: selective but useful devices for quantifying the distributions and abundances of larval fishes.</a> Bulletin of Marine Science. 41, 423-431 (1987).</li>
<li>Jones, C. M., Nagel, L., Hughes, G. L., Cribb, T. H., Grutter, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+specificity+of+two+species+of+Gnathia+%28Isopoda%29+determined+by+DNA+sequencing+blood+meals%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+for+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Host specificity of two species of Gnathia (Isopoda) determined by DNA sequencing blood meals.</a> International Journal for Parasitology. 37 (8-9), 927-935 (2007).</li>
<li>Hendrick, G. C., Dolan, M. C., McKay, T., Sikkel, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Host+DNA+integrity+within+blood+meals+of+hematophagous+larval+gnathiid+isopods+%28Crustacea%29%5BTitle%5D)+AND+%22Isopoda%2C+Gnathiidae%29.+Parasites+%26+Vectors%22%5BJournal%5D)">Host DNA integrity within blood meals of hematophagous larval gnathiid isopods (Crustacea).</a> Isopoda, Gnathiidae). Parasites & Vectors. 12 (1), 1-9 (2019).</li>
</ol>

Autorzy deklarują, że nie ujawniają żadnych informacji.

Tradycyjne pułapki świetlne, takie jak te używane do zbierania larw ryb, są duże i zawieszone w słupie wody34. W przeciwieństwie do tego, opisywane tutaj pułapki świetlne są małe i rozmieszczone na dnie morskim. Pułapki te można łatwo transportować i szybko rozmieszczać. Mogą być umieszczane na płyciźnie (swobodnie) w płytkich miejscach (jak w tym badaniu) lub na nurkowaniu w głębszych miejscach i przyciągają zarówno karmione, jak i niekarmione stadia młodociane.
W...

Pasożytnicze skorupiaki są ważne w ekologii i historii życia ryb rafowych. Biomasa i energia, które odbierają swoim gospodarzom, są znaczne i wpływają na zachowanie, fizjologię i przeżywalność1. Skorupiaki z rodziny Gnathiidae reprezentują najbardziej znaczącą grupę pasożytów ryb w tropikalnych i subtropikalnych systemach rafowych, gdzie występują zarówno licznie, jak i różnorodnie2,3 i są głównym produktem spożywczym dla czystszych ryb4,5. Gnathiidae mają zwykle wielkość 1-3 mm. Mają niezwykłe historie życia, w których tylko trzy młode stadia żywią się krwią i płynami ustrojowymi ryb6,7. Są najbardziej aktywne w nocy8,9, i chociaż wizja wydaje się odgrywać pewną rolę, znajdowanie gospodarzy10 w dużej mierze polega na sygnałach węchowych, aby znaleźć hostów11,12. Każdy z trzech etapów karmienia młodocianych żywi się jedną rybą żywicielską, przy czym każde karmienie jest oddzielone fazą linienia. Po ostatnim karmieniu larwy trzeciego stadium przekształcają się w dorosłe osobniki nieżerujące, które rozmnażają się, a następnie umierają. Biorąc pod uwagę, że żerowanie wymaga tylko krótkiego związku z żywicielem, podczas gdy każda przerwa między karmieniami trwa kilka dni, gnathiidae spędzają większość swojego życia na wolności w bentosie.
Gnathiids wpływają na gospodarzy na wiele sposobów1. Oprócz roli jako czynniki napędzające interakcje między rybami czyścicielami a klientami13,14,15, gnatahidy mogą zwiększać poziom kortyzolu i obniżać hematokryt u dorosłych ryb16 i w dużych liczbach, mogą nawet powodować śmierć17. Dla młodych ryb nawet pojedynczy gnathiid może być śmiertelny18,19,20, a nawet jeśli ryba przeżyje, jej zdolność do konkurowania o przestrzeń i ucieczki przed drapieżnikami jest zagrożona20,21,22. Unikanie gnathiidae może nawet stanowić jedną z korzyści płynących z nocnej migracji u niektórych ryb rafowych23.
Oprócz czystszych ryb, populacje gnathiidów mogą być dotknięte przez inne mikro mięsożerne ryby24, a także koralowce25,26. Ocieplenie oceanów i związana z tym utrata żywych koralowców wydają się mieć przeciwstawny wpływ na gnathiidae27,28,29.
Biorąc pod uwagę ich wyraźne znaczenie ekologiczne i prawdopodobny wpływ antropogenicznych zmian środowiskowych na ich populacje, istnieją przekonujące powody, aby włączyć je do badań ekologicznych raf koralowych. Jednak ich wyjątkowa historia życia i niewielka liczba badaczy, którzy je badają, stanowią barierę dla opracowywania, wdrażania i rozpowszechniania wiarygodnych, powtarzalnych metod pobierania próbek w celu zebrania ich do badań.
Pułapki świetlne od dawna są używane do zbierania małych organizmów morskich w nocy30,31. Wykorzystują one i opierają się na fakcie, że wiele organizmów aktywnych nocnie, w tym stawonogi, jest przyciąganych do światła. Tradycyjnie były one używane do zbierania organizmów planktonowych w słupie wody30. Jednak podstawowe zasady można zastosować do zbierania organizmów swobodnie pływających, które są aktywne w pobliżu bentosu. W tym miejscu przedstawiamy metodę odłowu światła przystosowaną do zbierania wolno żyjących stadiów równonogów gnathiidae w pobliżu dna oceanu w odległych środowiskach raf koralowych, takich jak Filipiny. Do zbierania w odległych obszarach, te pułapki świetlne (<silna klasa="xfig">Rysunek 1) oferują pewne zalety w porównaniu z innymi metodami opracowanymi do zbierania tych organizmów32. Są bardzo przenośne i trwałe, wymagają tylko trzech części, które są łatwo dostępne i niedrogie. Są również negatywnie wyporne, ponieważ po rozłożeniu są całkowicie wypełnione wodą morską. Ponieważ przyciąganie ich jest zależne od światła, są skuteczne tylko w nocy do zbierania gatunków aktywnych nocnie. Przyciągają one również więcej niż gatunki docelowe, co wymaga sortowania próbek w zakresie preparacyjnym w celu uzyskania organizmów docelowych. Do tej pory nasz zespół i współpracownicy wykorzystali trzy metody do zbierania gnatiidae w systemach raf koralowych na całym świecie32. Należą do nich pułapki wynurzające, pułapki na żywe ryby i pułapki świetlne, z których każda ma zalety i ograniczenia.

<table><tbody><tr><td>Wiadra, małe pojemniki na</td><td></td> próbki sklep <td></td><td>z narzędziami</td></tr><tr><td>Lejki</td><td>Nr dostawcy 2209-03</td><td>Lejki: AMERICAN SCIENTIFIC LLC SE&nbsp;-&nbsp; 75 mm (3")&nbsp;</td><td>https://us.vwr.com/store/product/8884369/plastic-funnels</td></tr><tr><td>Główny korpus syfonów świetlnych (wykonany z dostępnych na rynku rur sanitarnych z PVC)</td> <td>(SKU 145640)&nbsp;</td><td>Rury sanitarne PCV Alasco Seria 1000 107mm/4'&nbsp;</td><td>https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-pipe-series-1000/.&nbsp; Markę tę można znaleźć na Filipinach. Można również stosować inne podobne marki</td></tr><tr><td>Plastelina&nbsp;</td><td></td><td>Można go znaleźć w sklepach z zabawkami dla dzieci</td><td>i akcesoriów do uszczelniania lejka po odzyskaniu</td></tr><tr><td>Siatka planktonowa (50-100 &mikro; m)</td><td></td> <td>dowolna renomowana marka i źródło</td><td>https://www.adkinstruments.in/products/plankton-nets-in-various-mesh-size-1633936883</td></tr><tr><td>Zakręcane pokrywki do pułapki</td><td></td> świetlnej <td>Alasco&nbsp; Sanitarne &nbsp; Czyszczenie&nbsp; 4"</td><td>https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-clean-out/. Markę tę można znaleźć na Filipinach. Można również używać innych podobnych marek</td></tr><tr>Sprzęt <td></td> do<td>nurkowania/snorkelingu</td><td>dowolnej renomowanej marki i źródła</td><td></td></tr><tr><td>Stereomikroskopy</td><td></td><td>Dostawcy naukowi Podwodne</td><td></td></tr><tr><td>dotknięcia</td><td></td><td>Princeton Tec Ecoflare lub&nbsp; Fantasea Nanospotter 6023</td><td></td></tr></tbody></table>

zbieranie pasożytów morskich gnathiidae isopodów za pomocą pułapek świetlnych

Collecting Marine Gnathiid Isopod Fish Parasites with Light Traps

Przedstawiono metodę zbierania pasożytów morskich ryb równonogów za pomocą pułapek świetlnych. Równonogi Gnathiidae to główna grupa pasożytów ryb morskich, które żywią się krwią i płynami ryb żywicielskich, głównie w nocy. Podobnie jak kleszcze i komary na lądzie, kojarzą się ze swoim żywicielem tylko tymczasowo i spędzają większość swojego życia na wolności w bentosie. Biorąc pod uwagę ich dużą mobilność oraz przejściowy i głównie nocny związek z żywicielami, nie można ich łatwo zebrać poprzez schwytanie wolno żyjących gospodarzy. Są jednak łatwo przyciągane do podwodnych źródeł światła, co stwarza możliwość zbierania ich w pułapki świetlne. W tym miejscu przedstawiono konstrukcję i poszczególne etapy związane z rozmieszczeniem i przetwarzaniem specjalnie przystosowanych pułapek świetlnych do zbierania wolno żyjących stadiów równonogów gnathiidae. Przedstawiono i omówiono przykładowe wyniki i możliwe modyfikacje podstawowego protokołu dla różnych potrzeb w zakresie pobierania próbek.

Do pobierania próbek w środkowej części Filipin zastosowano opisaną konstrukcję pułapki (Rysunek 1). Przy rozstawieniu 36 pułapek na noc (w jednym punkcie) zebrano od 1 do 1343 gnathiidów na pułapkę (275 ± 54). Obejmowało to zarówno syte, jak i nienasycone stadia młodzieńcze (Rysunek 2; Tabela 1, 2). Wyniki te potwierdzają skuteczność pułapek świetlnych w odłowach izopodów z rodziny Gnathiidae w warunkach przeprowadzonego badania. <strong class=...

Prezentujemy metodę zbierania pasożytów morskich ryb gnathiidae za pomocą pułapek świetlnych umieszczonych w miejscach terenowych poprzez nurkowanie na wstrzymanym oddechu lub nurkowanie.

Zbieranie pasożytów morskich gnathiidae isopodów za pomocą pułapek świetlnych

A method to collect marine gnathiid isopod fish parasites with the use of light traps is presented. Gnathiid isopods are a major group of marine fish ...

Pasożytnicze skorupiaki są ważnymi czynnikami w ekologii i historii życia ryb rafowych. Biomasa i energia, które usunęły ze swoich gospodarzy, były znaczne i wpływały na zachowanie, fizjologię i przetrwanie. Skorupiaki równonogów Gnathiidae reprezentują najbardziej znaczącą grupę pasożytów ryb w tropikalnych i subtropikalnych systemach rafowych, gdzie są zarówno liczne, jak i zróżnicowane i są podstawowym pożywieniem ryb czystszych.Gnathiidae mają niezwykłe historie życia, w których tylko trzy młode stadia żywią się krwią i płynami ustrojowymi ryb, podczas gdy w stadium dorosłym już się nie żywią. Biorąc pod uwagę, że żerowanie wymaga tylko krótkiego związku z żywicielem, podczas gdy każda przerwa między karmieniami trwa kilka dni, Gnathiidae spędzają większość swojego życia na wolności, żyjąc w bentosie. Biorąc pod uwagę wiele sposobów, w jakie Gnathiidae wpływają na swoich gospodarzy, istnieją ważne powody, aby włączyć je do badań ekologicznych raf koralowych.Jednak ich wyjątkowa historia życia i niewielka liczba badaczy, którzy je badają, stanowią barierę dla opracowywania, wdrażania i rozpowszechniania wiarygodnych, odtwarzalnych metod pobierania próbek w celu zebrania ich do badań. Pułapki świetlne od dawna są używane do zbierania małych organizmów morskich w nocy. Wykorzystują one i opierają się na fakcie, że wiele organizmów aktywnych nocnie, w tym stawonogi, jest przyciąganych do światła.Tradycyjnie używano ich do zbierania organizmów planktonowych w słupie wody. Jednak podstawowe zasady można zastosować do zbierania swobodnie pływających organizmów, które są aktywne w pobliżu bentosu. W tym miejscu przedstawiamy metodę pułapki świetlnej przystosowaną do zbierania swobodnie żyjących stadiów równonogów Gnathiidae w pobliżu dna oceanu w odległych środowiskach raf koralowych, takich jak Filipiny.W zbieraniu odległych obszarów pułapki te mają pewne zalety w porównaniu z innymi metodami, które zostały opracowane do zbierania tych organizmów. Są bardzo przenośne i trwałe i wymagają tylko trzech części, które są łatwo dostępne i niedrogie. Są również negatywnie wyporne.Ponieważ są zależne od światła jako przyciągania, są skuteczne tylko w nocy do zbierania gatunków aktywnych nocnie. Przyciągają również więcej niż gatunki docelowe, co wymaga sortowania próbek pod mikroskopem preparacyjnym w celu uzyskania organizmów docelowych. Pułapki świetlne. Budowa.Pułapki świetlne najlepiej konstruować z komercyjnych rur PVC pierwotnie zaprojektowanych do celów hydraulicznych. Użyj PVC o średnicy od 20 do 25 centymetrów przyciętego na długość od 30 do 40 centymetrów. Do obu końców rurki dodaj nasadki PCV z przezroczystymi akrylowymi lejkami włożonymi pośrodku otworu i przyklej na miejscu przezroczystym klejem epoksydowym.Upewnij się, że jeden koniec rurki ma przykręconą zdejmowaną pokrywę i że oba końce są wodoszczelne, gdy syfon jest zamknięty. Źródło światła. Przed wdrożeniem latarka podwodna, taka jak Fantasea nano spotter 6023, powinna być włączona i umieszczona w rurze skierowanej w stronę przezroczystego lejka, tak aby światło z latarki podwodnej oświetlało na zewnątrz przed jedną stroną rury.Światło przyciąga różne małe organizmy nocne, w tym Gnathiidae, i zmusza je do pływania w rurze z przezroczystym lejkiem. Po wejściu do tuby, nie są w stanie uciec ze względu na geometrię pułapki świetlnej i ciągłą obecność źródła światła. Umieszczenie. Napełnij pułapki świetlne przy włączonym świetle i wodą morską i zabezpiecz oba końce.Umieść pułapki na dnie morskim w piasku lub gruzie obok głów koralowców lub innych złożonych struktur, o których wiadomo, że przyciągają ryby. Skoncentruj stożek świetlny do wewnątrz, w kierunku obszarów, w których gromadzą się ryby. W płytkiej wodzie pułapki można umieszczać poprzez nurkowanie na wstrzymanym oddechu.Głębsze rozmieszczenie wymaga nurkowania. Pobierania. Organizmy pozostaną w pułapce, gdy baterie w światłach się wyczerpią i światło nie będzie już świecić. Zapewnia to elastyczność w czasie, w którym pułapki są odzyskiwane.Bezpośrednio przed wyjęciem pułapki należy uszczelnić otwory obu lejków na obu końcach rurki kawałkiem gliny lub gumowym korkiem, zatrzymując całą wodę morską i zawarte w niej organizmy. Transport. Po wydobyciu pułapek z dna, mogą one zostać przeniesione przez nurków na łódź lub przepłynięte na brzeg. Jednak najlepiej jest utrzymywać pułapki jak najbliżej temperatury otaczającej wody morskiej po ich usunięciu z oceanu.Przetransportuj je do laboratorium w celu przetworzenia tak szybko, jak to możliwe, ponieważ po usunięciu z oceanu nie będzie zachodzić wymiana gazu ani wody. Obróbka laboratoryjna. Przechowywanie i filtrowanie próbek.Gdy pułapki świetlne zostaną usunięte z oceanu i przyniesione z powrotem do laboratorium, opróżnij ich zawartość do wiader ze świeżą wodą morską. Dodaj napowietrzanie, aby utrzymać organizmy przy życiu do czasu filtrowania. Przefiltrować zawartość wiadra, przelewając przez lejek wyłożony siatką planktonową o gęstości od 50 do 100 UM.Następnie opróżnij zawartość do stumililitrowego pojemnika ze świeżą wodą morską. Za pomocą pipety pobrać z tego małego pojemnika porcje próbki umieścić porcje próbki na szalce Petriego do mikroskopii. Powtarzać tę czynność, aż cała próbka zostanie przetworzona.Identyfikacja i hodowla równonogów Gnathiidae. Ponieważ próbki pułapek świetlnych przyciągają wiele gatunków małych bezkręgowców, próbki muszą być dokładnie przebadane w celu zidentyfikowania i usunięcia równonogów Gnathiidae. Do tego zadania najlepsze jest powiększenie od 10 do 20 razy.Identyfikacja Gnathiidae na poziomie rodziny nie wymaga żywych okazów. Jednak dorosłe Gnathiidae, które rzadko są łapane w pułapki świetlne, są potrzebne do morfologicznej identyfikacji gatunku i do rozmnażania. Tak więc w przypadkach, gdy Gnathiidy muszą być utrzymywane przy życiu lub hodowli, delikatnie usuń je pipetą i umieść w małych plastikowych pojemnikach ze świeżą wodą morską.Reprezentatywne wyniki. Podczas pobierania próbek w środkowych Filipinach, konstrukcja pułapki konturowej była stosowana, gdy pułapki były ustawiane w nocy. Zebrano od jednego do 1 343 Gnathiidae na pułapkę.Obejmowały one zarówno stadia młodociane karmione, jak i niekarmione. Wyniki te wyraźnie pokazują skuteczność pułapek świetlnych w zbieraniu równonogów Gnathiidae w badanych warunkach. Ta metoda zbierania Gnathiid jest skuteczna i wystarczająco elastyczna dla różnych stanowisk terenowych i pytań naukowych.Na przykład w badaniu przeprowadzonym przez Artima i in. w 2020 r. na Karaibach, gdzie wykorzystali pułapki świetlne do ilościowego określenia pokrywy koralowców i biomasy ryb pod kątem liczebności Gnathiidae. Konkluzja. Chociaż do zbierania Gnathiidów opracowano i wykorzystano inne techniki, ta technika jest szczególnie skuteczna. Podczas gdy opisane tutaj pułapki świetlne przyciągają szeroką gamę małych bezkręgowców ruchomych, skład tego przyłowu jest bardzo zmienny.Jednak po umieszczeniu w siedlisku, które obejmuje gruz i ryby, Gnathiidy są łapane konsekwentnie. Chociaż to badanie demonstracyjne koncentrowało się na miejscach na Filipinach, pułapki o podobnej konstrukcji były również z powodzeniem wykorzystywane do badań w miejscach w regionie Karaibów i Wielkiej Rafy Koralowej.

collecting-marine-gnathiid-isopod-fish-parasites-with-light-traps

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Testy behawioralne dostarczają potężnych narzędzi do zrozumienia funkcji neuronów. W tym miejscu przedstawiamy kilka protokołów ilościowego określania zachowań żywieniowych drapieżników występujących u modelowego nicienia Pristionchus pacificus i jego krewnych. Dodatkowo udostępniamy metody analizy adaptacji żywieniowych drapieżników, w tym budowy jamy ustnej i zębów.

Badanie drapieżnych zachowań żywieniowych u Pristionchus i innych nicieni

Plankton i zawieszone cząstki odgrywają główną rolę w cyklach biogeochemicznych w oceanie. W tym przypadku zapewniamy ultraczystą, bezstresową metodę zbierania różnych rozmiarów cząstek i planktonu na morzu, która jest w stanie poradzić sobie z dużymi ilościami wody morskiej.

Ultra-czyste, wielowarstwowe urządzenie do zbierania frakcjonowanego planktonu morskiego i zawieszonych cząstek

Podejście markerów troficznych kwasów tłuszczowych, tj. asymilacja kwasów tłuszczowych jako całej cząsteczki i transfer do tkanki konsumenckiej bez lub z niewielkimi modyfikacjami, jest utrudnione przez luki w wiedzy na temat metabolizmu kwasów tłuszczowych u małych bezkręgowców glebowych. Profilowanie izotopologiczne jest cennym narzędziem do rozplątywania oddziaływań troficznych.

Profilowanie izotopologu kwasów tłuszczowych 13C zapewnia wgląd w troficzny transfer węgla i metabolizm lipidów u konsumentów bezkręgowców

Pąkla Balanus (Amphibalanus) improvisus jest modelem do badania osmoregulacji i przeciwporostowości. Jednak naturalne tarło sezonowe daje nieprzewidywalną podaż larw karpiowatych. W tym miejscu opisano protokół całorocznej hodowli B. improvisus, w tym produkcji larw. Zilustrowano zastosowanie hodowlanych pąkli w badaniach ekspresji genów.

Barnacle Balanus improvisus jako model morski - hodowla i ekspresja genów

Danio rerio) stają się powszechnie używanym modelem zwierzęcym kręgowców do kolonizacji i patogenezy mikrobiologicznej. Protokół ten opisuje zastosowanie pierwotniaka Paramecium caudatum jako nośnika infekcji przenoszonych przez żywność u larw danio pręgowanego. P. caudatum łatwo internalizuje bakterie i jest wchłaniany przez larwy danio pręgowanego poprzez naturalne zachowania żerowania.

Wykorzystanie pierwotniaka Paramecium caudatum jako nośnika infekcji przenoszonych przez żywność u larw danio pręgowanego

Protokół skupia się na zbieraniu próbek żółwi morskich, opisując wszystkie etapy od odzyskania zwierząt i sekcji zwłok do klasyfikacji i kwantyfikacji spożytych odpadów morskich. Ponadto reprezentatywne wyniki pokazują, w jaki sposób można wykorzystać zebrane dane do opracowania możliwych progów dobrego stanu środowiska.

Gromadzenie danych na temat połykania odpadów morskich przez żółwie morskie i progów dobrego stanu środowiska

Prezentowany tutaj jest protokół dla techniki opartej na mikroskopii epifluorescencyjnej dla pojedynczej komórki, do ilościowego określania wskaźników wypasu u wodnych drapieżnych eukariontów z wysoką precyzją i rozdzielczością taksonomiczną.

Fluorescencyjnie znakowane bakterie jako znacznik w celu ujawnienia nowych szlaków przepływu węgla organicznego w ekosystemach wodnych

To jest protokół do modelowania spektrum wielkości (relacji skalowania między indywidualną masą a gęstością populacji) dla połączonych danych o rybach i bezkręgowcach ze strumieni i rzek, w których można brodzić. Metody obejmują: techniki terenowe do ilościowego pobierania próbek ryb i bezkręgowców; metody laboratoryjne do standaryzacji danych terenowych; i statystyczna analiza danych.

Modelowanie spektrum wielkości makrobezkręgowców i ryb w ekosystemach strumieni

Oikopleura dioica to organizm modelowy osłonic w różnych dziedzinach biologii. Opisujemy metody pobierania próbek, identyfikację gatunków, konfigurację hodowli i protokoły hodowli zwierząt i paszy dla glonów. Zwracamy uwagę na kluczowe czynniki, które przyczyniły się do wzmocnienia systemu kultury oraz omawiamy możliwe problemy i rozwiązania.

Usprawnione pobieranie próbek i hodowla pelagicznych larw kosmopolitycznych (Oikopleura dioica)

Ten protokół przedstawia metodę oceny szybkości żerowania skorupiaka drążącego drewno, Limnoria, poprzez pomiar produkcji granulek kałowych. Metoda ta jest przeznaczona do stosowania w laboratoriach niespecjalistycznych i może zostać włączona do standardowych protokołów testowych w celu oceny zwiększonej trwałości drewna w warunkach morskich.

Szybkie badania odporności drewna na biodegradację przez skorupiaki morskie

Badania sieci badawczych optycznych oferują nieinwazyjną metodę pobierania próbek populacji ryb dennych i zapewniają dane w bardziej szczegółowej skali niż tradycyjne badania sieci badawczych. Ten artykuł przedstawia ogólną procedurę przeprowadzania optycznego badania sieci badawczych ryb dennych w Nowej Anglii.

Badania optycznemiędzypływkami ryb dna morskiego: Badanie wideo z użyciem ciągników po zachodniej części Zatoki Maine z dotyczącym dorsza atlantyckiego (Gadus morhua)

Naucz się zbierać pasożyty morskie Gnathiidae za pomocą pułapek świetlnych na rafach koralowych. Ta metoda umożliwia badanie dynamiki populacji izopodów i ich interakcji z rybami rafowymi.

Zbieranie pasożytów morskich gnathiidae isopodów za pomocą pułapek świetlnych

Przeglądaj więcej filmów