RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/66237-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Ten manuskrypt opisuje szczegółowy protokół izolowania komórek Müllera glejowych siatkówki od oczu myszy. Protokół rozpoczyna się od enukleacji i sekcji oczu myszy, po której następuje izolacja, wysiew i hodowla komórek Müllera.
Komórki Müllera są głównymi komórkami glejowymi siatkówki. Odgrywają one bardzo ważną rolę w utrzymaniu wysoce aktywnych metabolicznie neuronów siatkówki. Nasze laboratorium opracowało technikę izolowania komórek Müllera z oczu myszy. Technika ta umożliwi badanie roli komórek Müllera w różnych chorobach siatkówki, zrozumienie patogenezy chorób, a także opracowanie celów terapeutycznych.
[Narrator] Etycznie poddaj mysz eutanazji zgodnie z metodami zatwierdzonymi przez twoją instytucję. Wyłuszczenie oczu poprzez naciśnięcie pęsety w stylu 5/45 w obszarze oczodołu w celu wywołania wytrzeszcza, a następnie ekstrakcja oka poprzez ustawienie ramion pęsety w tylnej części oka, a następnie delikatne pociągnięcie od obszaru oczodołu. Umieść oczy w 10 ml roztworu do oczu Mullera i pozostaw je na noc lub na około 18 godzin w temperaturze pokojowej. Po 18 godzinach zdekantować roztwór do oczu, wylewając go z probówki i wyrzucić. Przemyć oczy podgrzaną solą fizjologiczną buforowaną fosforanami lub PBS. Ponownie zdekantować PBS, wylewając go z probówki, która ma zostać wyrzucona. Następnie umieść oczy na 100-milimetrowej szalce Petriego zawierającej 10 ml roztworu trypsyny. Umieść naczynie w inkubatorze i inkubuj przez 1,5 do 2 godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% CO2. Po inkubacji przenieś oczy na 60-milimetrową szalkę Petriego zawierającą około pięciu ml kompletnej pierwotnej pożywki do wzrostu komórek Müllera. Warto zauważyć, że film został nagrany na zewnątrz maski dla lepszej widoczności i wyraźnej demonstracji. W przypadku rzeczywistych eksperymentów należy je przeprowadzać w okapie z przepływem laminarnym, jak pokazano. Umieść oczy pod mikroskopem preparacyjnym i rozpocznij preparację. Użyj pęsety w stylu M5S i nożyczek Vannas, aby usunąć tkankę łączną, mięśnie zewnątrzgałkowe i nerw wzrokowy. Tutaj nerw wzrokowy jest cięty nożyczkami Vannas. Chwyć oko pęsetą w stylu M5S i wykonaj nacięcie w sekcji ora serrata nożyczkami Vannas lub igłą strzykawki. Chwyć nacięcie dwiema pęsetami w stylu M5S i zacznij ciągnąć lub odrywać rogówkę z tylnej części oka. Wprowadzaj małe przyrosty, aby upewnić się, że integralność siatkówki pozostaje nienaruszona. Oto demonstracja, jak usunąć rogówkę z tylnej części muszli ocznej. Po odsłonięciu soczewki i siatkówki nerwowej usuń pigmentowaną warstwę oka, do której prawdopodobnie przylega tęczówka. Następnie usuń siatkówkę nerwową z soczewki. Usuń wszelkie pigmentowane tkanki z siatkówki nerwowej, aby zwiększyć czystość izolacji. Biorąc pod uwagę lepką naturę siatkówki nerwowej, jest mało prawdopodobne, że usuniesz całą pigmentowaną tkankę. Zbierz wszystkie siatkówki nerwowe i rozerwij je na mniejsze kawałki. Umieść siatkówki nerwowe w kolbie T25 zawierającej cztery ml kompletnej pierwotnej pożywki do wzrostu komórek Müllera. Na koniec umieścić kolbę w inkubatorze i inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% CO2. Panel A pokazuje zdrową hodowlę komórek Müllera w pasażu zerowym i pasażu pierwszym. Brak pigmentu wskazuje na brak komórek RPE, które są głównym zanieczyszczeniem w izolacji. Jest on wzmocniony w panelu B za pomocą RP65, znacznika specyficznego dla RP.
Related Videos
07:22
Related Videos
25.1K Views
05:09
Related Videos
370 Views
11:01
Related Videos
15.6K Views
09:35
Related Videos
21.6K Views
10:21
Related Videos
19.8K Views
09:32
Related Videos
14.1K Views
04:53
Related Videos
3.9K Views
06:21
Related Videos
5.6K Views
10:16
Related Videos
3.5K Views
05:04
Related Videos
1.8K Views