26 maja 2023
Tutaj opisana jest sprawdzona metoda wykonywania pomiarów kurczliwości i wapnia w ludzkich indukowanych pluripotencjalnych kardiomiocytach pochodzących z komórek macierzystych za pomocą platformy opartej na optyce. Platforma ta umożliwia naukowcom badanie wpływu mutacji i reakcji na różne bodźce w szybki i powtarzalny sposób.
Indukowane przez człowieka pluripotencjalne kardiomiocyty pochodzące z komórek macierzystych stanowią potężne narzędzie do badania zmian w funkcji kardiomiocytów za pośrednictwem mutacji i definiowania skutków stresorów i interwencji lekowych. Istnieje zapotrzebowanie na platformę, na której kurczliwość i przetwarzanie wapnia w indukowanych przez człowieka pluripotencjalnych kardiomiocytach pochodzących z komórek macierzystych może być mierzone w sposób przyjazny dla użytkownika i powtarzalny. Metoda ta umożliwia naukowcom badanie kurczliwości indukowanych przez człowieka pluripotencjalnych kardiomiocytów pochodzących z komórek macierzystych poprzez korelację pikseli i jednoczesny pomiar międzykomórkowego przejściowości wapnia poprzez obciążenie komórek wrażliwym na wapń FloA-PhoR.
Korzystając z tej platformy, możliwe jest wykonywanie pomiarów w dobrze zachowanym środowisku temperaturowym na różnych formatach płyt i natychmiastowy dostęp do danych. Metoda ta umożliwia badanie mechanizmów patologicznych komórek oraz ocenia wpływ związków i funkcjonalność ludzkich kardiomiocytów pochodzących z IPSC, które mogą być pomocne w procesie przedklinicznych badań przesiewowych leków. Aby rozpocząć, włącz system pomiarowy oparty na optyce, źródło diody elektroluminescencji mikroskopu i komputer.
Uruchom program na komputerze i otwórz nowy plik, klikając Nowy pod plikiem w lewym górnym rogu ekranu. Kliknij na zbieranie, wybierz eksperymenty, a następnie wybierz IPSC i pomiary wapnia. Następnie zastąp ludzką pożywkę hodowlaną kardiomiocytów IPSC 0,5 mililitra na studzienkę roztworu tyrodowego na płytce 24-dołkowej.
Załóż pokrywę płyty na pokrywę klimatyzacji i umieść płytkę w układzie pomiaru przestrzeni optycznej w urządzeniu, ustawionym na temperaturę 37 stopni Celsjusza. Kliknij otwórz wyszukiwarkę komórek pod paskiem narzędzi i poczekaj, aż pojawi się nowy ekran. Wybierz format płyty w obszarze typ komory i dobrze u góry ekranu.
Wybierz studnię i wybierz obszar w studni, aby obserwować zsynchronizowane skurcze i rozluźnienie. Naciśnij start w lewym dolnym rogu ekranu. Następnie kliknij dodaj pomiar, aby zmierzyć obszar.
Zmierz około 10 obszarów na studzienkę w płytce 24-dołkowej. W przypadku pomiarów tylko podstawowych kontynuuj pomiar od następnego dołka. Aby przetestować związki, naciśnij przycisk Zakończ po zmierzeniu obszarów w studni.
Otwórz przyrząd pomiarowy oparty na optyce i dodaj żądany stresor lub związek do studni. Po inkubacji w żądanym okresie czasu kliknij automatyczny pomiar, aby wykonać sparowane pomiary w tych samych obszarach studni, w których wykonano pomiary podstawowe. Naciśnij przycisk Zakończ po wykonaniu wszystkich pomiarów.
Wybierz następny dołek w prawym górnym rogu ekranu i kontynuuj pomiary dla wszystkich wymaganych studzienek. Po zmierzeniu wszystkich wymaganych dołków kliknij stop i zapisz plik w żądanej lokalizacji. Rozpuścił podwielokrotności Fura-2 AM w roztworze tyrodowym, aby uzyskać końcowe stężenie jednego mikromolowego Fura-2 AM do dodania do komórek.
Odessać pożywkę i zastąpić ją roztworem tyrodowym zawierającym Fura-2 AM. Inkubować przez 15 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze lub systemie pomiarowym opartym na optyce. Usunąć roztwór tyrodowy zawierający Fura-2 AM i umyć studzienki dwa razy świeżym roztworem tyrodowym. Na koniec inkubować komórki w roztworze tyrodowym przez kolejne pięć minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza, aby umożliwić desteryfikację Fura-2 AM. Umieść płytkę wewnątrz systemu pomiarowego opartego na optyce, aby kontynuować pomiary kurczliwości.
Wybierz studnię. Wybierz obszar w studni, aby obserwować zsynchronizowany skurcz i rozluźnienie, a następnie kliknij start i dodaj pomiar. Oprócz śladów kurczliwości na ekranie pojawia się metryka stanu przejściowego wapnia w czasie rzeczywistym.
Aby przeanalizować dane, kliknij Cytosolver na pulpicie. Kliknij import z menu plików i wybierz pliki do analizy. Po analizie obserwuj na ekranie zaakceptowane i odrzucone stany nieustalone.
Kliknij Eksportuj w lewym górnym rogu ekranu i włącz średnie dane przejściowe. Eksportuj do pliku Excel, a następnie kliknij przycisk eksportuj. Sprawdź przeanalizowane dane przedstawione w arkuszu kalkulacyjnym.
Wyłącz komputer i wszystkie inne instrumenty. Pomiary kurczliwości analizowano za pomocą programu Cytosolver i przedstawiono parametry częstotliwości spoczynku/dudnienia, czasu do szczytowej kurczliwości oraz czasu do kurczliwości wyjściowej kontrolnych ludzkich kardiomiocytów IPSC. Zastosowanie 500 nanomolowych izo, nieselektywnego agonisty receptora beta-adrenergicznego, znacznie zwiększyło częstotliwość dudnienia we wszystkich studzienkach.
Iso zwiększyło również kinetykę, o czym świadczy skrócenie czasu do szczytowej kurczliwości i czasu do kurczliwości wyjściowej. Podobnie jak w przypadku kurczliwości, przeanalizowano również pomiary wapnia i podano parametry.
Niniejsze badanie przedstawia intuicyjną metodę pomiaru kurczliwości oraz gospodarki wapniowej kardiomiocytów pochodzących z ludzkich indukowanych pluripotencjalnych komórek macierzystych (hiPSC-CMs). Podejście to umożliwia badaczom szybką ocenę wpływu mutacji genetycznych i interwencji farmakologicznych, wykazując swoją użyteczność w przesiewaniu leków oraz zrozumieniu mechanizmów komórkowych.
Pomiar w czasie rzeczywistym kurczliwości i dynamiki wapnia w kardiomiocytach pochodzących z hiPSC odpowiada na krytyczną potrzebę tworzenia predykcyjnych, relewantnych dla ludzi modeli serca we wczesnych etapach odkrywania leków. Platforma ta umożliwia szybką, ilościową ocenę efektów mutacji i odpowiedzi na związki chemiczne, wspierając mechanistyczną redukcję ryzyka oraz ciągłość translacyjną. Podejście to usprawnia podejmowanie decyzji dotyczących portfolio poprzez dostarczanie odtwarzalnych i skalowalnych danych do przedklinicznej oceny bezpieczeństwa i skuteczności kardiologicznej.
Ten system pomiarowy oparty na optyce integruje się z kontinuum od etapu odkrywania do badań przedklinicznych, umożliwiając wczesne przesiewy funkcjonalne, badania mechanistyczne oraz walidację translacyjną w badaniach nad sercem.