February 9th, 2024
Tutaj tworzymy szczurzy model dysfunkcji gruczołów łzowych, aby zapewnić podstawę do badania suchego oka z niedoborem wody wodnistej.
Proces opracowywania modelu zwierzęcego suchego oka jest długi. Wymaga ciągłego podskórnego wstrzykiwania skopolaminy w tylne nogi myszy w celu zahamowania wydzielania gruczołu łzowego w oczach. Tak więc eksperymentatorzy muszą mieć wystarczająco dużo cierpliwości, aby regularnie podawać lek przez długi okres czasu.
Nasz protokół jest bardzo przydatną metodą, która może tworzyć modele suchego oka o różnym stopniu w oparciu o różne stężenia leków. Może to ułatwić przyszłym naukowcom badanie leczenia zespołu suchego oka. Nasz zespół będzie nadal zgłębiał dziedzinę regeneracji gruczołów łzowych.
Jesteśmy bardzo podekscytowani pracą nad rekonstrukcją organoidów 3D i przeprowadzaniem eksperymentów transplantacyjnych. Naszym ostatecznym celem jest opracowanie bardziej zaawansowanych i skutecznych opcji leczenia dla osób cierpiących na zespół suchego oka. Na początek trzymaj ciało szczura stabilnie i rozciągnij jego tylną nogę.
Wymaz z miejsca wstrzyknięcia należy przetrzeć alkoholem. Następnie włóż jednomililitrową strzykawkę, wyposażoną w igłę o rozmiarze 26, u podstawy fałdu skórnego, między kciukiem a palcem. Pociągnąć za tłok strzykawki, aby zassać igłę.
W razie potrzeby wyjąć igłę i zmienić jej położenie. Wstrzyknąć 0,5 mililitra 0,9% chlorku sodu, z bromowodorkiem skopolaminy lub bez, jednym stałym ruchem. Aby wykonać test wydzielania łez, najpierw przetnij połowę paska bibuły filtracyjnej wzdłuż linii środkowej.
Przytnij główkę paska, aby była gładka. Umieść pasek bibuły filtracyjnej na zewnętrznej jednej trzeciej worka spojówkowego dolnej powieki szczura. Po pięciu minutach użyj pęsety, aby zacisnąć pasek bibuły filtracyjnej w probówce z mikrowirówką.
Umieść znak na ściance rurki, aby zarejestrować objętość łez. Aby zabarwić rogówkę oka szczura, wlej 0,5 mikrolitra 0,5% roztworu sodu fluoresceiny do dolnego worka spojówkowego każdego oka. Po trzech minutach obserwuj rogówkę w niebieskim świetle.
Weź spojówkę opuszkową z oczu szczura poddanego eutanazji. Wytnij rogówkę z prawej strony każdego szczura i natychmiast utrwal ją w 4% paraformaldehydzie. Wytnij naskórek głowowy z tkanki podskórnej wzdłuż linii, łącząc ucho i zewnętrzny kącik oka.
Następnie rozszerz nacięcie po obu stronach i odizoluj żółtawy dodatkowy gruczoł oczodołowy. Następnie całkowicie usuń sierść szczura i oddziel dodatkowy gruczoł oczodołowy 0,9% roztworem chlorku sodu. Wydzielanie łez w grupie skopolaminy uległo znacznemu zmniejszeniu.
Skopolamina nie powodowała żadnych ubytków nabłonka rogówki, o czym świadczy brak przebarwień rogówki. Nabłonek rogówki w grupach skopolaminowych był stosunkowo cieńszy niż w grupie kontrolnej. Grupa 7,5 wykazała również luźne połączenie wewnątrzkomórkowe i strukturę vacularną w warstwie podstawnej.
Grupy kontrolne miały znacznie grubsze nabłonki rogówki. Skopolamina wydawała się powodować zmiany zapalne w gruczołach łzowych, co wskazuje na funkcjonalne uszkodzenie gruczołów łzowych. Zmniejszenie ilości substancji śluzowej obserwowano w grupach 2,5 i 5 z wolnym naciekiem limfocytów.
Dodatkowo grupa 7,5 wykazywała nieregularne ułożenie komórek z komórkami nabłonkowymi o nieregularnym kształcie. Skopolamina powodowała również zmiany morfologiczne w spojówkach.
To badanie ustanawia szczurczy model dysfunkcji gruczołu łzowego w celu ułatwienia badania suchego oka z niedoborem łez. Model jest opracowywany poprzez ciągłe podskórne wstrzyknięcia skopolaminami, które tłumią sekrecję gruczołu łzowego.
Establishing a rat model of lacrimal gland dysfunction induced by scopolamine enables robust interrogation of aqueous-deficient dry eye mechanisms and therapeutic hypothesis testing. This model supports predictive confidence in early-stage target validation and provides a scalable platform for evaluating interventions aimed at restoring lacrimal gland function. Its comprehensive phenotypic assessment positions it as a critical tool for de-risking translational dry eye research portfolios.
This rat model integrates into the discovery-to-preclinical continuum for ocular surface disease, bridging early mechanistic studies and translational candidate evaluation.