-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Wielokanałowy zapis zewnątrzkomórkowy w swobodnie poruszających się myszach
Wielokanałowy zapis zewnątrzkomórkowy w swobodnie poruszających się myszach
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Multichannel Extracellular Recording in Freely Moving Mice

Wielokanałowy zapis zewnątrzkomórkowy w swobodnie poruszających się myszach

Full Text
3,643 Views
08:59 min
May 26, 2023

DOI: 10.3791/65245-v

Maria Ghouse*1, Meng Li*1, Cheng Long1,2, Jinxiang Jiang1

1School of Life Sciences,South China Normal University, 2Panyu Central Hospital Joint Laboratory of Translational Medical Research, Panyu Central Hospital,South China Normal University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study outlines a protocol for multichannel extracellular recording in the motor cortex (MC) of freely moving, conscious mice. The focus is on analyzing local field potentials (LFPs) and spikes to understand the neural network activity associated with specific behaviors. The methodology emphasizes the development of a lightweight microdrive system to facilitate these recordings.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Behavioral Analysis

Background

  • Multichannel recordings can elucidate neural mechanisms underlying behavior.
  • Conventional techniques may be challenging for beginners.
  • A lightweight microdrive system enhances recording efficacy.
  • The study aims to correlate electrophysiological signals with particular tasks performed by animals.

Purpose of Study

  • To develop an optimized protocol for recording LFP and spiking activity in the MC of freely moving mice.
  • To assist beginners in acquiring and analyzing neural signals.
  • To facilitate understanding of network dynamics related to specific behavioral tasks.

Methods Used

  • Multichannel extracellular recording using a microdrive system in freely behaving mice.
  • The study focuses on the motor cortex (MC) as the biological model.
  • No multiomics workflows are mentioned.
  • Steps include system assembly, electrode implantation, and recording protocol details.
  • Analysis techniques involve spike sorting and correlation with LFP data.

Main Results

  • Neuronal properties of MC pyramidal neurons displayed greater valley widths and waveform durations compared to interneurons.
  • A cross-correlogram indicated pyramidal neurons spiked prior to interneurons, suggesting a temporal relationship in neural activity.
  • Similar power spectrum findings were reported for LFPs from both sides of the MC in normal mice.

Conclusions

  • The study demonstrates an effective approach for investigating real-time neural dynamics in freely moving mice.
  • Insights gained may enhance understanding of the neural underpinnings of behavior.
  • Potential applications stretch to understanding neuronal mechanisms relevant to various behaviors and conditions.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using a microdrive system for recordings?
The microdrive system allows for precise multichannel recordings while enabling the subjects to move freely, which is crucial for studying behavior-related neural activity.
How is the multichannel recording implemented in freely moving mice?
Mice are equipped with a lightweight microdrive system that facilitates the implantation of electrode arrays into the motor cortex, allowing for the capture of neural signals during behavior.
What types of data are obtained from this methodology?
The method yields both local field potentials (LFPs) and spiking data, providing insights into the synchrony and temporal relationships between various neuronal types.
Can this methodology be adapted for other types of experimental designs?
Yes, the principles of multichannel recordings can be adapted for different neuronal types or brain regions, making it versatile for various neuroscience studies.
What are key limitations of this recording method?
Challenges may include the complexity of signal analysis and the need for experience with electrode implantation and handling freely moving subjects.
How does this study contribute to understanding behavior?
By correlating neural firing patterns with specific behaviors, the study enhances our understanding of the neural circuits involved in motor control and decision-making processes.

Protokół opisuje metodologię zewnątrzkomórkowego zapisu w korze ruchowej (MC) w celu ujawnienia zewnątrzkomórkowych właściwości elektrofizjologicznych u swobodnie poruszających się świadomych myszy, a także analizę danych lokalnych potencjałów pola (LFP) i skoków, co jest przydatne do oceny aktywności neuronalnej sieci leżącej u podstaw interesujących zachowań.

Naszym celem jest odkrycie właściwości neuronalnych odpalania i sieciowych potencjałów pola lokalnego u zachowujących się myszy, wykonujących określone zadania poprzez korelację sygnału elektrofizjologicznego z zachowaniami. Wykazano, że wielokanałowy zapis zewnątrzkomórkowy za pomocą systemu microdrive jest odpowiednią i wydajną technologią dla średniej aktywności neuronalnej podczas testów behawioralnych. Nagrywanie wielokanałowe u swobodnie poruszających się myszy zostało uznane za przydatną technologię w badaniach neurobiologicznych, ale nadal jest dość trudne dla początkujących, aby uzyskać i przeanalizować te sygnały.

Przedstawiliśmy, jak wykonać wielokanałowy zapis zewnątrzkomórkowy u swobodnie poruszających się myszy z bardziej stabilnym i lekkim systemem mikronapędów oraz zoptymalizować procesy nagrywania i analizy danych dla początkujących. W nowej wersji zamierzamy zwiększyć liczbę kanałów i zmniejszyć głośność systemu mikrosterowników. Zacznij od montażu systemu mikronapędu.

Połącz dwie zaprojektowane komputerowo płytki za pomocą dwóch czaszek i przytrzymującej ruchomy mikrodysk i przymocuj złącze do jednej płytki. Upewnij się, że mikronapęd może przenosić dwa zestawy po osiem rurek prowadzących z każdej strony kory ruchowej lub obszaru MC. Przytnij rurki prowadzące na tę samą długość.

Wytnij 16 drutów nichromowych, z których każdy ma około pięciu centymetrów długości i 35 mikrometrów średnicy. Załaduj przewody do rurek prowadzących i nałóż klej, aby je zamocować. Zdejmij izolację przewodu i zwiń każdy odsłonięty przewód do każdego styku ze złącza, postępując zgodnie z mapą kanałów oraz elektrodami odniesienia i uziemiającymi.

Następnie powoli pokryj przewodzącą farbę na każdym szpilce. Przykryj kołki żywicą epoksydową, a następnie wykonaj złocenie za pomocą testera impedancji, aby zmniejszyć impedancję końcówek elektrod do około 350 kiloomów. W celu wszczepienia matrycy elektrod zamocuj znieczuloną mysz w aparacie stereotaktycznym i użyj regulatora temperatury, aby utrzymać temperaturę w odbycie na poziomie 37 stopni Celsjusza.

Następnie wykonaj małe nacięcie w linii środkowej, aby odsłonić czaszkę. Usuń resztki tkanki za pomocą nożyczek i oczyść czaszkę sterylnymi patyczkami kosmetycznymi nasączonymi solą fizjologiczną. Za pomocą szklanej mikroelektrody wypełnionej tuszem zaznacz żądane miejsca obustronnego MC do implantacji.

Następnie, za pomocą wiertła do czaszki, ostrożnie wywierć dwa małe otwory po lewej i prawej stronie skoordynowanej czaszki w obszarach MC. Delikatnie wyjmij oponę twardą z otworów za pomocą drobnych kleszczyków. Następnie włóż system mikronapędu do środka otworów za pomocą mikromanipulatora z prędkością 10 mikrometrów na sekundę.

Po zakończeniu wkładania wlej wazelinę do ścianek cementu dentystycznego i połącz dolną płytę systemu mikronapędu oraz ściany cementu dentystycznego z mieszanym cementem dentystycznym. W przypadku nagrywania wielokanałowego należy przesunąć w dół matryce elektrod, przekręcając na ruchomej części systemu microdrive z jednodniowym wyprzedzeniem. Przytrzymaj głowę obudzonej myszy lekko i ostrożnie, a następnie połącz środek stopnia głowicy i balon z helem za pomocą gwintu, aby zrównoważyć ciężar stopnia głowicy i układu mikronapędu.

Przechwytywanie surowych sygnałów za pomocą elektrod rejestrujących i systemów wielokanałowych poprzez próbkowanie z częstotliwością 30 kiloherców w oprogramowaniu do nagrywania, a następnie digitalizacja za pomocą cyfrowego przetwornika analogowego z systemów wielokanałowych. Wyodrębnij potencjał pola lokalnego lub sygnały LFP z surowych danych, ponownie próbkując z częstotliwością 10 kiloherców, a następnie za pomocą filtra wycinającego usuń szum linii 50 Hz. W celu sortowania i analizy wartości szczytowych, w oprogramowaniu do sortowania wartości szczytowych kliknij plik, a następnie otwórz pliki i NEV, aby otworzyć dane spajków próbkowane w 30 kilohercach.

Kliknij na informacje, aby wybrać nieposortowany kanał, a następnie wybierz sortuj, zmień metodę sortowania i użyj K średnich. Naciśnij przycisk doliny szukając sortowania, a następnie K oznacza sortowanie, aby uzyskać posortowane jednostki. Następnie w oprogramowaniu do analizy danych neurofizjologicznych otwórz posortowany plik spaja, klikając plik, importuj dane i plik Blackrock.

Aby uzyskać autokorelogram dla wybranej jednostki, kliknij analizę, a następnie autokorylogramy i ustaw parametry. Załaduj posortowane dane spajków, a następnie kliknij analizę i histogramy interwałów międzyszczytowych, aby uzyskać histogram interwału międzyskokowego, a następnie ustaw żądane parametry. Kliknij analizę, a następnie korellogramy krzyżowe, aby uzyskać korellogram krzyżowy między dwoma posortowanymi zdarzeniami jednostkowymi, a następnie ustaw zdarzenia referencyjne i parametry.

Aby przeprowadzić analizę LFP, kliknij plik, importuj dane i plik Blackrock, aby otworzyć ciągłe dane sygnału próbkowane w 10 kilohercach. Następnie, klikając analiza i widmo dla ciągłego, przeanalizuj widmo mocy dla LFP z wybranego kanału. Następnie kliknij analizę, a następnie koherencję dla ciągłej, aby przeanalizować spójność dla dwóch LFP z lewej i prawej strony MC.Następnie kliknij analizę, a następnie korelację ze zmiennymi ciągłymi, aby przeanalizować korelację między dwoma LFP z lewej i prawej strony MC.Po zakończeniu kliknij wyniki, a następnie wyniki numeryczne, aby zapisać gęstość widma mocy, spójność i korelacja z rozszerzeniem nazwy pliku XLS z kropką.

Aby przeanalizować korelacje między skojkiem a LFP, kliknij plik, a następnie zaimportuj dane i plik Blackrock, aby otworzyć ciągłe dane sygnału i dane szczytu. Następnie kliknij na analiza i analiza koherencji, aby przeanalizować spójność między skokami a LFP z wybranego kanału. Na koniec kliknij wyniki, a następnie wyniki numeryczne, aby zapisać wyniki spójności pola spajka z rozszerzeniem nazwy pliku XLS z kropką.

Szerokość doliny i czas trwania fali jednostek w MC myszy wykazały, że zarówno szerokość doliny, jak i czas trwania fali domniemanych neuronów piramidowych MC u myszy są wyższe niż w przypadku przypuszczalnych neuronów wewnętrznych. Krzyż korellogramu między domniemanymi neuronami piramidalnymi a interneuronami wskazał, że przypuszczalny impuls neuronów piramidowych występuje przed domniemanymi neuronami wewnętrznymi z oknem 18 milisekund. W analizie LFP LFP lewego i prawego MC u normalnych myszy były podobne w spektrum mocy, co sugeruje zsynchronizowane działania między lewym i prawym MC. Ponadto obliczono spójność i korelację między lewym i prawym MC.

Krzywa koherencji pola kolca w MC normalnej myszy wykazała silniejszą niską koherencję gamma dla domniemanych interneuronów w porównaniu z neuronami piramidowymi.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Wielokanałowy zapis zewnątrzkomórkowy swobodnie poruszające się myszy wypalanie neuronów lokalne potencjały pola sieciowego sygnały elektrofizjologiczne system mikronapędów testy behawioralne analiza danych implantacja elektrod aktywność sieci neuronalnej kora ruchowa układy mikroelektrod neurony impulsowe korelacja behawioralna techniki neurobiologiczne

Related Videos

Zapisy EEG o dużej gęstości swobodnie poruszających się myszy przy użyciu mikroelektrody na bazie poliimidu

06:59

Zapisy EEG o dużej gęstości swobodnie poruszających się myszy przy użyciu mikroelektrody na bazie poliimidu

Related Videos

38K Views

Wstrzykiwana elektronika siatkowa do stabilnych zapisów pojedynczych neuronów w mózgu myszy

05:01

Wstrzykiwana elektronika siatkowa do stabilnych zapisów pojedynczych neuronów w mózgu myszy

Related Videos

494 Views

Badanie słuchowych reakcji neuronalnych u obudzonej myszy w obecności hamującego blokera neuroprzekaźników

02:58

Badanie słuchowych reakcji neuronalnych u obudzonej myszy w obecności hamującego blokera neuroprzekaźników

Related Videos

475 Views

Monitorowanie i lokalizacja pojedynczych neuronów w podkorowych strukturach mózgu czujnych, skrępowanych głową szczurów

08:41

Monitorowanie i lokalizacja pojedynczych neuronów w podkorowych strukturach mózgu czujnych, skrępowanych głową szczurów

Related Videos

11.9K Views

Płaska podłoga podniesiona powietrznie: nowa metoda łączenia zachowania z mikroskopią lub elektrofizjologią na obudzonych, swobodnie poruszających się gryzoniach

14:02

Płaska podłoga podniesiona powietrznie: nowa metoda łączenia zachowania z mikroskopią lub elektrofizjologią na obudzonych, swobodnie poruszających się gryzoniach

Related Videos

23.4K Views

Zewnątrzkomórkowy zapis aktywności neuronalnej w połączeniu z mikrojonoforowym zastosowaniem substancji neuroaktywnych u obudzonych myszy

11:19

Zewnątrzkomórkowy zapis aktywności neuronalnej w połączeniu z mikrojonoforowym zastosowaniem substancji neuroaktywnych u obudzonych myszy

Related Videos

10.5K Views

Bezprzewodowy, dwukierunkowy interfejs do rejestrowania in vivo i stymulacji aktywności neuronalnej u swobodnie zachowujących się szczurów

10:41

Bezprzewodowy, dwukierunkowy interfejs do rejestrowania in vivo i stymulacji aktywności neuronalnej u swobodnie zachowujących się szczurów

Related Videos

13.9K Views

Jednoczesne monitorowanie wideo-EEG-EKG w celu identyfikacji dysfunkcji neurosercowej w mysich modelach padaczki

11:54

Jednoczesne monitorowanie wideo-EEG-EKG w celu identyfikacji dysfunkcji neurosercowej w mysich modelach padaczki

Related Videos

26.8K Views

Ocena lateralizacji półkuli z obustronnym zapisem potencjału pola lokalnego w wtórnej korze ruchowej myszy

07:03

Ocena lateralizacji półkuli z obustronnym zapisem potencjału pola lokalnego w wtórnej korze ruchowej myszy

Related Videos

7.2K Views

Niedrogi elektroencefalograficzny system zapisu w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do przezczaszkowej stymulacji mózgu myszy in vivo

05:26

Niedrogi elektroencefalograficzny system zapisu w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do przezczaszkowej stymulacji mózgu myszy in vivo

Related Videos

4.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code