September 1st, 2023
Różnorodność lipidów błony pod względem struktury i składu jest ważnym czynnikiem przyczyniającym się do procesów komórkowych i może być markerem choroby. Symulacje dynamiki molekularnej pozwalają nam badać błony i ich interakcje z biomolekułami w rozdzielczości atomowej. W tym miejscu udostępniamy protokół do budowania, uruchamiania i analizowania złożonych systemów membranowych.
Niektóre z nich w biofizyce szybko się rozwijają. Typowe podejścia eksperymentalne obejmują mikroskopię fluorescencyjną, rozpraszanie neutronów i promieniowania rentgenowskiego, spektroskopię mas i mikroskopię sił atomowych. Podejścia obliczeniowe obejmują modele fonologiczne i te oparte na termodynamice statystycznej, które pomagają nam zrozumieć szczegóły interakcji zachodzących na poziomie atomowym lub molekularnym na granicy faz i wewnątrz rdzenia hydrofobowego.
W przypadku korzystania z symulacji dynamiki molekularnej wyzwania obejmują próbkowanie interesujących zdarzeń, ustawienie długości symulacji, zapewnienie zbieżności wyników i odtworzenia wartości fizycznych oraz dostęp do mocy obliczeniowej. Wyzwania te są szczególnie prawdziwe w przypadku przejściowych zdarzeń na granicy faz błony, takich jak interakcja białek obwodowych z błoną lub agregacja lipidów i białek, które wymagają dużych zmian w potwierdzeniu. Protokół ten zawiera przyjazny dla początkujących przewodnik krok po kroku, jak rozpocząć przeprowadzanie dynamicznych symulacji molekularnych złożonych błon lipidowych.
Istnieje wiele alternatyw programowych do przeprowadzania tych symulacji, a niektóre pakiety zawierają samouczki lub podręczniki. Mamy nadzieję, że nasz protokół zapewni zwięzłą podstawę realistycznego modelowania błon i wskazówki dotyczące czynników, które wpływają na jakość wyników w tego typu badaniach modelowania. Protokół ten pozwolił nam uchwycić interakcje między lipidami błonowymi a innymi biomolekułami, których nie zaobserwowano przy użyciu czystych lub binarnych mieszanin lipidów.
Wiele interakcji na powierzchni błony zależy od różnorodności lipidów na samej błonie. Nasze modele pokazują, jak ważne jest włączenie odpowiednich gatunków lipidów w celu dokładnego zbadania funkcji biomolekularnych w błonach. Aby rozpocząć, użyj przeglądarki internetowej, aby odwiedzić CHARMM-GUI.
stronie internetowej organizacji. Utwórz i aktywuj darmowe konto przed utworzeniem pierwszego zestawu plików. Przejdź do górnego menu, przejdź do generatora wejść i wybierz Membrane Builder z dostępnych opcji po lewej stronie ekranu.
Wybierz Konstruktora dwuwarstwowego, aby skonstruować dwuwarstwę lipidową, a następnie wybierz system tylko membrany i zapisz wygenerowany identyfikator zadania do przyszłego dostępu. Wizualizuj systemy na każdym etapie procesu budowy, klikając przycisk Wyświetl strukturę znajdujący się w górnej części strony. Konsekwentne sprawdzanie pod kątem brakujących składników lub błędów w rozmiarze poprawki.
Zaznacz opcję Niejednorodny lipid niezależnie od tego, czy chcesz zbudować dwuwarstwę jednoskładnikową, a następnie wybierz prostokątny typ pudełka. Aby uzyskać nawodnienie, wybierz 45 cząsteczek wody na lipid, co jest wystarczające dla w pełni nawodnionej dwuwarstwy. Teraz ustaw długość XY na podstawie liczby składników lipidowych.
Określ liczbę lipidów potrzebnych dla każdego gatunku lipidów na podstawie wcześniej zaplanowanego modelu. Aby przedstawić retikulum endoplazmatyczne w komórkach eukariotycznych, w modelu PIPS zastosowano kombinację 336 DOPC, 132 DPPE, 60 cholesterolu i 72 lipidów POPI, podczas gdy w modelu PIPS użyto 330 DOPC, 126 DPPE, 54 cholesterolu, 66 POPI i 24 lipidów DOPS. Wprowadź żądaną liczbę cząsteczek dla górnego i dolnego listka w dwóch polach obok nazwy lipidu, aby utworzyć symetryczny skład błony.
Następnie przejdź na górę listy gatunków lipidów i rozpocznij akcję, klikając przycisk Pokaż informacje o systemie. Za pomocą CHARMM-GUI zweryfikuj całkowitą liczbę lipidów w każdej ulotce w symetrycznej dwuwarstwie. Kontynuuj klikanie kolejnych ekranów, aby ustawić żądane wartości temperatury i ciśnienia dla symulacji oraz składnię plików symulacji zgodnie z wybranym silnikiem dynamiki molekularnej.
Na przykład GROMACS. Pobierz wynikowe pliki i przenieś je do klastra komputerowego. Użyj wybranego oprogramowania, na przykład Visual Molecular Dynamics lub PyMOL, aby zobrazować ostateczny system.
Po zbudowaniu współrzędnych układu do symulacji dynamiki molekularnej utwórz skrypt przesyłania, aby zminimalizować i rozluźnić zbudowany układ współrzędnych. Użyj poleceń wymienionych do momentu komentarza produkcyjnego w pliku README dostarczonym w danych wyjściowych z CHARMM-GUI do skryptu przesyłania. Prześlij skrypt relaksacyjny i upewnij się, że wszystkie pliki wyjściowe z jego kroków zostały utworzone przed przejściem do przebiegu produkcyjnego.
Po zakończeniu sprawdź obecność plików wyjściowych z różnymi rozszerzeniami wygenerowanych przez GROMACS podczas sześcioetapowego przebiegu relaksacji. Aby przeprowadzić analizę porównawczą, wygeneruj krótkie trajektorie o długości 1-2 nanosekund i oszacuj koszt obliczeniowy przy użyciu różnej liczby węzłów obliczeniowych. Porównaj wydajność w nanosekundach dziennie dla różnych liczb węzłów obliczeniowych, aby określić optymalne zasoby dla przebiegu.
Wybierz liczbę węzłów, które powodują poziom wydajności w zakresie od 75 do 80% wartości maksymalnej. Skompresowane surowe pliki trajektorii oznaczone jako pliki TRR w GROMACS poprzez zmianę formatu pliku na pliki XTC lub pominięcie ramek w celu zmniejszenia rozmiaru pliku w celu ułatwienia wydajnego przesyłania do stacji lokalnej w celu wizualizacji i analizy. Wizualizacja pełnej trajektorii przed uruchomieniem jakiejkolwiek analizy w celu zidentyfikowania interesujących cząsteczek lub atomów i określenia części trajektorii przeznaczonej do charakterystyki.
Następnie określ obszar na szereg czasowy lipidów dla symulacji tylko błony i zidentyfikuj zrównoważoną część trajektorii. Analiza struktury błony ujawniła istotną różnicę w grubości między dwoma modelami retikulum endoplazmatycznego, co wskazuje na odwrotną zależność między powierzchnią na lipid a grubością błony. Parametry kolejności deuteru dla każdego rodzaju lipidów wykazały, że różnica między kolejnością ogonów lipidowych między modelami jest niewielka lub żadna, z wyjątkiem DPPE, która wykazuje niewielki wzrost dla ogona SN1 w modelu PI.
Skład lipidowy i modele błonowe modulują interakcje z innymi cząsteczkami. Na przykład symulacje wykorzystujące różne proporcje lipidów PC i PS wykazały, że oddziaływania elektrostatyczne napędzają początkowe wiązanie D112, zdelokalizowanego kationu lipofilowego z lipidami anionowymi, a interakcje hydrofobowe wciągają cząsteczkę do rdzenia błony.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
To badanie dotyczy roli różnorodności lipidów błonowych w procesach komórkowych i jego potencjału jako markera chorobowego. Za pomocą symulacji dynamiki molekularnej, badacze opisują protokół konstruowania, wykonywania i analizowania złożonych systemów błon lipidowych.
Realistic membrane modeling using complex lipid mixtures enhances predictive confidence in early-stage drug discovery by capturing physiologically relevant membrane environments. This approach enables more accurate interrogation of biomolecule-membrane interactions, supporting mechanistic de-risking and target validation. Integrating such simulations into discovery pipelines improves the translational relevance of computational findings for portfolio decision-making.
Complex lipid membrane simulations fit within the early discovery to lead identification continuum, providing foundational data for both target validation and compound optimization.