9 lutego 2024
Tutaj tworzymy szczurzy model dysfunkcji gruczołów łzowych, aby zapewnić podstawę do badania suchego oka z niedoborem wody wodnistej.
Proces opracowywania modelu zwierzęcego suchego oka jest długi. Wymaga ciągłego podskórnego wstrzykiwania skopolaminy w tylne nogi myszy w celu zahamowania wydzielania gruczołu łzowego w oczach. Tak więc eksperymentatorzy muszą mieć wystarczająco dużo cierpliwości, aby regularnie podawać lek przez długi okres czasu.
Nasz protokół jest bardzo przydatną metodą, która może tworzyć modele suchego oka o różnym stopniu w oparciu o różne stężenia leków. Może to ułatwić przyszłym naukowcom badanie leczenia zespołu suchego oka. Nasz zespół będzie nadal zgłębiał dziedzinę regeneracji gruczołów łzowych.
Jesteśmy bardzo podekscytowani pracą nad rekonstrukcją organoidów 3D i przeprowadzaniem eksperymentów transplantacyjnych. Naszym ostatecznym celem jest opracowanie bardziej zaawansowanych i skutecznych opcji leczenia dla osób cierpiących na zespół suchego oka. Na początek trzymaj ciało szczura stabilnie i rozciągnij jego tylną nogę.
Wymaz z miejsca wstrzyknięcia należy przetrzeć alkoholem. Następnie włóż jednomililitrową strzykawkę, wyposażoną w igłę o rozmiarze 26, u podstawy fałdu skórnego, między kciukiem a palcem. Pociągnąć za tłok strzykawki, aby zassać igłę.
W razie potrzeby wyjąć igłę i zmienić jej położenie. Wstrzyknąć 0,5 mililitra 0,9% chlorku sodu, z bromowodorkiem skopolaminy lub bez, jednym stałym ruchem. Aby wykonać test wydzielania łez, najpierw przetnij połowę paska bibuły filtracyjnej wzdłuż linii środkowej.
Przytnij główkę paska, aby była gładka. Umieść pasek bibuły filtracyjnej na zewnętrznej jednej trzeciej worka spojówkowego dolnej powieki szczura. Po pięciu minutach użyj pęsety, aby zacisnąć pasek bibuły filtracyjnej w probówce z mikrowirówką.
Umieść znak na ściance rurki, aby zarejestrować objętość łez. Aby zabarwić rogówkę oka szczura, wlej 0,5 mikrolitra 0,5% roztworu sodu fluoresceiny do dolnego worka spojówkowego każdego oka. Po trzech minutach obserwuj rogówkę w niebieskim świetle.
Weź spojówkę opuszkową z oczu szczura poddanego eutanazji. Wytnij rogówkę z prawej strony każdego szczura i natychmiast utrwal ją w 4% paraformaldehydzie. Wytnij naskórek głowowy z tkanki podskórnej wzdłuż linii, łącząc ucho i zewnętrzny kącik oka.
Następnie rozszerz nacięcie po obu stronach i odizoluj żółtawy dodatkowy gruczoł oczodołowy. Następnie całkowicie usuń sierść szczura i oddziel dodatkowy gruczoł oczodołowy 0,9% roztworem chlorku sodu. Wydzielanie łez w grupie skopolaminy uległo znacznemu zmniejszeniu.
Skopolamina nie powodowała żadnych ubytków nabłonka rogówki, o czym świadczy brak przebarwień rogówki. Nabłonek rogówki w grupach skopolaminowych był stosunkowo cieńszy niż w grupie kontrolnej. Grupa 7,5 wykazała również luźne połączenie wewnątrzkomórkowe i strukturę vacularną w warstwie podstawnej.
Grupy kontrolne miały znacznie grubsze nabłonki rogówki. Skopolamina wydawała się powodować zmiany zapalne w gruczołach łzowych, co wskazuje na funkcjonalne uszkodzenie gruczołów łzowych. Zmniejszenie ilości substancji śluzowej obserwowano w grupach 2,5 i 5 z wolnym naciekiem limfocytów.
Dodatkowo grupa 7,5 wykazywała nieregularne ułożenie komórek z komórkami nabłonkowymi o nieregularnym kształcie. Skopolamina powodowała również zmiany morfologiczne w spojówkach.
Niniejsze badanie ustanawia szczurzy model dysfunkcji gruczołu łzowego w celu ułatwienia badań nad zespołem suchego oka z niedoborem warstwy wodnistej. Model ten opracowano poprzez ciągłe podskórne wstrzykiwanie skopolaminy, która hamuje wydzielanie gruczołu łzowego.
Ustanowienie szczurzego modelu dysfunkcji gruczołu łzowego indukowanej skopolaminą umożliwia rzetelną analizę mechanizmów zespołu suchego oka o podłożu wodnym oraz testowanie hipotez terapeutycznych. Model ten zwiększa pewność predykcyjną we wczesnym etapie walidacji celów terapeutycznych i stanowi skalowalną platformę do oceny interwencji mających na celu przywrócenie funkcji gruczołu łzowego. Kompleksowa ocena fenotypowa sprawia, że jest on kluczowym narzędziem w celu minimalizacji ryzyka w ramach portfeli translacyjnych badań nad zespołem suchego oka.
Ten model szczurzy wpisuje się w kontinuum od odkryć do badań przedklinicznych nad chorobami powierzchni oka, stanowiąc pomost między wczesnymi badaniami nad mechanizmami a ewaluacją kandydatów translacyjnych.