21 czerwca 2024
Ten manuskrypt przedstawia szczegółowy protokół wideo do hodowli komórek nabłonka soczewki pierwotnej (LEC), mający na celu poprawę odtwarzalności i pomoc w badaniach nad zaćmą i zmętnieniem torebki tylnej (PCO). Oferuje instrukcje krok po kroku dotyczące rozwarstwiania soczewek, izolacji LEC i walidacji, służąc jako cenny przewodnik, szczególnie dla nowicjuszy w tej dziedzinie.
Naszym celem badawczym jest poznanie przyczyn leżących u podstaw zaćmy, ze szczególnym uwzględnieniem funkcji enzymów naprawczych redoks. Naszym celem jest zidentyfikowanie kluczowej roli, jaką ten enzym odgrywa w ochronie soczewek oraz ustalenie ich potencjału jako celów leków w profilaktyce i leczeniu zaćmy. Wśród wielu ekscytujących technologii, nasze badania wykorzystują komórki nabłonka soczewki jako podstawową platformę.
Takie podejście ma kluczowe znaczenie dla rozwikłania mechanizmu powstawania zaćmy, zmętnienia tylnej torebki i odkrycia nowych leków przeciwzaćmowych. Idąc dalej, skupimy się na zrozumieniu wpływu enzymów antyoksydacyjnych i starzenia się na funkcjonalność soczewek. Naszym celem jest odkrycie innowacyjnych terapii antyoksydacyjnych, które mogą opóźnić starzenie się soczewki, zapobiegać zaćmie i zapewnić skuteczną interwencję w przypadku PCO.
Aby rozpocząć, umieść uśpioną mysz na platformie chirurgicznej. Użyj nożyczek chirurgicznych, aby delikatnie usunąć powieki. Następnie za pomocą zakrzywionej pęsety delikatnie uciskaj przeciwległą stronę oczodołu, powodując wysunięcie oka na zewnątrz.
Użyj noża do zaćmy, aby wykonać ostrożne nacięcie rogówki i użyj zakrzywionej pęsety, aby ostrożnie wyjąć soczewkę. Następnie, za pomocą zakrzywionej pęsety z końcówkami, przenieś soczewki do 60-milimetrowej plastikowej naczynia hodowlanej zawierającej pięć mililitrów sterylnego DPBS i gentamycyny. Delikatnie przepłukać soczewki roztworem DPBS zawierającym gentamycynę.
Po zakończeniu procesu płukania umieść soczewkę na kawałku bibuły filtracyjnej i pozostaw do wyschnięcia. Gdy soczewka odpowiednio wyschnie, przenieś ją ostrożnie na pokrywę szalki Petriego, aby przygotować się do wyjęcia kapsułki soczewki. Następnie obróć soczewkę do góry, upewniając się, że przedni segment jest skierowany do góry.
Trzymając przednią torebkę pęsetą, użyj kleszczyków capsulorhexis w dominującej ręce, aby utworzyć małe rozdarcie. Delikatnie pociągnij oba narzędzia w przeciwnych kierunkach, aby wyjąć kapsułkę. Umieść kapsułkę w DPBS, aż wszystkie sekcje soczewek zostaną zakończone.
Następnie ostrożnie przenieś kapsułkę soczewki na płytkę sześciodołkową. Dodaj jeden mililitr 0,05% roztworu trypsyny do każdej studzienki, aby zainicjować proces trawienia enzymatycznego. Delikatnie wymieszaj roztwór tripsin, aby zapewnić równomierne przenikanie.
Umieść płytkę w inkubatorze do hodowli komórkowych i pozwól kapsułce trawić się przez osiem do 10 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Następnie użyj nożyczek preparacyjnych, aby ostrożnie zmielić strawioną torebkę soczewki, aby przyspieszyć separację komórek. Dodać 0,5 mililitra pożywki hodowlanej zawierającej 10% FBS, aby ugasić tripsinę.
Przenieść próbki tkanek do probówki wirówkowej i odwirować przy 1000 G przez pięć minut. Ostrożnie usunąć sklarowany osad, nie naruszając osadu komórkowego. Użyj jednego mililitra pożywki hodowlanej, aby ponownie zawiesić komórki i zasiać je na 24-dołkowej płytce.
Obraz z kontrastem fazowym hodowanych komórek nabłonka soczewki wykazał, że między trzecim a piątym dniem komórki rozpoczęły fazę proliferacji. Szybki wzrost i logarytmiczne fazy proliferacji można było zaobserwować między siódmym a dziesiątym dniem.
Niniejsze badanie koncentruje się na roli enzymów naprawy redoks w powstawaniu katarakty oraz zmętnieniu tylnej torebki soczewki (PCO). Wykorzystując pierwotne komórki nabłonka soczewki (LECs) jako model, badanie ma na celu sprawdzenie potencjalnych interwencji poprzez zastosowanie leczenia antyoksydacyjnego.
Utworzenie stabilnych kultur pierwotnych komórek nabłonka soczewki (LEC) myszy pozwala na rozwiązanie krytycznego problemu w początkowych etapach poszukiwania leków okulistycznych, zwłaszcza w badaniach nad kataraktą i zmętnieniem tylnej torebki (PCO). Niezawodne systemy LEC umożliwiają analizę mechanistyczną w celu ograniczenia ryzyka oraz walidację celów dla terapeutyków przeciwutleniających i modulujących procesy redox. Niniejszy protokół zapewnia przewidywalność wyników w punkcie przejścia z etapu odkrywania leków do fazy przedklinicznej dla portfeli badawczych dotyczących chorób soczewki.
Niniejszy protokół przedstawia pierwotne hodowle LEC jako podstawowe narzędzie obejmujące wczesne etapy odkrywania, walidację celów oraz badania przedkliniczne w procesie opracowywania leków okulistycznych.