July 28th, 2023
Oznaczanie jednostek tworzących kolonie (CFU) jest złotym standardem w ilościowym oznaczaniu bakterii, w tym Mycobacterium tuberculosis, które mogą potrzebować tygodni na utworzenie widocznych kolonii. W tym miejscu opisujemy mikro-CFU do oznaczania CFU ze zwiększoną wydajnością czasową, zmniejszoną przestrzenią laboratoryjną i kosztami odczynników oraz skalowalnością do eksperymentów o średniej i wysokiej przepustowości.
Oznaczenie CFU jest konieczne do zmierzenia skuteczności odpowiedzi immunologicznej przeciwko bakteriom. Jest jednak bardzo dobrze przepustowy i staje się kłopotliwy i kosztowny, gdy jest stosowany do bakterii chorobotwórczych, takich jak Mycobacterium tuberculosis. Jest to istotne ograniczenie, gdy musimy testować duże panele z zabiegami.
Badania koncentrują się na gruźlicy i ocenie szczepionek przeciwko gruźlicy. Bada bezpieczeństwo, immunogenność i skuteczność szczepionek przeciwko prątkom gruźlicy. W badaniu przedstawiono zoptymalizowaną metodę, mikro CFU do zliczania kolonii bakteryjnych w celu oceny skuteczności szczepionki w badaniach przedklinicznych.
Protokół ten ma na celu optymalizację oznaczania CFU poprzez generowanie wyników z małej kropli, podobnych do tych ze zwykłej szalki Petriego. Kwantyfikacja żywotności bakterii na podstawie tak małej próbki pozwala nam przeanalizować tysiące punktów danych przy użyciu ułamka materiałów i czasu niezbędnego do zastosowania klasycznych metod. Nasze badania mają na celu przeanalizowanie mechanizmów prezentacji antygenów i zidentyfikowanie najbardziej odpowiednich antygenów w celu optymalizacji prezentacji antygenu.
Pozwoli nam to zaprojektować i opracować lepsze szczepionki w celu ulepszenia lub zastąpienia obecnej szczepionki przeciwko gruźlicy, którą jest BCG. Zacznij od zebrania kultury BCG w środkowej lub późnej fazie wzrostu kłody. Odwiruj go przy 3000 g przez 10 minut.
Następnie odrzucić supernatant. Następnie dodaj 10 mililitrów PBS, aby umyć bakterie. Po odwirowaniu odrzucić supernatant.
Zawiesić osad w pięciu mililitrach pożywki infekcyjnej. Umieść rurkę w kąpieli ultradźwiękowej na 15 minut z pełną mocą i częstotliwością 80 Hz. Teraz odwiruj przy 1000 g przez 10 minut.
Zebrać supernatant. I wyrzuć granulkę. Zmierzyć gęstość optyczną supernatantu.
Aby przeprowadzić seryjne rozcieńczanie za pomocą płytki studzienkowej, najpierw umieść zawiesiny prątków w rzędach A i E płytki 96-dołkowej. Dodaj 180 mikrolitrów wody dejonizowanej do pozostałych studzienek w celu przeprowadzenia procesu seryjnego rozcieńczania. Używając pipety 12-kanałowej, ponownie zawiesić zawiesiny w rzędzie A i przenieść 20 mikrolitrów do rzędu B. Powtórzyć przenoszenie zawiesiny dla rzędów B i C, aż do osiągnięcia ostatniego rozcieńczenia w rzędzie D. Do powlekania mikrokropelkami użyj pipety wielokanałowej o pojemności od 0,5 do 10 mikrolitrów z cienkimi końcówkami, aby przenieść pięć mikrolitrów z każdego rzędu płytki 96-dołkowej na stałą płytkę kwadratową.
Pozwól, aby kropelki lekko dotknęły agaru, zapewniając prawidłowe przenoszenie i minimalizując zatrzymywanie płynu wewnątrz końcówki. Pozostaw kropelki do wyschnięcia i zamknij płytkę agarową. Inkubuj go w temperaturze 37 stopni Celsjusza, monitorując wzrost bakterii.
Opcjonalnie umieść płytki agarowe w szczelnie zamkniętej plastikowej torbie, aby zapobiec wysuszeniu. Po sześciu do 10 dniach inkubacji sprawdź, czy poszczególne kolonie są widoczne gołym okiem. Umieść płytkę pod odwróconym mikroskopem, używając obiektywu o najmniejszym powiększeniu.
Alternatywnie, użyj aparatu, aby zrobić zdjęcie kropli i ręcznie zlicz kolonie na komputerze za pomocą ImageJ do automatycznego zliczania kolonii. Jednostka tworząca mikrokolonie lub test mikro CFU została wykorzystana do uzyskania dużej ilości danych z niewielkiej ilości płytek agarowych. Stosowanie liposomów do dostarczania sakwinawiru zwiększa skuteczność leczenia przeciwko szczepom prątków o różnej oporności na leki.
Aby wykonać metodę liczenia ręcznego, rozpocznij uruchamianie oprogramowania Fiji. Otwórz obraz zawierający jednostki tworzące mikrokolonie. Przejdź do Wtyczki, a następnie kliknij Analizuj, a następnie Licznik komórek.
W menu licznika komórek zainicjuj program, klikając Inicjuj i wybierz licznik. Kontynuuj, klikając każdą kolonię. Jeśli nastąpi przypadkowe kliknięcie, kliknij przycisk Usuń, aby cofnąć.
Zanotuj wartość wyświetlaną na liczniku. Naciśnij przycisk Reset, aby wznowić zliczanie i otworzyć nowy obraz, aby policzyć dodatkowe próbki. Aby uzyskać automatyczne liczenie, przekonwertuj obraz w Fidżi na 8-bitowy obraz w skali szarości, wybierając Obraz, a następnie Typ i klikając 8-bitowy.
Za pomocą narzędzia Owal na pasku narzędzi narysuj owal wokół kolonii, w razie potrzeby dostosuj owal. Następnie wybierz Edytuj, a następnie Wyczyść na zewnątrz, aby usunąć wszelkie zakłócenia spoza obszaru. Teraz wybierz Obraz, a następnie naciśnij Dostosuj i wybierz Próg, aby dostosować suwaki w menu progów, aż kolonie pojawią się na czerwono z minimalnym szumem w tle.
Kliknij Zastosuj i wyjdź z okna Próg, generując czarno-biały obraz. Teraz wybierz pozycję Analizuj. Następnie kliknij Analizuj cząstki i określ zakres obszaru kolonii i kołowości w oknie Analizuj cząstki.
Wybierz Kontury z menu podręcznego pokaż, włącz opcję Wyświetl wyniki dla szczegółowych pomiarów i zaznacz opcję Wyczyść wyniki, aby usunąć wszystkie poprzednie pomiary. Kliknij pole Podsumuj i zainicjuj analizator, wybierając opcję OK, aby wyświetlić podsumowane wyniki pomiarów. Obserwuj, jak pojawi się nowe okno przedstawiające wszystkie wykryte i zliczone kolonie z zarysowanymi liniami.
Szczegóły każdej rodziny można zobaczyć w oknie wyników, a łączna liczba rodzin zliczonych w oknie podsumowanych wyników.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
To badanie przedstawia metodę mikro-CFU do określania liczby kolonii tworzących jednostki (CFU) Mycobacterium tuberculosis, poprawiającą efektywność i obniżającą koszty. Metoda radzi sobie z ograniczeniami tradycyjnego określania CFU, szczególnie w ustawieniach o wysokiej wydajności.
Efficient, quantitative evaluation of vaccine efficacy is critical for advancing tuberculosis (TB) vaccine candidates through preclinical pipelines. The micro-CFU assay enables rapid, high-throughput assessment of Mycobacterium tuberculosis viability, directly supporting target validation and portfolio triage. This streamlined approach reduces operational bottlenecks and accelerates data-driven decision-making in vaccine R&D.
The micro-CFU assay integrates into the preclinical vaccine development continuum, from early discovery through lead identification and preclinical validation.