Name: Niedrogi elektroencefalograficzny system zapisu w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do przezczaszkowej stymulacji mózgu myszy in vivo (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-05-26T12:05:00.000+00:00
Duration: 5 min 26 s
Description: Poznaj niedrogi system EEG z cewką milimetrową do przezczaszkowej stymulacji magnetycznej u myszy. Ta metoda umożliwia jednoczesny pomiar aktywności mózgu podczas TMS, badając pobudliwość i łączność neuronalną.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez Murata Science Foundation, Suzuken Memorial Foundation, Nakatani Foundation for Advancement of Measuring Technologies in Biomedical Engineering, oraz Grant-in-Aid for Exploratory Research (numer grantu 21K19755, Japonia) i na badania naukowe (B) (numer grantu 23H03416, Japonia) dla T.T.

Stimulating Mouse Brain with a Low-Cost EEG and Millimeter-Sized Coil

<ol><li>Ilmoniemi, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+responses+to+magnetic+stimulation+reveal+cortical+reactivity+and+connectivity%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Neuronal responses to magnetic stimulation reveal cortical reactivity and connectivity.</a> Neuroreport. 8 (16), 3537-3540 (1997).</li>
<li>Hallett, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+magnetic+stimulation%3A+a+primer%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Transcranial magnetic stimulation: a primer.</a> Neuron. 55 (2), 187-199 (2007).</li>
<li>Thut, G., Pascual-Leone, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrating+TMS+with+EEG%3A+How+and+what+for%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Topography%22%5BJournal%5D)">Integrating TMS with EEG: How and what for.</a> Brain Topography. 22 (4), 215-218 (2010).</li>
<li>Ilmoniemi, R. J., Kicic, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methodology+for+combined+TMS+and+EEG%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Topograpy%22%5BJournal%5D)">Methodology for combined TMS and EEG.</a> Brain Topograpy. 22 (4), 233-248 (2010).</li>
<li>Daskalakis, Z. J., Farzan, F., Radhu, N., Fitzgerald, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+transcranial+magnetic+stimulation+and+electroencephalography%3A+its+past%2C+present+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Combined transcranial magnetic stimulation and electroencephalography: its past, present and future.</a> Brain Research. 1463, 93-107 (2012).</li>
<li>Tremblay, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+utility+and+prospective+of+TMS-EEG%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Neurophysiology%22%5BJournal%5D)">Clinical utility and prospective of TMS-EEG.</a> Clinical Neurophysiology. 130 (5), 802-844 (2019).</li>
<li>Pellicciari, M. C., Veniero, D., Miniussi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizing+the+cortical+oscillatory+response+to+TMS+pulse%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Cellular+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Characterizing the cortical oscillatory response to TMS pulse.</a> Frontiers in Cellular Neuroscience. 11, 38(2017).</li>
<li>Lin, Y. J., Shukla, L., Dugue, L., Valero-Cabre, A., Carrasco, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcranial+magnetic+stimulation+entrains+alpha+oscillatory+activity+in+occipital+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Transcranial magnetic stimulation entrains alpha oscillatory activity in occipital cortex.</a> Scientific Reports. 11 (1), 18562(2021).</li>
<li>Takahashi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laminar+responses+in+the+auditory+cortex+using+a+multielectrode+array+substrate+for+simultaneous+stimulation+and+recording%5BTitle%5D)+AND+%22IEEJ+Transactions+Electrical+and+Electronic+Engineering%22%5BJournal%5D)">Laminar responses in the auditory cortex using a multielectrode array substrate for simultaneous stimulation and recording.</a> IEEJ Transactions Electrical and Electronic Engineering. 14 (2), 303-311 (2019).</li>
<li>Yoshikawa, T., Higuchi, H., Furukawa, R., Tateno, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+and+spatial+profiles+of+evoked+activity+induced+by+magnetic+stimulation+using+millimeter-sized+coils+in+the+mouse+auditory+cortex+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Temporal and spatial profiles of evoked activity induced by magnetic stimulation using millimeter-sized coils in the mouse auditory cortex in vivo.</a> Brain Research. 1796, 148092(2022).</li>
<li>Tang, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+and+evaluation+of+rodent-specific+rTMS+coils%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Neural+Circuits%22%5BJournal%5D)">Construction and evaluation of rodent-specific rTMS coils.</a> Frontiers in Neural Circuits. 10, 47(2016).</li>
<li>Li, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlling+annealing+and+magnetic+treatment+parameters+to+achieve+high+permeabilities+in+55+Ni-Fe+toroid+cores%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Transactions+on+Magnetics%22%5BJournal%5D)">Controlling annealing and magnetic treatment parameters to achieve high permeabilities in 55 Ni-Fe toroid cores.</a> IEEE Transactions on Magnetics. 37 (4), 2315-2317 (2001).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Badanie to dotyczy wieloośrodkowego systemu rejestracji EEG w połączeniu z systemem stymulacji magnetycznej przeznaczonym dla małych zwierząt, w tym myszy. Zbudowany system jest tani i łatwy do zbudowania w laboratoriach fizjologicznych, a także może rozszerzyć istniejące konfiguracje pomiarowe. Procedura chirurgiczna niezbędna do uzyskania danych z systemu rejestracji myszy jest niezwykle prosta, jeśli takie laboratoria mają wcześniejsze doświadczenie ze standardowymi eksperymentami elektrofizjologicznymi.
<p class=...

Przezczaszkowa stymulacja magnetyczna (TMS) jest obiecującym narzędziem do nauki o ludzkim mózgu, zastosowań klinicznych i badań na modelach zwierzęcych ze względu na jej nieinwazyjność. We wczesnej fazie zastosowań TMS pomiar efektu korowego w odpowiedzi na TMS z pojedynczym i sparowanym impulsem u ludzi i zwierząt był ograniczony do kory ruchowej; Łatwo mierzalna moc wyjściowa ograniczała się do potencjałów wywołanych motorycznych i indukowanych potencjałów mioelektrycznych obejmujących korę ruchową1,2. Aby rozszerzyć obszary mózgu, które można mierzyć za pomocą modulacji TMS, zapis elektroencefalograficzny (EEG) został zintegrowany z TMS z pojedynczym i sparowanym impulsem jako użyteczną metodą bezpośredniego badania pobudliwości, łączności i dynamiki czasoprzestrzennej obszarów w całym mózgu3,4,5. Tak więc, jednoczesne zastosowanie TMS i zapisu EKG (TMS-EEG) do mózgu zostało wykorzystane do zbadania różnych powierzchownych obszarów kory mózgowej ludzi i zwierząt w celu zbadania wewnątrzkorowych obwodów nerwowych (patrz Tremblay et al.6). Co więcej, systemy TMS-EEG mogą być wykorzystywane do badania dodatkowych cech czasoprzestrzennych kory mózgowej, w tym propagacji sygnałów do innych obszarów kory mózgowej i generowania aktywności oscylacyjnej7,8.
Jednak mechanizm działania TMS w mózgu pozostaje spekulatywny ze względu na nieinwazyjność TMS, co ogranicza naszą wiedzę o tym, jak mózg funkcjonuje podczas aplikacji TMS. Dlatego inwazyjne badania translacyjne na zwierzętach, od gryzoni po ludzi, mają kluczowe znaczenie dla zrozumienia mechanizmu wpływu TMS na obwody neuronalne i ich aktywność. W szczególności w przypadku połączonych eksperymentów TMS-EEG na zwierzętach nie opracowano intensywnie jednoczesnego systemu stymulacji i pomiaru dla małych zwierząt. Dlatego eksperymentatorzy są zobowiązani do skonstruowania takiego systemu metodą prób i błędów zgodnie z ich specyficznymi wymaganiami eksperymentalnymi. Ponadto modele mysie są przydatne wśród innych modeli gatunków zwierząt in vivo, ponieważ wiele transgenicznych i izolowanych szczepów myszy jest dostępnych jako zasoby biologiczne. W związku z tym wygodna metoda zbudowania połączonego systemu pomiarowego TMS i EEG dla myszy byłaby pożądana dla wielu badaczy neurobiologii.
To badanie proponuje metodę łączoną TMS-EEG, która może być stosowana do jednoczesnej stymulacji i rejestracji mózgu myszy, który jest głównym typem transgenicznego zwierzęcia wykorzystywanego w badaniach, i który może być łatwo skonstruowany w typowych laboratoriach neurologicznych. Po pierwsze, opisano tani system rejestracji EEG wykorzystujący konwencjonalne elektrody śrubowe i elastyczne podłoże do powtarzalnego przypisywania pozycji matrycy elektrod w każdym eksperymencie. Po drugie, system stymulacji magnetycznej jest zbudowany przy użyciu cewki o rozmiarach milimetrowych, którą można łatwo wykonać na zamówienie w typowych laboratoriach. Po trzecie, system połączony z TMS-EEG rejestruje aktywność neuronalną w odpowiedzi na stymulację dźwiękową i magnetyczną. Metoda przedstawiona w tym badaniu może ujawnić mechanizmy, które generują określone zaburzenia u małych zwierząt, a wyniki uzyskane w modelach zwierzęcych można przełożyć na zrozumienie odpowiadających im zaburzeń u ludzi.

<table><tbody><tr><td>Drukarka 3D</td><td>Zhejiang Flashforge 3D Technology Co., Ltd</td><td>FFD-101</td><td>Drukarka używana do drukowania 3D krążków w kształcie pączków</td></tr><tr><td>SIARCZAN ATROPIN&nbsp; 0,5 mg</td><td>NIPRO ES PHARMA CO., LTD.</td><td>-</td><td>Siarczan atropiny</td></tr><tr><td>Wzmacniacz bipolarny</td><td>NF Corp.</td><td>KIT61380</td><td>Do wzmacniania przebiegów dla wejścia cewki</td></tr><tr><td>Butorphanol</td><td>Meiji Seika Pharma Co., Ltd., Tokio,</td><td></td> <td>Japonia-Do anatezy zwierząt</td></tr><tr><td>Komercyjny producent elastycznej matrycy 2D</td><td>p-ban.com Corp.</td><td>-</td><td>URL: https://www.p-ban.com/</td></tr> <tr><td>Program komputerowy do analizy sygnałów wyjściowych</td><td>Natinal Instruments</td><td>NI-DAQ i&nbsp; NI-DAQmx Python</td><td>Do analizy sygnałów wyjściowych z czujnika halla</td></tr><tr><td>Connector</td><td>Harwin Inc.</td><td>G125-FV12005L0P</td><td>Do złącza do podłączenia do układu pomiarowego Podkładka</td></tr><tr><td>miedziana</td><td>p-ban.com Corp.</td><td>miedź</td><td>Podkładka miedziana na każdym podłożu</td></tr><tr><td>Drut miedziany</td><td>Kyowa Harmonet Ltd.</td><td>P644432</td><td>Uzwojenia cewki</td></tr><tr><td>DAQ Board</td><td>National Instruments Corp.</td><td>USB-6343</td><td>Do pomiaru gęstości strumienia magnetycznego cewki</td></tr><tr><td>Cement dentystyczny</td><td>SHOFU INC.</td><td></td><td>Samoutwardzalna elektroda ortodontyczna</td></tr><tr><td>ECoG</td> Quick Resin <td>NeuroNexus Inc.</td><td>HC32</td><td>Odniesienie do projektu elastycznej matrycy 2D</td></tr><tr><td>z żywicy epoksydowej</td><td>Konishi Co., Ltd.</td><td>#16123</td><td>Do budowy cewek</td></tr><tr><td>Karbaminian etylu</td><td>FUJIFILM Wako Pure Chemical Corp.</td><td>050-05821</td><td>Do znieczulenia uretanowego</td></tr><tr><td>Płaski taśmowy</td><td>Oki Electric Cable Co., Ltd.</td><td>FLEX-B2(20)-7/0.1 20028 5m</td><td>Do do połączenia złącza natynkowego z elastycznym podłożem systemu pomiarowego</td></tr><tr><td></td><td>p-ban.com Corp.</td><td>poliimid</td><td>Płyta bazowa elastycznego podłoża</td></tr><tr><td>Generator funkcji</td><td>NF Corp.</td><td>WF1947</td><td>Do generowania przebiegów dla czujnika Halla na wejściu cewki</td></tr><tr><td>,</td><td>Honeywell International Inc.</td><td>SS94A2D</td><td>Do pomiaru gęstości strumienia magnitycznego cewki</td></tr><tr><td>Zaciskarka IDC</td><td>Pro'sKit Industries Co.</td><td>6PK-214</td><td>Do zaciskania IDC i jednego końca płaskiego taśmowego; Narzędzie do zaciskania płaskich złączy kablowych</td></tr><tr><td>Klej błyskawiczny</td><td>Konishi Co., Ltd.</td><td>#04612</td><td>Do budowy cewek</td></tr><tr><td>Łącznik izolacyjno-przemieszczeniowy (IDC&nbsp;)</td><td>Uxcell Japan</td><td>B07GDDG3XG</td><td>2 i razy; 10 pinów o rastrze 1,27 mm&nbsp;</td></tr><tr><td>Miernik LCR</td><td>NF Corp.</td><td>ZM2376</td><td>Do pomiaru właściwości AC</td></tr><tr><td>manipulatora</td> cewki <td>NARISHIGE Group.</td><td>SM-15L</td><td>Do manipulowania cewką</td></tr><tr><td>Medetomidine</td><td>Kobayashi Kako, Fukui,</td> <td>Japonia-Do</td> <td>anatezy zwierząt</td></tr><tr><td>Midazolam</td><td>Astellas Pharma, Tokio, Japonia-Do</td><td></td> <td>anatezy zwierząt</td></tr><tr><td>Miniaturowa śruba</td><td>KOFUSEIBYO Co., Ltd.</td><td>S0,6 * 1,5</td><td>Do wykrywania EEG i elektrody referencyjnej</td></tr><tr><td>Mysz</td><td>Japan SLC, Inc.</td><td>C57BL/6J&nbsp; (C57BL/6JJmsSlc)</td><td>Zwierzę doświadczalne</td></tr><tr><td>Pręt Permalloy-45</td><td>Nilaco Corp.</td><td>780544</td><td>Rdzeń cewki</td></tr><tr><td>System nagrywania</td><td>Plexon Inc.</td><td>OmniPlex</td><td>Do akwizycji danych EEG</td></tr><tr><td>Drut ze stali nierdzewnej</td><td>Wakisangyo Co., Ltd.</td><td>HW-136</td><td>Do chwytania za pomocą manipulatora</td></tr><tr><td>Aparat stereotaktyczny</td><td>NARISHIGE Group.</td><td>SR-5M-HT</td><td>Do mocowania głowicy myszy</td></tr><tr><td>Złącze do montażu powierzchniowego</td><td>Useconn Electronics Ltd.</td><td>PH127-2x10MG</td><td>Do złącza do montażu na elastycznej matrycy 2D</td></tr><tr><td>Sprzęt testujący (miernik LCR)</td> <td>NF Corp.</td><td>ZM2372</td><td>Kontrola styków i pomiary impedancji</td></tr><tr><td>Biały filament PLA</td><td>Zhejiang Flashforge 3D Technology Co., Ltd</td><td>PLA-F13</td><td>Materiał używany do drukowania 3D krążków w kształcie pączka</td></tr><tr><td>Xylocaine Jelly 2%</td> <td>Sandoz Pharma Co., Ltd.</td><td>-</td><td>chlorowodorek lidokainy</td></tr></tbody></table>

niedrogi elektroencefalograficzny system zapisu w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do przezczaszkowej stymulacji mózgu myszy in vivo

Low-Cost Electroencephalographic Recording System Combined with a Millimeter-Sized Coil to Transcranially Stimulate the Mouse Brain In Vivo

Tani system rejestracji elektroencefalograficznej (EEG) jest tutaj proponowany do sterowania przezczaszkową stymulacją magnetyczną (TMS) mózgu myszy in vivo, wykorzystując cewkę o rozmiarach milimetrowych. Korzystając z konwencjonalnych elektrod śrubowych w połączeniu z niestandardowym, elastycznym podłożem z matrycą wieloelektrodową, można przeprowadzić zapis w wielu miejscach z mózgu myszy. Ponadto wyjaśniamy, w jaki sposób cewka o rozmiarze milimetrowym jest wytwarzana przy użyciu taniego sprzętu, który zwykle znajduje się w laboratoriach. Przedstawiono również praktyczne procedury wytwarzania elastycznego podłoża z matrycy wieloelektrodowej oraz technikę chirurgicznej implantacji elektrod śrubowych, które są niezbędne do wytwarzania niskoszumowych sygnałów EEG. Chociaż metodologia ta jest przydatna do rejestrowania z mózgu każdego małego zwierzęcia, niniejszy raport koncentruje się na zastosowaniu elektrody w znieczulonej czaszce myszy. Co więcej, metodę tę można łatwo rozszerzyć na obudzone małe zwierzę, które jest połączone na uwięzi za pomocą wspólnego adaptera i przymocowane za pomocą urządzenia TMS do głowy podczas nagrywania. Opisano obecną wersję systemu EEG-TMS, która może składać się maksymalnie z 32 kanałów EEG (jako przykład przedstawiono urządzenie z 16 kanałami z mniejszą liczbą kanałów) oraz jedno urządzenie kanałowe TMS. Ponadto pokrótce przedstawiono typowe wyniki uzyskane przez zastosowanie systemu EEG-TMS u znieczulonych myszy.

Poniżej przedstawiono przykładowe dane EEG zarejestrowane u znieczulonych myszy C57BL/6J przy użyciu elastycznego podłoża w połączeniu z elektrodami śrubowymi.
Jako typowy przykład, średnie przebiegi EEG wygenerowane w odpowiedzi na stymulację dźwiękową (tonowy impuls 8 kHz, poziom ciśnienia akustycznego [SPL] 80 dB) przedstawiono dla 60 prób z identycznymi bodźcami (Rysunek 4A). Schemat mapowania kanałów rejestrujących zaprezentowano również w środkowej części <s...

Proponuje się tani system zapisu elektroencefalograficznego w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do napędzania przezczaszkowej stymulacji magnetycznej mózgu myszy in vivo. Korzystając z konwencjonalnych elektrod śrubowych z niestandardowym, elastycznym podłożem z matrycą wieloelektrodową, można przeprowadzić zapis w wielu miejscach z mózgu myszy w odpowiedzi na przezczaszkową stymulację magnetyczną.

Niedrogi elektroencefalograficzny system zapisu w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do przezczaszkowej stymulacji mózgu myszy in vivo

A low-cost electroencephalographic (EEG) recording system is proposed here to drive transcranial magnetic stimulation (TMS) of the mouse brain in vivo, ...

W neurobiologii zapisy TMS i EEG są często wykorzystywane do pogłębiania naszego zrozumienia mózgu. TMS jest szczególnie obiecujący ze względu na swoją nieinwazyjność. Połączenie TMS z zapisem EEG umożliwia naukowcom badanie pobudliwości, łączności i dynamiki czasoprzestrzennej w różnych regionach mózgu.Protokół ten ma na celu opracowanie systemu jednoczesnego pomiaru stymulacji do eksperymentów TMS-EEG na małych zwierzętach. System ten nie został szeroko opracowany, co zmusza badaczy do stworzenia systemu opartego na próbach i błędach zgodnie z unikalnymi wymaganiami eksperymentalnymi. To łatwe do dostosowania podejście można wdrożyć w standardowych laboratoriach neurobiologicznych, dzięki czemu jest bardziej dostępne i praktyczne dla badaczy.Wyniki tego badania przyczynią się do postępu badań i wyjaśnienia mechanizmów stojących za określonymi zaburzeniami u małych zwierząt, które są niezbędnymi modelami dla kandydatów na ludzi. Co więcej, modele te poprawią ich zrozumienie chorób ludzkich i pomogą w tworzeniu skuteczniejszych metod leczenia i interwencji. Na początek użyj myszy znieczulonej dootrzewnowo i odsłoń czaszkę za pomocą standardowych procedur chirurgicznych.Przymocuj pręt ze stali nierdzewnej zamontowany na matrycy elektrod 2D z tyłu elastycznego podłoża do mikromanipulatora. Następnie umieść elastyczne podłoże na odsłoniętej czaszce. Dostosuj położenie kanałów 3 i 14 w tablicy, aby zmieściły się w wzgórku dolnym.Narysuj cztery małe okręgi w miejscach kanałów 3, 8, 9 i 14 na czaszce za pomocą trwałego znacznika, który posłuży jako punkty orientacyjne. Następnie osusz powierzchnię czaszki, aby poprawić przyczepność cementu dentystycznego i elektrycznie odizolować matrycę elektrod 2D na elastycznym podłożu od czaszki myszy. Nałóż warstwę cementu dentystycznego na powierzchnię czaszki o grubości około jednego milimetra i pozwól cementowi utwardzić się przez około 30 minut.Wyrównaj elastyczne podłoże w jednej linii z małymi okrągłymi znakami na powierzchni czaszki. Następnie umieść końcówkę wiertła dentystycznego na każdym otworze elektrody na elastycznym podłożu i ostrożnie wywierć w czaszce. Za pomocą śrubokręta przymocuj miniaturowe elektrody śrubowe do wywierconych otworów w czaszce.Mocno zaciśnij elektrody śrubowej i podkładkę elektrody. Na koniec zmierz przewodność między każdą elektrodą śrubową a złączem za pomocą sprzętu testującego, takiego jak miernik LCR, aby potwierdzić przewodność elektryczną. Podłącz elastyczną matrycę 2D do systemu nagrywania za pomocą płaskiego taśmowego.Następnie przymocuj pręt ze stali nierdzewnej zamontowany na cewce do mikromanipulatora. Na znieczulonej i elektroencefalograficznej myszy z wszczepioną elektrodą umieść cewkę nad bregmą i dostosuj pozycję w kierunku rozpieszczania, aby zlokalizować punkt ogniskowy powyżej dolnego wzgórka. Następnie należy przygotować system stymulacji, podłączając zasilacz bipolarny i generator funkcyjny.Następnie podłącz cewkę do systemu. Podłączyć między zaciskiem wejściowym generatora funkcyjnego a zaciskiem wyjściowym systemu akwizycji danych, aby dostarczyć sygnały wyzwalające do generatora funkcyjnego z systemu akwizycji danych. Następnie podłącz system akwizycji danych do systemu nagrywania.Przygotuj odpowiedni program komputerowy do inicjowania bodźców za pomocą sygnałów wyzwalających. Upewnij się, że wymagane są sygnatury czasowe stymulacji. Rozpocznij proces akwizycji dla systemu nagrywania, a następnie zapisz dane odpowiedzi i rozpocznij sesje stymulacji.Po zakończeniu każdej sesji stymulacji zatrzymaj nagrywanie, które automatycznie zapisze wszystkie zarejestrowane dane. Kształty fal elektroencefalograficznych lub EEG zostały zarejestrowane w odpowiedzi na stymulację dźwiękową o natężeniu 8 kiloherców i ciśnieniu akustycznym 80 decybeli. Odpowiedzi zostały zarejestrowane z kanałów w pobliżu kory słuchowej.Zaobserwowane kształty fal wykazywały negatywne reakcje idące bezpośrednio po stymulacji dźwiękowej, a następnie dodatnie, które do pewnego stopnia przekraczały linię bazową. Zarejestrowano również powstające fale EEG w odpowiedzi na stymulację magnetyczną obszaru w pobliżu prawego wzgórka dolnego. Kanały w pobliżu kory słuchowej wykazywały różnice w odpowiedzi ze zwiększoną intensywnością stymulacji magnetycznej, co prowadziło do zwiększenia amplitud szczytowych odpowiedzi napędzanych.

low-cost-electroencephalographic-recording-system-combined-with

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neuronauka

W niniejszym artykule opisano procedurę chirurgiczną oraz wskazówki dotyczące obsługi związane z implantacją ultrasciennej macierzy mikroelektrod na bazie poliimidu (PBM-array) na czaszkę myszy w celu rejestracji wysokiej gęstości encefalografii (EEG) w modelu mysim.

Rejestracja EEG o wysokiej gęstości u swobodnie poruszających się myszy z wykorzystaniem mikroelektrod na bazie poliamidu

Ten film demonstruje protokół wszczepiania elektrod elektrokortykograficznych do kory mózgowej myszy w celu rejestrowania sygnałów elektrycznych w odpowiedzi na wirusy związane z adenowirusami, które atakują i manipulują ekspresją kofiliny.

Implantacja elektrod do kory myszy w celu zapisów elektrokortykograficznych

Ten film demonstruje technikę wszczepiania zespołu elektrod do mózgu myszy. Zespół zawiera elektrody bipolarne do rejestrowania aktywności z hipokampa i elektrodę odniesienia do uzyskiwania podstawowej aktywności z móżdżku. Znieczuloną mysz umieszcza się na stereotaktycznej ramie, a zespół elektrod wszczepia się w docelowy obszar mózgu. Następnie zwierzę może dojść do siebie przed wykonaniem zapisu elektrofizjologicznego.

Wszczepienie zespołu elektrod do mózgu myszy w celu zapisu elektrofizjologicznego

Zapis elektroencefalogramu (EEG) i elektromiogramu (EMG) u swobodnie zachowujących się myszy jest kluczowym krokiem do skorelowania zachowania i fizjologii ze snem i czuwaniem. Opisany w niniejszym dokumencie protokół eksperymentalny zapewnia przewodowy system do pozyskiwania zapisów EEG i EMG u myszy.

Procedura rejestracji poligraficznej do pomiaru snu u myszy

Instrukcje dotyczące taniego konstruowania i chirurgicznego wszczepiania myszom przewlekłego przezczaszkowego montażu elektroencefalograficznego o dużej gęstości są dostarczone. Opisano również techniki nagrywania, ekstrakcji i przetwarzania sygnału.

Akwizycja elektroencefalograficzna o dużej gęstości w modelu gryzoni przy użyciu tanich zasobów typu open source

Zaprojektowaliśmy 16-kanałowy czujnik EEG typu suchego, który jest nieinwazyjny, odkształcalny i wielokrotnego użytku. W artykule opisano cały proces od wytworzenia proponowanej elektrody EEG do przetwarzania sygnałów wizualnego potencjału wywołanego (VEP) mierzonych na skórze głowy myszy za pomocą suchego, nieinwazyjnego wielokanałowego czujnika EEG.

Wizualne zapisy potencjału wywołanego u myszy za pomocą suchego, nieinwazyjnego wielokanałowego czujnika EEG skóry głowy

Ten artykuł opisuje protokół do manipulowania celami molekularnymi w korze mózgowej za pomocą wirusów związanych z adenowirusami oraz do monitorowania efektów tej manipulacji podczas czuwania i snu za pomocą zapisów elektrokortykograficznych.

Zapis elektrokortykograficzny obszarów kory mózgowej manipulowanych za pomocą wirusa związanego z adenowirusem skierowanym przeciwko kofilinie u myszy

Ten protokół opisuje metodę uzyskiwania in vivo, wysokiej gęstości nagrań pojedynczych neuronów z pnia mózgu myszy z unieruchomioną głową. Podejście to jest stosowane do pomiaru potencjału czynnościowego neuronów w brzuszno-bocznej szarości okołowodociągowej - regionie pnia mózgu nieaktywnym podczas snu z szybkimi ruchami gałek ocznych (REM) - przed i podczas znieczulenia ogólnego.

Ostre jednojednostkowe nagrania wieloelektrodowe z pnia mózgu myszy z unieruchomioną głową

Tutaj prezentujemy dwa protokoły do rejestracji mikro-elektrokortykografii o wysokiej gęstości (μEcoG) u szczurów i myszy, w tym metody chirurgiczne, implantacyjne i rejestracyjne. Zapisy μECoG są wykonywane w połączeniu z zapisem laminarnej politrody w korze słuchowej szczura lub z optogenetycznym manipulowaniem aktywnością neuronalną w korze somatosensorycznej myszy.

Wieloskalowe badania przetwarzania kory mózgowej poprzez integrację politrod laminarnych i optogenetyki z mikroelektrokortykografią u gryzoni

Protokół ten został opracowany, aby stworzyć niezawodny i łatwo dostępny system do rejestrowania swobodnie poruszającego się EEG gryzoni.

Opłacalny i minimalnie inwazyjny protokół do przewlekłej wielomiejscowej elektroencefalografii u swobodnie poruszających się myszy

Poznaj niedrogi system EEG z cewką milimetrową do przezczaszkowej stymulacji magnetycznej u myszy. Ta metoda umożliwia jednoczesny pomiar aktywności mózgu podczas TMS, badając pobudliwość i łączność neuronalną.

Niedrogi elektroencefalograficzny system zapisu w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do przezczaszkowej stymulacji mózgu myszy in vivo (Wideo) | JoVE Journal

Niedrogi elektroencefalograficzny system zapisu w połączeniu z cewką o rozmiarach milimetrowych do przezczaszkowej stymulacji mózgu myszy in vivo

Przeglądaj więcej filmów