-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Noworodkowy heterotopowy model przeszczepu serca szczura do badania przejścia ze śródbłonka do me...
Noworodkowy heterotopowy model przeszczepu serca szczura do badania przejścia ze śródbłonka do me...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
A Neonatal Heterotopic Rat Heart Transplantation Model for the Study of Endothelial-to-Mesenchymal Transition

Noworodkowy heterotopowy model przeszczepu serca szczura do badania przejścia ze śródbłonka do mezenchymów

Full Text
1,531 Views
08:38 min
July 21, 2023

DOI: 10.3791/65426-v

Gregor Gierlinger1, Lavinia Rech1, Sitaram M. Emani1, Pedro J. del Nido1, Ingeborg Friehs1

1Department of Cardiac Surgery, Boston Children’s Hospital,Harvard Medical School

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Ta praca przedstawia zwierzęcy model zwłóknienia wywołanego przejściem śródbłonka do mezenchymalnego, obserwowanego w wrodzonych wadach serca, takich jak krytyczne zwężenie zastawki aortalnej lub zespół niedorozwoju lewego serca, co pozwala na szczegółową ocenę tkanki histologicznej, identyfikację regulacyjnych szlaków sygnałowych i testowanie opcji leczenia.

Transcript

Włóknienie wsierdzia hamuje wzrost lewej komory i uniemożliwia dwukomorową naprawę chirurgiczną u pacjentów z wrodzonym krytycznym zwężeniem zastawki aortalnej i zespołem niedorozwoju lewego serca. Podczas gdy resekcja chirurgiczna jest obecnie jedyną dostępną opcją leczenia, EFE często dochodzi do nawrotów. Dlatego naszym celem jest zbadanie mechanizmów stojących za EFE i opracowanie nowych strategii terapeutycznych z wykorzystaniem modelu zwierzęcego.

Główne osiągnięcia w dziedzinie badań NDMT ograniczają się do modeli kultur komórkowych. Które mają nieodłączne ograniczenia, a badania są utrudnione z powodu braku modeli in vivo. Nasza grupa ustaliła wcześniej, że mechanizm leżący u podstaw powstawania EFE polega na fenotypowej zmianie komórek śródbłonka wsierdzia na fibroblasty.

Proces zwany przejściem śródbłonkowym do mezenchymalnym. Ten model zwierzęcy pozwala na bardziej uogólnione badanie zwłóknienia serca wywołanego NDMT. Podczas gdy inne modele są zaprojektowane do indukowania NDMT poprzez modyfikacje genetyczne, nadciśnienie lub ograniczenia dietetyczne.

Ponieważ EFE często nawraca po pierwotnej resekcji, czasami z jeszcze bardziej naciekającym wzorcem wzrostu, jesteśmy szczególnie zainteresowani interakcją molekularną z leżącym pod nią mięśniem sercowym. Rozpocznij pobieranie serca dawcy noworodka od znieczulenia i sterylizacji szczura. I wykonanie poziomego nacięcia w mieczyku mieczykowatym skalpelem z 15 ostrzami pod mikroskopem operacyjnym 12,5x.

Następnie za pomocą nożyczek wykonaj pionowe nacięcia bocznie aż do pach po obu stronach. Usuń przednią ścianę klatki piersiowej z kolejnym poziomym nacięciem poniżej szyi. Wypreparuj żyłę główną dolną lub IVC, prawą i lewą żyłę górną kawi lub SVC oraz naczynia płucne nożyczkami.

Ocal i podwiąż wszystkie naczynia za pomocą jedwabnego szwu 7-0. Lekko dociśnij membranę kleszczami. I podaj trzy mililitry lodowatego roztworu modyfikowanego kwasem Krebsa-Henseleita o wysokiej zawartości potasu do prawego przedsionka, nakłuwając IVC igłą o rozmiarze 30.

Przetnij IVC, SVC i naczynia płucne za pomocą nożyczek. Zapewnij odpowiednią długość, przecinając tętnice płucne tak daleko, jak to możliwe. I aorta dystalna do tułowia ramienno-głowowego za pomocą skalpela z ostrzem numer 11.

Przepłucz serce lodowatym roztworem kardioplegicznym za pomocą trzymililitrowej strzykawki. Umieść znieczulonego szczura na ukośnej półce. Zabezpiecz przednie zęby sznurkiem i ustaw głowę w kierunku chirurga.

Umieść światło na zewnętrznej stronie szyi w obszarze strun głosowych. Chwyć język dwoma palcami i delikatnie popchnij go w górę i w lewo, aby uzyskać optymalną widoczność podczas intubacji. Teraz użyj dwucalowej kaniuli o rozmiarze 18 dla szczura o wadze od 100 do 150 gramów i zabezpiecz rurkę dotchawiczą taśmą.

Podłącz kaniulę intubacyjną do respiratora dla małych zwierząt. I dostosuj ustawienia w zależności od wielkości zwierzęcia, postępując zgodnie z instrukcjami producenta. Po zaintubowaniu szczura wykonaj laparotomię w linii środkowej za pomocą skalpela z 15 ostrzami, aby wykonać nacięcie skóry.

Otwórz przednią ścianę brzucha nożyczkami. I zmobilizuj jelita w kierunku prawego górnego kwadrantu. Następnie odsłoń zaotrzewnową aortę brzuszną i IVC za pomocą aplikatorów z bawełnianą końcówką.

Przykryj jelita ciepłą gazą nasączoną solą fizjologiczną. I używaj retraktorów, aby utrzymać optymalną ekspozycję IVC i aorty brzusznej. Teraz wykonaj rozwarstwienie IVC podnerkowego i aorty brzusznej aż do rozwidlenia.

Podwiązać wszystkie tętnice i żyły rozgałęziające się podnerczowo za pomocą nylonowego szwu 10-0. Pobrane serce dawcy należy przetransportować do pola operacyjnego w sterylnej misce operacyjnej zawierającej bufor krebs-henseleit. Upewnij się, że od czasu do czasu irygujesz serce dawcy lodowatym roztworem kardioplegicznym.

Następnie oddziel pień płucny i aortę zstępującą za pomocą mikronożyczek. I przepłukać serce dawcy lodowatym roztworem kardioplegicznym. Następnie przyłóż cztery atraumatyczne zaciski naczyniowe do dystalnego i proksymalnego odcinka aorty podnerkowej i IVC.

Wykonaj aortotomię za pomocą mikronożyczek, aby wykonać dwa małe poziome cięcia. Następnie umieść serce dawcy po lewej stronie aorty. Zabezpiecz aortę podnerkową biorcy i aortę wstępującą dawcy koniec do boku w pozycjach godziny 12 i 6 aortomii za pomocą szwów.

Kontynuuj trzeci i czwarty szew w pozycji godziny trzeciej i dziewiątej. Delikatne przechylenie serca na lewą stronę aorty po trzecim szwie. Sfinalizuj zespolenie tętnicze, dodając jeden lub dwa szwy do każdej przestrzeni.

Teraz obróć szczura w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara, tak aby głowa była skierowana w stronę lewej ręki chirurga. Przesuń serce dawcy na lewą stronę aorty brzusznej, aby uzyskać optymalny widok IVC. Wykonaj wenotomię na IVC nieco proksymalnie do zespolenia aorty.

Za pomocą ostrza 11 do nakłuwania i mikronożyczek do regulacji rozmiaru w zależności od średnicy pnia płucnego dawcy. Przepłukać światło wewnątrzkawadalne solą fizjologiczną w postaci heparynizu. Następnie należy wykonać zespolenie żylne między IVC biorcy a pniem płucnym dawcy, umieszczając przerwane szwy nylonowe 11-0 na tylnej ścianie naczynia, zaczynając od pozycji godziny 12 i 6.

Umieść ciągły szew nylonowy 11-0 na przedniej ścianie. Na zespolenie umieścić wchłanialne paski gąbki żelatynowe. I usuń zaciski mikronaczyniowe, zaczynając od dystalnych.

Upewnij się, że naczynia wieńcowe się wypełniły. I że serce dawcy zaczyna bić wkrótce po zwolnieniu bliższych zacisków. Lekko dociśnij gąbki za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką, aby uzyskać optymalną hemostazę.

Ostrożnie umieść jelita z powrotem w jamie brzusznej, uważając, aby nie zniekształcić zespolenia tętniczego i żylnego. Zamknij ścianę brzucha i pozwól zwierzęciu dojść do siebie. Pokazano poziomy wycinek przeszczepu dawcy wycięty na środkowym poziomie komory prawej i lewej komory.

Analiza histologiczna wykazała, że tkanka fibroelastozy wsierdzia zawierała duże ilości zorganizowanych włókien kolagenu i elastyny. Tkanka fibroelastozy wsierdzia podwójnie wybarwiona na obecność VE-kadheryny i Alfa-SMA. CD-31, fosfo-SMAD2 i SMAD3.

CD-31 i SLUG lub SNAIL wskazywały na przejście śródbłonka do mezenchymów.

Explore More Videos

Przeszczep serca noworodka przejście od śródbłonka do mezenchymów fibroelastoza wsierdzia wrodzone krytyczne zwężenie zastawki aortalnej zespół niedorozwoju lewego serca model zwierzęcy strategie terapeutyczne zwłóknienie serca badania przedkliniczne model przeszczepu serca zaburzenia przepływu zmiana fenotypowa resekcja chirurgiczna

Related Videos

Ortotopowy przeszczep aorty: model szczura do badania rozwoju przewlekłej waskulopatii

08:32

Ortotopowy przeszczep aorty: model szczura do badania rozwoju przewlekłej waskulopatii

Related Videos

12.6K Views

Mysi model przeszczepu szyjki macicy przy użyciu zmodyfikowanej techniki mankietowej

10:32

Mysi model przeszczepu szyjki macicy przy użyciu zmodyfikowanej techniki mankietowej

Related Videos

14.6K Views

Przeszczepienie zastawki płucnej z wykorzystaniem mysiego modelu heterotopowego przeszczepienia serca

10:56

Przeszczepienie zastawki płucnej z wykorzystaniem mysiego modelu heterotopowego przeszczepienia serca

Related Videos

19.2K Views

Model immunologiczny do heterotopowego przeszczepu komórek serca i mięśnia sercowego u szczurów

09:25

Model immunologiczny do heterotopowego przeszczepu komórek serca i mięśnia sercowego u szczurów

Related Videos

8.2K Views

Uproszczony model heterotopowego przeszczepu zastawki serca u gryzoni

06:33

Uproszczony model heterotopowego przeszczepu zastawki serca u gryzoni

Related Videos

2.7K Views

Zmodyfikowana technika wykorzystania mysich serc noworodków w preparacie Langendorffa

08:23

Zmodyfikowana technika wykorzystania mysich serc noworodków w preparacie Langendorffa

Related Videos

2.9K Views

Zmodyfikowany heterotopowy przeszczep serca w jamie brzusznej i nowy model niedomykalności zastawki aortalnej u szczurów

13:32

Zmodyfikowany heterotopowy przeszczep serca w jamie brzusznej i nowy model niedomykalności zastawki aortalnej u szczurów

Related Videos

2.4K Views

Szczurzy model normomicznego heterotopowego przeszczepu serca z perfuzją ex-situ

09:04

Szczurzy model normomicznego heterotopowego przeszczepu serca z perfuzją ex-situ

Related Videos

1.4K Views

Mysia heterotopowa technika przeszczepu serca

10:27

Mysia heterotopowa technika przeszczepu serca

Related Videos

17.5K Views

Metoda izolowanej perfuzji płuc ex vivo w modelu szczurzym: wnioski wyciągnięte z opracowania programu EVLP dla szczurów

08:59

Metoda izolowanej perfuzji płuc ex vivo w modelu szczurzym: wnioski wyciągnięte z opracowania programu EVLP dla szczurów

Related Videos

28.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code