6 października 2023
Tutaj prezentujemy solidną metodę perfuzji in situ wątroby myszy do badania ostrej i bezpośredniej regulacji metabolizmu wątroby bez naruszania architektury wątroby, ale przy braku czynników pozawątrobowych.
W naszym laboratorium badamy, w jaki sposób wątroba reaguje na powszechne i rzadkie choroby wątroby oraz jak ta adaptacja może predysponować do stanu przedcukrzycowego. Odpowiedź wątroby na zmiany w dostępności składników odżywczych i stężeniach hormonów ze zwiększoną transkrypcją odpowiednich genów, ale co ważne również z regulacją ostrą i nietranskrypcyjną. Dzięki perfuzji wątroby możemy określić ilościowo wszystkie aspekty metabolizmu, w tym uwalnianie metabolitów z dokładnością minuty do minuty.
Zaletą tej techniki w porównaniu z innymi modelami in vitro jest to, że wątroba pozostaje in situ z nienaruszoną architekturą wątroby i że wątroba jest zdolna do życia przez co najmniej trzy godziny, co pozwala każdej wątrobie myszy na samodzielną kontrolę, co znacznie zwiększa znaczenie translacyjne. Korzystając z mysiego perfundowanego układu wątrobowego, jesteśmy w stanie zidentyfikować i scharakteryzować nową kaskadę sygnalizacyjną hormonu glukagonu. Może to być ważne, ponieważ glukagon, podobnie jak inne hormony, może odgrywać istotną rolę w stanach dysmetabolicznych wątroby u pacjentów ze stłuszczeniem wątroby i cukrzycą.
Aby rozpocząć, umieść znieczuloną mysz C57 Black 6 JRJ na wznak na podgrzewanym stole operacyjnym. Potwierdź brak odruchowych reakcji na szczypanie palców u stóp. Spryskaj mysz 70% etanolem, aby zapobiec przywieraniu włosów do nożyczek.
Za pomocą nożyczek wykonaj nacięcie brzucha u podstawy, przecinając w górę po obu stronach klatki piersiowej, aby odsłonić jamę brzuszną. Użyj bawełnianego wacika, aby przesunąć jelita w prawo, odsłaniając żyłę wrotną. Za pomocą zakrzywionych kleszczy umieść dwie ligatury pod żyłą wrotną i luźno zawiąż każdą ligaturę.
Następnie wprowadź cewnik o średnicy 0,7 milimetra do żyły wrotnej. Po perforacji wyjmij igłę z cewnika i poprowadź cewnik przez żyłę, aż końcówka cewnika znajdzie się blisko wątroby. Następnie dokręć ligatury.
Obserwuj wątrobę. Ustaw natężenie przepływu z pompy rolkowej i zamocuj rurkę perfuzyjną. Rozpocznij perfuzję wątroby w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Gdy wątroba zblednie, użyj nożyczek, aby przeciąć klatkę piersiową i przeponę. Następnie za pomocą cienkich kleszczyków punktowych umieść podwiązanie pod żyłą główną nadwątrobową dolną. Następnie wprowadzić cewnik do żyły głównej nadwątrobowej dolnej przez prawy przedsionek serca.
Po perforacji wyjąć igłę i poprowadzić cewnik przez żyłę bliżej wątroby. Następnie dokręć ligatrę. Przymocuj rurkę do zbierania ścieków perfuzyjnych i zabezpiecz wszystkie rurki wodoodporną taśmą.
Za pomocą adaptera zacisku naczynia umieść zacisk naczynia w poprzek żyły podwątrobowej bezpośrednio nad prawą żyłą nerkową, aby zapobiec martwej mieszance. Następnie zwiększ natężenie przepływu perfuzji do 3,5 mililitra na minutę. Uruchom timer i rejestrację ciśnienia.
Przykryj wątrobę sterylną serwetą zwilżoną solą fizjologiczną. Równoważyć przez 30 minut i zmierzyć objętość ścieków. Po 30 minutach równowagi rozpocząć eksperyment dla pierwszego podstawowego pobrania próbki w kolektorze frakcji.
Regularnie monitoruj pułapkę bąbelkową i uzupełniaj buforem perfuzyjnym, gdy jest bliska opróżnienia. Pobrać próbkę buforową przez trójdrożny kran bezpośrednio przed jej wejściem do narządu oraz z cewnika zbiorczego umieszczonego w żyle głównej dolnej. Za pomocą analizatora gazometrii zmierz pobraną próbkę, aby potwierdzić, że narząd jest metabolicznie aktywny.
Po 15 minutach perfuzji wyjściowej, przy użyciu pompy strzykawkowej, rozpocząć pierwszą stymulację, wprowadzając substancję badaną przez trójdrożny kran odcinający z pożądaną szybkością przepływu. Po symulacji należy pobierać próbki wyjściowe przez 20 do 30 minut przed rozpoczęciem drugiej stymulacji. Wytwarzanie mocznika w perfundowanej wątrobie ze stałymi okresami wyjściowymi poprzedzającymi każdy z dwóch okresów stymulacji sugeruje, że odpowiedź mocznika na dwie kolejne stymulacje mieszanymi aminokwasami jest spójna.
Zaobserwowano stałe podstawowe uwalnianie glukozy i nieestryfikowanych kwasów tłuszczowych przed silnym wzrostem glukozy i nieestryfikowanych kwasów tłuszczowych podczas infuzji glukagonu. Średnia wartość w stanie podstawowym i podczas infuzji glukagonu sugeruje, że glukagon szybko stymuluje glikogenolizę wątrobową i lipolizę. Jednak bez stałych okresów podstawowych niemożliwe staje się odróżnienie jednej odpowiedzi mocznika od drugiej.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia niezawodną metodę perfuzji in situ wątroby myszej, która pozwala badaczom na analizę regulacji metabolizmu wątroby bez naruszania jej architektury. Technika ta umożliwia ilościowe określanie procesów metabolicznych w odstępach minutowych, co zwiększa wartość translacyjną w zrozumieniu chorób wątroby.
Model perfuzji wątroby myszy umożliwia wysokorozdzielczą kwantyfikację wątrobowej produkcji glukozy, ureogenezy oraz lipolizy w kontrolowanych warunkach, co wspiera ograniczanie ryzyka mechanistycznego w badaniach nad chorobami metabolicznymi. Dzięki zachowaniu nienaruszonej architektury wątroby i izolacji specyficznych odpowiedzi hepatocytoznymi, system ten zwiększa pewność prognostyczną w zakresie walidacji celów terapeutycznych oraz opracowywania biomarkerów translacyjnych. Zdolność do przeprowadzania kontroli wewnątrzpróbkowych oraz pomiarów rozdzielczych w czasie czyni go kluczowym narzędziem na etapie przejściowym między odkryciem a badaniami przedklinicznymi w ramach programów portfelowych dotyczących zaburzeń metabolicznych i endokrynologicznych.
Model ten wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od wczesnych badań mechanistycznych, przez identyfikację wiodących związków, aż po walidację przedkliniczną w kierunku wskazań metabolicznych i endokrynologicznych.