Name: Koronarografia podczas perfuzji serca ex situ w modelu świni (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-07-12T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 25 s
Description: Poznaj metodę koronarografii podczas perfuzji serca ex situ w modelu świni. Ta technika umożliwia szczegółowe obrazowanie naczyń wieńcowych i może poprawić skrining serc dawców marginalnych, zwiększając dostępność narządów do transplantacji.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Serdecznie dziękujemy Fundacji Cœur Recherche i ADETEC za ich wsparcie finansowe. Chcielibyśmy również wyrazić naszą wdzięczność zespołowi laboratoryjnemu Marie Lannelongue za ich wkład w ten projekt: Antoine Agathon, Laure Aubrège, Aimée Alméras, Catarina Bastos Dias, Antoine Grussé, Anselme Limousin i Slimane Idir.

Wszystkie świnie otrzymały humanitarną opiekę zgodnie z 'Zasadami opieki nad zwierzętami laboratoryjnymi' opracowanymi przez National Society for Medical Research oraz 'Przewodnikiem po opiece i użytkowaniu zwierząt laboratoryjnych' przygotowanym przez Instytut Zasobów Zwierząt Laboratoryjnych i opublikowanym przez National Institutes of Health (Ósme Wydanie, 12910. National Academies Press, Waszyngton, D.C., 2011). Ten projekt badania został zatwierdzony przez francuskie Ministerstwo Badań Naukowych do wykorzystywania zwierząt do celów naukowych (protokół APAFiS#23716-2020012112432923v1). Do niniejszego badania wykorzystano osiem dużych białych samców świń (60 kg, 6 miesięcy). Zwierzęta były trzymane przez tydzień przed operacją z kongenerami w temperaturze pokojowej ze zmianą światła w dzień i w nocy. Jedzenie i woda były swobodnie dostępne. Odczynniki i sprzęt używany do tego badania są wymienione w Tabeli Materiałów.
1. Przygotowanie zwierząt
<ol>
	<li>Premedykować zwierzęta za pomocą domięśniowego wstrzyknięcia tiletaminy i zolazepamu (2 mg/kg).</li>
	<li>Pełne znieczulenie z dożylnym wstrzyknięciem propofolu (3 mg/kg).</li>
	<li>Po wentylacji maski przy użyciu 100% FiO2 należy wykonać intubację ustno-tchawiczą sondą 7,5 mm przy użyciu laryngoskopu dedykowanego dla dużych zwierząt.</li>
	<li>Znieczulenie ogólne należy utrzymywać poprzez inhalację 2% izofluranu, ciągły wlew sufentanylu (10 μg/kg/h) oraz przerywane wstrzyknięcia cisatracurium (0,3 mg/kg mc. co 30 min).</li>
	<li>Wykonaj echokardiogram przezklatkowy, aby poszukać jakiejkolwiek choroby serca, która może przeciwwskazanie do perfuzji serca ex-situ. Znaczna niedomykalność zastawki aortalnej nie pozwala na skuteczny NESP w trybie Langendorffa, ponieważ przepływ wieńcowy będzie upośledzony. W tym stanie wsteczny przepływ aorty będzie przebiegał głównie do lewej komory. 
	UWAGA: Zwierzęta z nieprawidłowościami czynności serca, w tym znaczną niedomykalnością zastawki aortalnej, powinny być wyłączone z protokołu (znieczulenie jest przerywane dla wykluczonych zwierząt, aby umożliwić przeniesienie do obiektu dla zwierząt).</li>
</ol>
2. Pobieranie serca
<ol>
	<li>Wykonaj sternotomię linii środkowej. Użyj skalpela (nr 23), aby otworzyć skórę. Otwórz tkanki podskórne za pomocą kauteryzacji monopolarnej. Otwórz mostek za pomocą półksiężycowatej piły mostkowej i zakończ sternotomię za pomocą nożyczek Mayo.
	<ol>
		<li>Wypreparuj grasicę, otwórz ją i odsłoń osierdzie nożyczkami Metzenbauma, aby uniknąć migotania komór wywołanego polem elektrycznym kauteryzacji monopolarnej.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wstrzyknąć heparynę (300 j.m./kg) bezpośrednio do prawego przedsionka.</li>
	<li>Wykonaj szwy sznurkowe za pomocą szwów polipropylenowych 4/0 na prawym przedsionku i korzeniu aorty, aby przygotować się do kaniulacji.</li>
	<li>Ostrożnie odłącz aortę od głównej tętnicy płucnej, aby przygotować się do zaciśnięcia aorty.</li>
	<li>Kontroluj żyłę główną górną i dolną za pomocą pętli chirurgicznej.</li>
	<li>Wprowadzić 9-francuską długą kaniulę antegrade do korzenia aorty 3 minuty po podaniu heparyny.</li>
	<li>Oczyść linię kardioplegii i podłącz ją do kaniuli aortalnej, a następnie zaciśnij linię kardioplegii przed pobraniem krwi. 
	UWAGA: Pobranie krwi powoduje znaczny spadek objętości, który może upośledzać prawidłową kaniulację aorty wstępującej. Dlatego łatwiej jest to zrobić przed pobraniem krwi.</li>
	<li>Kanonuluj prawy przedsionek za pomocą 32-francuskiej dwustopniowej kaniuli żylnej.</li>
	<li>Podłącz wysterylizowany worek uprzednio heparynizowany (10 000 j.m.) do prawej kaniuli przedsionka i zbierz 1500 ml krwi. 
	UWAGA: Pobrana krew jest leukodeplekowana przez innego operatora za pomocą filtra leukocytów, a następnie umieszczana bezpośrednio w obwodzie perfuzyjnym maszyny.</li>
	<li>Zacisnąć aortę i wlać 1000 ml zimnego (4 °C) roztworu do kardioplegii (Tabela 1).</li>
	<li>Zabezpiecz żyłę główną górną i dolną za pomocą pętli chirurgicznej.</li>
	<li>Zatrzymaj wentylację mechaniczną. Otwórz żyłę główną dolną i lewą żyłę płucną górną, aby rozładować serce. Umieść zimny roztwór soli fizjologicznej w osierdziu.</li>
	<li>Usuń kaniule aortalne i żylne. Eksplantuj serce, przecinając lewą żyłę azygotyczną azygoty, dwie żyły główne, dystalną aortę wstępującą, pień tętnicy płucnej i cztery żyły płucne. 
	UWAGA: Lewa żyła azygosowa jest specyficzna dla anatomii świni. Żyła ta biegnie bezpośrednio do zatoki wieńcowej. Lewa żyła azygosowa musi zostać przecięta między dwiema ligaturami przed pobraniem serca.</li>
</ol>
3. Przygotowanie serca do NESP
<ol>
	<li>Umieścić serce w roztworze soli o temperaturze 4 °C.</li>
	<li>Zbadaj zastawkę aortalną, aby potwierdzić prawidłową koaptację i zamknij opatentowany otwór owalny, jeśli jest obecny, za pomocą szwu polipropylenowego 4-0.</li>
	<li>Zakończ separację między aortą a tętnicą płucną.</li>
	<li>Umieść cztery zastawione szwy (polipropylen 4/0) wokół dystalnego odcinka aorty wstępującej.</li>
	<li>Włóż odpowiednią kaniulę aortalną i przymocuj ją za pomocą opaski zaciskowej. Dostępne są cztery rozmiary kaniuli aortalnej: 3/4 cala, 7/8 cala, 1 cal i 5/4 cala.</li>
	<li>Wprowadzić kaniulę tętnicy płucnej 30 Fr i zabezpieczyć ją szwem 4/0 ze sznurkiem torebkowym.</li>
	<li>Umieść 20-francuską studzienkę wewnątrzsercową przez otwór mitralny, aby odpowietrzyć lewą komorę.</li>
</ol>
4. Normothermiczna perfuzja serca ex-situ
UWAGA: Szczegółowy skład roztworu do kardioplegii, roztworu gruntującego, epinefryny i infuzji adenozyny znajduje się w Tabeli 1.
<ol>
	<li>Zalać perfuzję maszynową (MP) pobraną krwią (1500 ml) i dodać roztwór gruntujący (500 ml).</li>
	<li>Natlenić natleniaczem membranowym i ogrzać krew do 34 °C za pomocą grzejnika-chłodnicy.</li>
	<li>Umieść sondę ciśnieniową na linii aorty nad aortą.</li>
	<li>Umieść przepływomierz wokół kaniuli tętnicy płucnej. 
	UWAGA: Ciągły wlew epinefryny (0,5 ml/h) rozpoczyna się po podłączeniu do linii aortalnej. Wlew adenozyny zostanie dostosowany tak, aby utrzymać średnie ciśnienie w aorty między 65 mmHg a 80 mmHg.</li>
	<li>Zwiększ prędkość pompy, aby osiągnąć natężenie przepływu 2500 ml/min.</li>
	<li>Zbierz wstępną próbkę krwi do analizy gazometrii, jonogramu i poziomu mleczanu. W razie potrzeby dostosuj potas, wapń, glikemię i pH. 
	UWAGA: Wszystkie te kroki są wykonywane jednocześnie z pobraniem serca.</li>
	<li>Przed umieszczeniem serca w MP należy zmniejszyć przepływ pompy do 1000 ml/min i usunąć zastawkę między liniami aortalnymi i żylnymi.</li>
	<li>Odwietrz aortę i połącz kaniulę aorty z linią aorty.</li>
	<li>Umieść serce, aby uzyskać optymalny NESP (postępując zgodnie z instrukcjami producenta). Ściana komory tylno-dolnej będzie znajdować się przed operatorem, a kaniula tętnicy płucnej zostanie umieszczona za kaniulą aorty.</li>
	<li>Wykonuj delikatny masaż serca, aż serce się rozgrzeje.</li>
	<li>Dostarcz wstrząs o sile 20 J w przypadku migotania komór.</li>
	<li>Styczniej tętno z prędkością 80 uderzeń na minutę za pomocą zewnętrznego rozrusznika serca.</li>
	<li>Powoli zwiększaj przepływ pompy, aby osiągnąć ciśnienie w aorcie 65 mmHg.</li>
	<li>Zamknij żyłę główną dolną za pomocą polipropylenowego szwu biegowego 4/0.</li>
	<li>Oczyść i podłącz kaniulę tętnicy płucnej do linii żylnej, aby w sposób ciągły oceniać przepływ wieńcowy. 
	UWAGA: Przepływ wieńcowy powinien wynosić od 650 ml/min do 850 ml/min. Średnie ciśnienie w aorcie powinno być utrzymywane w zakresie od 70 ml/min do 85 mmHg. Oceniaj gazometrię krwi i jonogram co godzinę i laktany co 30 minut. Jeśli mleczan żylny jest wyższy niż mleczan tętniczy, pierwszym krokiem jest zapewnienie normalności jonogramu i skorygowanie wszelkich nieprawidłowości biochemicznych. Jeśli ciśnienie i przepływ wieńcowy są niskie, zwiększ prędkość pompy. Jeśli ciśnienie jest wysokie, a przepływ wieńcowy jest niski, zwiększ adenozynę, aby uodylizować tętnice wieńcowe. Należy przerwać wlew adenozyny, jeśli ciśnienie w aorcie jest poniżej 70 mmHg.</li>
</ol>
5. Koronarografia podczas NESP
<ol>
	<li>Konfiguracja eksperymentalna 
	UWAGA: Konfiguracja jest przedstawiona w Rysunek 1.
	<ol>
		<li>Upewnij się, że jest wystarczająco dużo miejsca na system perfuzji maszynowej (MP).</li>
		<li>Podnieś MP o około 25 cm za pomocą platformy. Obróć MP o 90° w lewo od pozycji wyjściowej.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wykonaj koronarografię (<silna klasa="xfig">Rysunek 2).
	<ol>
		<li>Przepłukać 5 francuskich wprowadzaczy i 5 francuskich cewników koronarowych Judkins prawych 3,5 koronarów surowicą.</li>
		<li>Włóż 5 francuski wprowadzacz przez otwór zaworu MP. 
		UWAGA: Dystalna część wprowadzającego musi być umieszczona tuż nad aortą.</li>
		<li>Wsuń przewód prowadnikowy do cewnika koronarowego do dystalnego otworu. Włóż cewnik i drut prowadnikowy do wprowadzacza aż do korzenia aorty.</li>
		<li>Cewnikowanie prawej tętnicy wieńcowej (RCA) należy wykonać w następujący sposób: RAO 35/ CAU 44 lub RAO 135/ CAU 62. Uchwyć obrazy sieci RCA, korzystając z widoków opisanych w Tabeli 2.</li>
		<li>Wykonać cewnikowanie lewej tętnicy wieńcowej w następującym widoku: RAO 135/ CAU 62. Wykonaj obrazy sieci lewej tętnicy wieńcowej, korzystając z widoków opisanych w Tabeli 2.</li>
		<li>Usuń cewnik koronarograficzny i wprowadzacz. 
		UWAGA: Użyj około 50 ml jomeprolu, nie przekraczając 100 ml.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

Coronary Artery Assessment During Ex-Situ Heart Perfusion

<ol><li>Khush, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+International+Thoracic+Organ+Transplant+Registry+of+the+International+Society+for+Heart+and+Lung+Transplantation%3A+37th+adult+heart+transplantation+report-2020%3B+focus+on+deceased+donor+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">The International Thoracic Organ Transplant Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: 37th adult heart transplantation report-2020; focus on deceased donor characteristics.</a> J Heart Lung Transplant. 39 (10), 1003-1015 (2020).</li>
<li>Khush, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+International+Thoracic+Organ+Transplant+Registry+of+the+International+Society+for+Heart+and+Lung+Transplantation%3A+Thirty-fifth+Adult+Heart+Transplantation+Report-2018%3B+Focus+Theme%3A+Multiorgan+Transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">The International Thoracic Organ Transplant Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirty-fifth Adult Heart Transplantation Report-2018; Focus Theme: Multiorgan Transplantation.</a> J Heart Lung Transplant. 37 (10), 1155-1168 (2018).</li>
<li>Dorent, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+potential+heart+donors%3A+A+statement+from+the+French+heart+transplant+community%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Cardiovasc+Dis%22%5BJournal%5D)">Assessment of potential heart donors: A statement from the French heart transplant community.</a> Arch Cardiovasc Dis. 111 (2), 126-139 (2018).</li>
<li>Ivanes, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performing+diagnostic+coronary+angiography+to+evaluate+high-risk+cardiac+donors%3A+A+French+nationwide+cohort+study%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Performing diagnostic coronary angiography to evaluate high-risk cardiac donors: A French nationwide cohort study.</a> Int J Cardiol. 277, 71-78 (2019).</li>
<li>Hassanein, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+perfusion+of+donor+hearts+in+the+beating+state+extends+preservation+time+and+improves+recovery+of+function%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Continuous perfusion of donor hearts in the beating state extends preservation time and improves recovery of function.</a> J Thorac Cardiovasc Surg. 116 (5), 821-830 (1998).</li>
<li>Ardehali, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((et+al.Ex-vivo+perfusion+of+donor+hearts+for+human+heart+transplantation+%28PROCEED+II%29%3A+a+prospective%2C+open-label%2C+multicentre%2C+randomised+non-inferiority+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">et al.Ex-vivo perfusion of donor hearts for human heart transplantation (PROCEED II): a prospective, open-label, multicentre, randomised non-inferiority trial.</a> Lancet. 385 (9987), 2577-2584 (2015).</li>
<li>McCurry, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((294%3A+Prospective+Multi-Center+Safety+and+Effectiveness+Evaluation+of+the+Organ+Care+System+Device+for+Cardiac+Use+%28PROCEED%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">294: Prospective Multi-Center Safety and Effectiveness Evaluation of the Organ Care System Device for Cardiac Use (PROCEED).</a> J Heart Lung Transplant. 27 (2), S166(2008).</li>
<li>Langmuur, S. J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normothermic+ex-situ+heart+perfusion+with+the+organ+care+system+for+cardiac+transplantation%3A+A+Meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Normothermic ex-situ heart perfusion with the organ care system for cardiac transplantation: A Meta-analysis.</a> Transplantation. 106 (9), 1745-1753 (2022).</li>
<li>Anthony, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+coronary+angiographic+evaluation+of+a+beating+donor+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Ex vivo coronary angiographic evaluation of a beating donor heart.</a> Circulation. 130 (25), e341-e343 (2014).</li>
<li>Nadel, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+transplantation+of+high-risk+cardiac+allografts+from+DCD+donors+following+ex+vivo+coronary+angiography%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Successful transplantation of high-risk cardiac allografts from DCD donors following ex vivo coronary angiography.</a> J Heart Lung Transplant. 39 (12), 1496-1499 (2020).</li>
<li>Dang Van, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((et+al.Ex+vivo+perfusion+of+the+donor+heart%3A+Preliminary+experience+in+high-risk+transplantations%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Cardiovasc+Dis%22%5BJournal%5D)">et al.Ex vivo perfusion of the donor heart: Preliminary experience in high-risk transplantations.</a> Arch Cardiovasc Dis. 114 (11), 715-726 (2021).</li>
<li>Mendirichaga, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+coronary+angiography+and+intravascular+ultrasound+of+a+donor+heart+in+the+organ+care+system%5BTitle%5D)+AND+%22JSCAI%22%5BJournal%5D)">Ex vivo coronary angiography and intravascular ultrasound of a donor heart in the organ care system.</a> JSCAI. 1 (4), 100342(2022).</li>
<li>Schibilsky, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+angiography+and+intravascular+ultrasound+in+an+ex-vivo+perfused+heart+using+the+Organ+Care+System+%28OCS%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Coronary angiography and intravascular ultrasound in an ex-vivo perfused heart using the Organ Care System (OCS).</a> J Heart Lung Transplant. 38 (4), 271(2019).</li>
<li>Davis, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+angiography+of+older+donor+hearts+during+evaluation+for+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Coronary angiography of older donor hearts during evaluation for transplantation.</a> J Heart Lung Transplant. 33 (4), S161-S162 (2014).</li>
<li>Grauhan, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+atherosclerosis+of+the+donor+heart+-+impact+on+early+graft+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Coronary atherosclerosis of the donor heart - impact on early graft failure.</a> Eur J Cardiothorac Surg. 32 (4), 634-638 (2007).</li>
<li>Abid, Q., Parry, G., Forty, J., Dark, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concurrent+coronary+grafting+of+the+donor+heart+with+left+internal+mammary+artery%3A+10-year+experience%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Concurrent coronary grafting of the donor heart with left internal mammary artery: 10-year experience.</a> J Heart Lung Transplant. 21 (7), 812-814 (2002).</li>
<li>Pinto, C. S., Prieto, D., Antunes, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+artery+bypass+graft+surgery+during+heart+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Interact+Cardiovasc+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Coronary artery bypass graft surgery during heart transplantation.</a> Interact Cardiovasc Thorac Surg. 16 (2), 224-225 (2013).</li>
<li>Plyer, A., Colin, E., Orlik, X., Akamkam, A., Guihaire, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+the+vasculature+of+a+beating+heart+by+dynamic+speckle%3A+the+challenge+of+a+quasiperiodic+motion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Opt%22%5BJournal%5D)">Imaging the vasculature of a beating heart by dynamic speckle: the challenge of a quasiperiodic motion.</a> J Biomed Opt. 28 (04), 046007(2023).</li>
<li>Dang Van, S., Brunet, D., Akamkam, A., Decante, B., Guihaire, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+assessment+of+the+donor+heart+during+ex+situ+perfusion%3A+Insights+from+pressure-volume+loops+and+surface+echocardiography%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Functional assessment of the donor heart during ex situ perfusion: Insights from pressure-volume loops and surface echocardiography.</a> J Vis Exp. (188), e63945(2022).</li>
</ol>

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Badanie to opisuje po raz pierwszy protokół koronarografii na izolowanym bijącym sercu bez uszczerbku dla żywotności metabolicznej mięśnia sercowego podczas normacyjnej perfuzji serca ex-situ (NESP). Widoki były powtarzalne, co pozwoliło na kompleksową analizę anatomiczną sieci wieńcowej. Wymagana objętość środka kontrastowego wynosiła około 50 ml i rzadko przekraczała 100 ml. Dla porównania, średnia objętość używana do koronarografii in vivo jest dwukrotnie większa i waha się od 100 ml do 150 ml. Objętość środka kontrastowego była związana z czasem trwania zabiegu. Doświadczenie zdobyte przez kardiologów interwencyjnych doprowadziło do zmniejszenia ekspozycji na promieniowanie rentgenowskie, a także objętości środka kontrastowego.
Angiografie wieńcowe wykazały, że artefakty związane z perfuzją maszynową (MP) nie upośledzają interpretacji obrazowania. Nietypowa pozycja serca podczas NESP doprowadziła do uzyskania widoków anatomicznych różniących się od tych obserwowanych w praktyce klinicznej podczas koronarografii in vivo . Widok RAO 135/CAU 62 był odpowiedni do cewnikowania zarówno prawej, jak i lewej tętnicy wieńcowej. Jednak częstość występowania RAO 35/CAU 44 ułatwiła również łatwe cewnikowanie RCA. Pogląd ten jest zwykle pierwszym, jaki można zaobserwować w naszym doświadczeniu. Dlatego zaleca się cewnikowanie RCA przy użyciu RAO 35/CAU 44 jako pierwszej opcji. W przypadku problemów technicznych widok RAO 135/CAU 62 może być używany jako opcja drugorzędna. Wysokość MP o 25 cm wymaga skrupulatnej ostrożności, aby zapobiec nachyleniu przekraczającemu 45°, ponieważ może to wprowadzić powietrze do obwodu perfuzyjnego. Bezwzględność podczas zabiegu jest obowiązkowa. Zdecydowanie zaleca się odpowiednie sterylne pole i dezynfekcję ujścia zastawki linii aortalnej. Dodatkowo w tej konfiguracji operator znajduje się bardzo blisko ramienia fluoroskopowego. Ochrona przed promieniowaniem rentgenowskim musi być dostosowana.
Istnieje ograniczona literatura na temat koronarografii podczas normacyjnej perfuzji serca ex-situ (NESP). Pierwszy opis został opisany w 2014 roku przez Anthony'ego i wsp. w szpitalu St. Vincent w Australii9. Angiografia wieńcowa ex-situ zidentyfikowała chorobę wieńcową w trzech głównych tętnicach, a przeszczep nie został przeszczepiony. Drugi opis przeprowadzony przez ten sam zespół w 2020 r. poinformował o sukcesie dwóch donacji po przeszczepach serca spowodowanych śmiercią krążeniową (DCD), w tym koronarografii podczas NESP10. W obu publikacjach autorzy nie opisali ilości i charakteru stosowanego środka kontrastowego ani poglądów obrazowych. Inny przypadek koronarografii NESP na sercu DCD został zgłoszony przez Mendirichaga i wsp. w San Diego w kwietniu 2022 r.12,13.
Zgodnie z naszą najlepszą wiedzą, to badanie jest pierwszym, w którym zbadano odtwarzalność koronarografii podczas NESP. Zapewniony jest szczegółowy protokół koronarografii podczas NESP, który można zastosować do użytku klinicznego. Wyniki uzyskane na modelu świni są powtarzalne w praktyce klinicznej, ponieważ serca świń mają anatomiczne i fizjologiczne podobieństwa do serca ludzkiego. Ponadto oprzyrządowanie i resuscytacja świńskich serc podczas perfuzji maszynowej są podobne do praktyki klinicznej na ludzkim sercu.
Protokół ten może przyczynić się do poprawy oceny dawców o rozszerzonych kryteriach (ECD), szczególnie w populacji europejskiej, ponieważ dawcy są starsi, a zatem bardziej narażeni na chorobę wieńcową (CAD) w porównaniu z Ameryką Północną. Ta różnica demograficzna podkreśla znaczenie rozważenia wszystkich dostępnych serc dawców, w tym tych bez koronarografii, przed pobraniem narządów1. We Francji Ivanes i wsp. wykazali, że koronarografia nie została wykonana w 55% ECD. Spośród tych serc bez koronarografii zaoferowano 88%, a 57% zostało zaakceptowanych4. W Stanach Zjednoczonych 30% serc ECD jest akceptowanych bez koronarografii, ponieważ pula dawców jest młodsza i mniej dawców zagrożonych CAD14.
Ta procedura ma pewne ograniczenia. Pozwala jedynie na badanie głównych naczyń wieńcowych. Jednak zwężenie dystalne lub zwężenie jednego naczynia niekoniecznie wyklucza przeszczep serca. Serca z łagodnym zwężeniem mogą być akceptowane u pacjentów niestabilnych (takich jak wymagający VA-ECMO, Bi-VAD itp.) wymagających pilnej transplantacji serca15. Obecnie do tej pory nie przeprowadzono rewaskularyzacji tętnic wieńcowych w systemie Organ Care System (OCS), a pomostowanie aortalno-wieńcowe nie jest konwencjonalnym zabiegiem podczas przeszczepu serca16,17. Obecnym złotym standardem pozostaje wykonywanie koronarografii przed pobraniem narządów ze względu na jej opłacalność i bardziej czułą analizę sieci wieńcowej. Koronarografia ex-situ stanowi interesującą alternatywę, jeśli koronarografia nie może być wykonana u dawców o rozszerzonych kryteriach (ECD) z wysokim ryzykiem choroby wieńcowej, podczas gdy biorca wymaga pilnego przeszczepu.
Obecnie opracowywane są inne, mniej inwazyjne metody oceny naczyń wieńcowych, takie jak dynamiczne obrazowanie laserowe18. Technologia ta wykorzystuje niskoenergetyczne oświetlenie laserowe w celu uzyskania wysokiej rozdzielczości obrazowania mikrokrążenia wieńcowego w czasie rzeczywistym. Jednak metoda ta nadal wymaga walidacji w izolowanych perfuzjach płuc ex-situ . Wcześniejsze prace opisywały echografię serca podczas normacyjnej perfuzji serca ex-situ (NESP), wymagającej perfuzji serca w stanie pracy19. Badania przesiewowe w kierunku CAD w ECD mogą poszerzyć pulę serc dawców. Protokół ten pozwoliłby również na ocenę sieci wieńcowej u dawców po śmierci krążeniowej (DCD). W tej kategorii dawców koronarografia nie może być wykonana przed pobraniem narządu ze względów etycznych. Wykonanie koronarografii podczas NESP w tym otoczeniu może zwiększyć bezpieczeństwo tych przeszczepów. NESP to duży postęp technologiczny w dziedzinie transplantacji serca. Technologia ta toruje drogę do lepszej oceny serc dawców przed przeszczepem.

Przeszczep serca jest złotym standardem terapii zaawansowanej niewydolności serca1,2. Leczenie to jest jednak ograniczone przez obecny niedobór narządów, co prowadzi do zwiększonej alokacji dawców o rozszerzonych kryteriach (ECD), którzy są częściej narażeni na chorobę wieńcową (CAD). Koronarografia jest zalecana we Francji, aby zapobiec ryzyku niepowodzenia przeszczepu pierwotnego związanego z chorobą wieńcową, jeśli wiek dawcy jest większy niż 55 lat lub 45 lat z dwoma czynnikami ryzyka sercowo-naczyniowego3. Mimo że koronarografia zwiększa szanse na akceptację przeszczepu o 9%, procedura ta jest wykonywana tylko w 33% przypadków we Francji4. W związku z tym serca z ECD zagrożone chorobą wieńcową są albo odrzucane do przeszczepu, albo pobierane bez badań przesiewowych w kierunku choroby wieńcowej.
System Opieki Narządowej (OCS) jest jedynym klinicznie dostępnym systemem perfuzji maszynowej (MP) do perfuzji serca Normothermic Ex-situ (NESP). Technologia ta pozwala na dłuższe przechowywanie przed przeszczepem poprzez perfuzję serca dawcy ciepłą, natlenioną krwią. Podczas NESP przeprowadzana jest ciągła ocena metaboliczna poprzez monitorowanie profilu mleczanowego5. Skuteczność i bezpieczeństwo NESP zostały obecnie wykazane w kilku badaniach, w tym w niedawnej metaanalizie6,7,8. Wykonanie koronarografii podczas NESP byłoby bardzo interesujące w celu zwiększenia prawdopodobieństwa przeszczepienia serca z ECD zagrożonych chorobą wieńcową.
Poprzednio opublikowane doświadczenia z angiografią wieńcową ex-situ9,10,11 sugerują, że konwencjonalne widoki nie są odpowiednie ze względu na odwróconą pozycję serca w module perfuzyjnym. Ponadto, składniki OCS widoczne za pomocą promieni rentgenowskich mogą pogarszać wyniki obrazowania. Wreszcie, toksyczność środków kontrastowych na mięsień sercowy podczas izolowanej perfuzji serca pozostaje wątpliwa. Niniejszy raport ma na celu zapewnienie bezpiecznego i powtarzalnego podejścia do wykonywania koronarografii podczas NESP.

<table><tbody><tr><td>System chłodnicy nagrzewnicy 3T</td><td>Liva Nova, Ch&acirc; tillon, Francja</td><td>IM-00727 A</td><td>Pozaustrojowa chłodnica</td>grzejnika</tr><tr><td>4-0 szew polipropylenowy</td><td>Peters, bobigny, Francja&nbsp;</td><td>20S15B</td><td>szwy</td></tr><tr><td>5-0 szew polipropylenowy</td><td>Peters, bobigny, Francja&nbsp;</td><td>20S10B</td><td>szwy</td></tr><tr><td>Adenosine</td><td>Efisciens BV, Rotterdam, Holandia&nbsp;</td><td>9088309</td><td>Leki do perfuzji ex-vivo</td></tr><tr><td>Adrenaline</td><td>Aguettant, Lyon, Francja&nbsp;</td><td>600040</td><td>Leki do perfuzji ex-vivo</td></tr><tr><td>Oprogramowanie ADW</td><td>General Electric Healthcare, Chicago, Ill, USA</td><td>ADW_IGS730/ M5173653</td><td>Oprogramowanie używane do wizualizacji koronarografii</td></tr><tr><td>Atracurium</td><td>Pfizer Holding France, Paryż, Francja&nbsp;</td><td>582547</td><td>Leki do indukcji znieczulenia</td></tr><tr><td>CG4 +</td>Abbott<td>, Chicago, Ill, USA</td><td>03P85-25</td><td>Mleczany i kartusz gazometryczny do analizatora krwi&nbsp;</td></tr><tr><td>CG8 +</td> <td>Abbott, Chicago, Ill, USA</td><td>03P88-25</td><td>Kartridż jonogramowy do analizatora krwi&nbsp;</td></tr><tr><td>Strumień DeltaStream&nbsp;</td><td>Opieka medyczna Fresenius, L' Arbresle, Francja</td><td>MEH2C4024</td><td>Pozaustrojowa pompa krwi</td></tr><tr><td>Discovery IGS 7</td><td>General Electric Healthcare, Chicago, Ill, USA</td> System angiografii <td>Discovery IGS7.3 / M5173652</td><td>do hybrydowej sali operacyjnej&nbsp;</td></tr><tr><td>Kaniula korzenia aorty DLP</td><td>Medtronic Inc. Minneapolis, Minneapolis, USA</td><td>ref. 11012, 12,5-calowa</td><td>kaniula korzenia aorty</td></tr><tr><td>Zewnętrzny rozrusznik serca</td><td>Medtronic Inc. Minneapolis, Minneapolis, USA</td><td>5392</td><td>Urządzenie do tworzenia rozrusznika serca</td></tr><tr><td>Fresinus Agilia iniektomat</td><td>Fiolka Fresenius, Brezins, Francja</td><td>018010/20640320</td><td>Sterownik strzykawki&nbsp;</td></tr><tr><td>Glukoza 5%</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Niemcy</td><td>3400891780017</td><td>Leki do roztworu kondycjonującego</td></tr><tr><td>Filtr leukocytarny Haemonetics</td><td>, Boston, Massachusetts, USA</td><td>RS1VAE</td><td>Filtr leukocytów&nbsp;</td></tr><tr><td>Zestaw do perfuzji serca, system opieki narządowej</td><td>Transmedics, Andover, MA, USA</td><td>Ref#1200</td><td>Normothermic ex-vivo urządzenie do perfuzji serca, w tym moduł perfuzyjny, tętnica płucna i kaniula aortalna</td></tr><tr><td>Intellivue MX550</td><td>Philips Healthcare, Suresnes, Francja</td><td>NA</td><td>Stały system monitorowania&nbsp;</td></tr><tr><td>Obrazowanie Iomeron 350</td><td>Bracco, Massy, Francja</td><td>3400933794606.00</td><td>Środek kontrastowy Iomeprol</td></tr><tr><td>produkt istat 1</td><td>Abbott, Chicago, Ill, USA</td><td>714336-03O</td><td>Analizator krwi&nbsp;</td></tr><tr><td>Judkins Right 3.5</td><td>Boston Scientific,&nbsp; Marlborough, Massachusetts, Stany Zjednoczone</td><td>H74934358202&nbsp;</td><td>Sonda cewnikowania koronarowego angiografii&nbsp;</td></tr><tr><td>Magnesium</td><td>Aguettant, Lyon, Francja&nbsp;</td><td>564 780-6</td><td>Leki stosowane w kardioplegii</td></tr><tr><td>Siarczan magnezu</td><td>Aguettant, Lyon, Francja&nbsp;</td><td>600111</td><td>Leki na kardioprogię</td></tr><tr><td>Mannitol 20%</td><td>Macopharma, Mouvoux, Francja</td><td>3400891694567.00</td><td>Leki na kardioprednizolon</td></tr><tr><td>Metyloprednizolon&nbsp;</td><td>Mylan S.A.S, Święty Kapłan, Francja&nbsp;</td><td>400005623</td><td>Leki do roztworu gruntującego</td></tr><tr><td>Oprogramowanie MWI&nbsp;</td><td>General Electric Healthcare, Chicago, Ill, USA</td><td>NA</td><td>oprogramowanie używane do ultrasonograficznego aparatu echokardiograficznego</td></tr><tr><td>Sonda ustno-tchawicza</td><td>Smiths medical ASD, Inc., Minneapolis, Minneapolis, USA</td><td>100/199/070</td><td>do intubacji podczas znieczulenia&nbsp;</td></tr><tr><td>Chlorek potasu 10%&nbsp;</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Niemcy</td><td>3400892691527.00</td><td>Leki na kardioplegię</td></tr><tr><td>Propofol</td><td>Zoetis France, Malakoff, Francja&nbsp;</td><td>8083511</td><td>Leki do indukcji znieczulenia</td></tr><tr><td>Quadrox-I mały dotleniacz dla dorosłych</td><td>Getinge, G&ouml; teborg, Szwecja</td><td>BE-HMO 50000</td><td>Pozaustrojowy utleniacz krwi</td></tr><tr><td>Roztwór Ringera</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Niemcy</td><td>DKE2323</td><td>Leki na kardioplegię</td></tr><tr><td>Wodorowęglan sodu</td><td>Laboratoire Renaudin, itxassou, Francja</td><td>3701447</td><td>Leki na kardioplegię</td></tr><tr><td>Chlorek sodu</td><td>Aguettant, Lyon, Francja&nbsp;</td><td>606726</td><td>Leki do roztworu gruntującego</td></tr><tr><td>Swan Ganz Catheter</td><td>Merit Medical, południowa jordania, utah, USA&nbsp; &nbsp;</td><td>5041856</td><td>Sonda ciśnienia w prawo i pojemności minutowej serca&nbsp;</td></tr><tr><td>Tiletamina&nbsp;</td><td>Virbac France, Carros, Francja&nbsp;</td><td>3597132126021.00</td><td>Leki do indukcji znieczulenia</td></tr><tr><td>Dwustopniowa kaniula żylna&nbsp;</td><td>Medtronic Inc. Minneapolis, Minneapolis, USA</td><td>91240, 32 francuska</td><td>kaniula żylna</td></tr><tr><td>Vivid E95 ultrasonograf</td><td>General Electric Healthcare, Chicago, Ill, USA</td><td>NA</td><td>Ultrasonograficzny aparat echokardiograficzny</td></tr><tr><td>Xyloca&iuml; ne 2%</td><td>Aspen, Reuil-malmaison, Francja&nbsp;</td><td>600550</td><td>Leki na kardioplegię</td></tr><tr><td>Zolazepam</td><td>Cardinal Health LLC, Waukegan, Illinois, USA</td><td>31050522</td><td>Elektrody do wykrywania EKG&nbsp;</td></tr><tr><td>Zolazepam</td><td>Virbac France, Carros, Francja&nbsp;</td><td>3597132126021.00</td><td>Leki do indukcji znieczulenia</td></tr></tbody></table>

koronarografia podczas perfuzji serca ex situ w modelu świni

Coronary Angiography During Ex-Situ Heart Perfusion in a Porcine Model

Przeszczep serca jest złotym standardem leczenia zaawansowanej niewydolności serca. Ze względu na obecny niedobór narządów, wzrasta liczba dawców o rozszerzonych kryteriach (ECD). Koronarografia jest zalecana w ECD zagrożonych chorobą wieńcową, ale nie jest systematycznie wykonywana. W związku z tym serca te są albo odrzucane do przeszczepu, albo pobierane bez badań przesiewowych w kierunku choroby wieńcowej. Koronarografia podczas normotermicznej perfuzji serca ex-situ (NESP) może być interesującym podejściem do zwiększenia wskaźnika pobierania ECD i zmniejszenia ryzyka niepowodzenia przeszczepu pierwotnego w przypadku braku koronarografii w ECD. Niniejszy protokół ma na celu dostarczenie szczegółów materiału wraz z optymalnymi widokami obrazowania dla koronarografii podczas NESP. Zaobserwowano powtarzalne obrazy angiograficzne, w tym jeden poświęcony prawej tętnicy wieńcowej, dwa dla lewej przedniej tętnicy zstępującej, dwa dla tętnicy obwodowej oraz widok pająka. We wszystkich procedurach obserwowano ciągłą ekstrakcję mleczanu, a końcowe mediana stężenia wynosiła 1,10 mmol/l (0,61-1,75 mmol/l) dwie godziny po koronarografii, co było zgodne z żywotnością mięśnia sercowego. Mediana objętości środka kontrastowego użytego do obrazowania ex-situ izolowanego perfundowanego serca wynosiła 48 ml (38-108 ml). Protokół ten był powtarzalny w obrazowaniu tętnic wieńcowych i nie upośledzał żywotności mięśnia sercowego podczas NESP.

Opisany protokół został opracowany w celu zapewnienia łatwej reprodukowalności w praktyce klinicznej. Wprowadzono minimalne modyfikacje w dostępnym module do normotermicznej perfuzji serca ex-situ (NESP). Jedyne korekty polegały na podłączeniu modułu do pompy systemu podtrzymywania życia poza organizmem (ECLS), oksygenatora oraz jednostki grzewczo-chłodzącej w celu zastąpienia perfuzji maszynowej (MP).
Wstępnie przeprowadzono dwie procedury testowe w celu oceny projekcji angiografii wieńcowej wykorzystanych w niniejszym protokole. Następnie wykonano sześć angiografii wieńcowych u ex situ perfuzowane serca świń. Serca poddawano perfuzji przez 240 min, a po 120 min wykonano angiografię wieńcową. Początkowy okres 120 minut zdefiniowano tak, aby odzwierciedlał średni czas obserwowany w praktyce klinicznej od rozpoczęcia NESP do powrotu do ośrodka transplantacyjnego, w którym przeprowadzana jest angiografia wieńcowa; ostatnie dwie godziny reprezentowały czas potrzebny na wykonanie angiografii wieńcowej oraz przygotowanie biorcy na sali operacyjnej. Procedury angiografii wieńcowej zostały wykonane przez dwóch doświadczonych kardiologów interwencyjnych. Średnie ciśnienie w aorcie oraz przepływ wieńcowy były monitorowane w sposób ciągły. Poziomy mleczanów mierzono co 30 min w celu oceny żywotności mięśnia sercowego. Odnotowano również objętość podanego iomeprolu oraz dawkę promieniowania.
Parametry wyjściowe przedstawiono w Tabeli 3. Wszystkie serca wykazywały korzystny profil metaboliczny z zachowaną ekstrakcją mleczanów i zostały pomyślnie zachowane przez 4 h w systemie NESP. Nie odnotowano przedwczesnych zakończeń z powodu niewydolności perfuzji. W trakcie drugiej procedury wystąpił błąd podczas kanulacji lewej tętnicy wieńcowej. W trzecim przypadku pomylono obraz lewej i prawej tętnicy wieńcowej. Medialna objętość środka kontrastowego wyniosła 48 mL (min. 38 mL-max. 108 mL). Medialna dawka promieniowania jonizującego wyniosła 3,30 mGy (min. 1,0 mGy-max. 17 mGy), przy medialnym iloczynie dawka-pole (DAP) wynoszącym 0,55 Gy/cm2 (min. 0,18 Gy/cm2-max. 2,05 Gy/cm2). Medialny czas ekspozycji na promieniowanie jonizujące wyniósł 9,50 min (IQR: 6,75-12,75). Średni czas trwania procedury wyniósł 34,5 min (± 21). Profile mleczanów, przepływ wieńcowy, ciśnienie w aorcie oraz wyniki metaboliczne przedstawiono w Tabeli 4 i na Rysunku 3.
<img alt="Konfiguracja chirurgii robotycznej, instrumenty i monitor wykorzystane w demonstracji procedury sercowo-naczyniowej." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66567/66567fig01.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: Konfiguracja MP i ramienia fluoroskopowego. (A) MP jest wyniesiona na platformie tak, aby serce znajdowało się w polu promieniowania rentgenowskiego ramienia fluoroskopowego w celu uzyskania obrazów angiografii wieńcowej. (B) Po wyniesieniu o 10 cm, MP znajduje się w polu rentgenowskim, co umożliwia rejestrację obrazów angiografii wieńcowej. (C) Operatorzy wykonujący angiografię wieńcową przez otwór z zastawką. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66567/66567fig01large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Schemat angiografii rentgenowskiej podczas implantacji stentu; interwencja kardiologiczna, obrazowanie naczyniowe, leczenie tętnicy." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66567/66567fig02.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2: Angiografia wieńcowa podczas normotermicznej perfuzji serca ex-situ. (A) Prawa tętnica wieńcowa. (B) Przednia zstępująca tętnica lewa. (C) Tętnica okalająca. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66567/66567fig02large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Wykres ciśnienia aorty w funkcji poziomu mleczanów i przepływu wieńcowego w czasie; schemat przedstawia analizę układu sercowo-naczyniowego." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66567/66567fig03.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 3"> 
Rycina 3: Trendy mediany poziomów mleczanów, przepływu wieńcowego i ciśnienia aorty podczas 240 min normotermicznej perfuzji serca ex-situ. Czerwone słupki na wykresie reprezentują medianę stężenia mleczanów w mmol/L. Niebieska linia z kropkami reprezentuje medianę przepływu wieńcowego w mL/min. Zielona linia z trójkątami reprezentuje medianę ciśnienia aorty w mmHg. Słupki błędów reprezentują 95% CI. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66567/66567fig03large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody >
		<tr >
			<td >Roztwór</td>
			<td >Składniki</td>
		</tr >
		<tr >
			<td rowspan="6">Kardioplegia</td>
			<td >500 mL roztworu Ringera</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >10 mL 10% KCl</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >3 mL 2% Xylocaïne</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >6 mL 20% mannitolu</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >6 mL 8,4% wodorowęglanu sodu</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >7 mL 15% siarczanu magnezu</td>
		</tr >
		<tr >
			<td rowspan="6">Priming</td>
			<td >500 mL roztworu NaCl</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >150 mg magnezu</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >250 mg metylprednizolonu</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >1 g cefotaksymu</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >50 UI insuliny</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >5 mL 30% glukozy</td>
		</tr >
		<tr >
			<td rowspan="2">Wlew epinefryny</td>
			<td >500 mL 5% glukozy</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >0,25 mg epinefryny</td>
		</tr >
		<tr >
			<td rowspan="2">Wlew adenozyny</td>
			<td >60 mg adenozyny</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >40 mL roztworu NaCl</td>
		</tr >
	</tbody >
</table>
Tabela 1: Szczegółowy skład roztworu kardioplegii, roztworu primingu oraz infuzji epinefryny i adenozyny.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Tętnice wieńcowe</td>
			<td>Rotacja boczna</td>
			<td>Rotacja góra-dół</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RCA (amplifikacja tocąca się w pierścieniu)</td>
			<td>RAO 35</td>
			<td>CAU 44</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Proksymalna RCA</td>
			<td>RAO 64</td>
			<td>CAU 38</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dystalna część prawej tętnicy wieńcowej (RCA)</td>
			<td>RAO 65</td>
			<td>CAU 66</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pająk</td>
			<td>RAO 70</td>
			<td>CAU 52</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LAD</td>
			<td>RAO 135</td>
			<td>CAU 62</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tętnica przednia zstępująca</td>
			<td>RAO 167</td>
			<td>CAU 79</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tętnica brzegowa</td>
			<td>RAO 44</td>
			<td>CAU 51</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cx</td>
			<td>LAO 125</td>
			<td>CAU 83</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabela 2: Projekcje w angiografii wieńcowej. RCA: prawa tętnica wieńcowa; LAD: lewa przednia zstępująca tętnica wieńcowa; Cx: tętnica okoliczna; RAO: projekcja prawostronna skośna przednia; LAO: projekcja lewostronna skośna przednia; CAU: projekcja caudalne.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td></td>
			<td>T0</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Masa </td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Świnie (kg) †</td>
			<td>51.9 (50.1—53.9)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serca (g) ‡</td>
			<td>228.5 (± 30.1)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Czas trwania (min) ‡</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pobieranie serca</td>
			<td>13.5 (± 5.4)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Czas niedokrwienia w niskiej temperaturze </td>
			<td>41.8 (± 9.8)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Czas powrotu do stołu </td>
			<td>29.3 (± 8.2)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parametry perfuzji † </td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ciśnienie aorty (mmHg)</td>
			<td>80.50 (75.25—83.50)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Przepływ wieńcowy (l/min)</td>
			<td>0.450 (0.375– 0.650)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wyniki biologiczne † </td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mleczany (mmol/L)</td>
			<td>2.59 (2.87—2.32)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pH ‡</td>
			<td>7.44 (± 0.05)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pO2 (mmHg)</td>
			<td>523 (466–631)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pCO2 (mmHg)</td>
			<td>30.1 (26.2–35.8)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HCO3- (mmol/L)</td>
			<td>22.10 (17.55–24.37)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Natremia (mmol/L)</td>
			<td>143 (138.7–145.0)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kaliemia (mmol/L) ‡</td>
			<td>2.97 (± 0.60)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stężenie wapnia w surowicy (mmol/L)</td>
			<td>1.11 (1.09–1.16)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glikemia (mmol/L)</td>
			<td>1.17 (1.12–1.34)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabela 3: Charakterystyka wyjściowa. †Dane przedstawiono jako mediany (z zakresem międzykwartylowym IQR).
‡Dane przedstawiono jako średnie (z odchyleniami standardowymi). T0 = początek normotermicznej perfuzji serca ex-situ; pO2 = ciśnienie parcjalne tlenu; pCO2 = ciśnienie parcjalne dwutlenku węgla; HCO3- = wodorowęglany.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody >
		<tr >
			<td></td>
			<td >T120</td>
			<td >T240</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >Parametry perfuzji</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr >
		<tr >
			<td>Ciśnienie aortalne (mmHg)</td>
			<td>79.00 (74.2 – 82.2)</td>
			<td>73.00 (69.50 – 76.25)</td>
		</tr >
		<tr >
			<td>Przepływ wieńcowy (L/min)</td>
			<td>0.65 (0.60 – 0.70)</td>
			<td>0.85 (0.67 – 1.10)</td>
		</tr >
		<tr >
			<td >Wyniki biologiczne</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr >
		<tr >
			<td>Mleczany (mmol/L)</td>
			<td>1.68 (0.92 – 2.08)</td>
			<td>1.10 (0.61 – 1.75)</td>
		</tr >
		<tr >
			<td>pH </td>
			<td>7.39 (7.35 – 7.42)</td>
			<td>7.36 (7.32 – 7.43)</td>
		</tr >
		<tr >
			<td>HCO3- (mmol/L)</td>
			<td>22.10 (20.10 – 23.12)</td>
			<td>21.20 (19.22 – 22.92)</td>
		</tr >
		<tr >
			<td>Natremia (mmol/L)</td>
			<td>144.5 (144.00 – 146.25)</td>
			<td>142.5 (137.50 – 145.25)</td>
		</tr >
		<tr >
			<td>Kaliemia (mmol/L)</td>
			<td>3.55 (3.12 – 3.82)</td>
			<td>3.10 (2.97 – 3.62)</td>
		</tr >
		<tr >
			<td>Calcemia (mmol/L)</td>
			<td>1.13 (1.11 – 1.16)</td>
			<td>1.10 (1.08 – 1.16)</td>
		</tr >
	</tbody >
</table>
Tabela 4: Parametry perfuzji i wyniki biologiczne przed oraz 2 h po angiografii wieńcowej. Dane przedstawiono jako mediany (z rozstępem międzykwartylowym IQR). T120 = 120 min po rozpoczęciu normotermicznej perfuzji serca ex-situ, bezpośrednio przed angiografią wieńcową; T240 = 240 min po rozpoczęciu normotermicznej perfuzji serca ex-situ, 120 min po angiografii wieńcowej; HCO3- = wodorowęglany.

Badania przesiewowe w kierunku choroby wieńcowej mogłyby zwiększyć liczbę dawców serc z rozszerzonymi kryteriami. Protokół wykonywania powtarzalnej koronarografii podczas perfuzji serca ex-situ opisano w niniejszym dokumencie na modelu świniowym.

Koronarografia podczas perfuzji serca ex situ w modelu świni

Heart transplantation is the gold standard treatment for advanced heart failure. The procurement of extended criteria donors (ECD) increases due to the ...

Badania przesiewowe w kierunku choroby wieńcowej są zalecane przed pobraniem serca u dawców marginalnych, ale często ich nie ma. Alternatywą może być wykonanie obrazowania angiograficznego naczyń wieńcowych ex situ perfuzji serca. Ten film zawiera szczegółowy opis tej metody.Do obrazowania naczyń wieńcowych potrzebne są niekonwencjonalne widoki, ponieważ serce jest odwrócone w module perfuzyjnym. Po drugie, komponenty modułu mogą tworzyć artefakty dla nieodpowiedniego obrazowania. I wreszcie, toksyczność środka kontrastowego pozostaje wątpliwa, ponieważ nie jest on eliminowany z modułu perfuzyjnego.Wykonanie obrazowania angiograficznego naczyń wieńcowych ex situ perfuzji serca jest łatwe do odtworzenia i może wykluczyć zwężenie głównych naczyń wieńcowych. Koronarografia na izolowanej perfuzji nie jest powszechną procedurą dla kardiologa interwencyjnego. Zapewnienie szczegółowego protokołu odtwarzalnych widoków może pomóc w zmniejszeniu narażenia na środek kontrastowy, który może być szkodliwy.Lepsza ocena choroby wieńcowej zwiększy lokalizację przeszczepów brzeżnych, a tym samym może zmniejszyć niedobór narządów. Na początek użyj skalpela, aby rozciąć skórę wzdłuż linii środkowej znieczulonej świni. Otwórz tkankę podskórną za pomocą kauteryzacji monopolarnej.Następnie użyj piły mostkowej półksiężycowatej, aby otworzyć mostek. Wypreparuj i otwórz grasicę. Za pomocą nożyczek Metzenbaum odsłoń osierdzie.Użyj szwów polipropylenowych 4/0 do wykonania szwów sznurkowych na prawym przedsionku i korzeniu aorty. Kanuleguj prawemu przedsionkowi za pomocą 32-stopniowej francuskiej 2-stopniowej kaniuli żylnej. Teraz podłącz wcześniej wysterylizowany worek heparynizowany do prawej kaniuli przedsionka.Zbierz 1 500 mililitrów krwi. Zacisnąć aortę, a następnie wlać 1000 mililitrów zimnego roztworu kardioplegii. Następnie usuń kaniule aortalne i żylne.Przeciąć lewą żyłę azygosową, dwie żyły kawiczne, dystalną aortę wstępującą, pień tętnicy płucnej i cztery żyły płucne w celu wycięcia serca. Umieść serce w zimnym roztworze soli fizjologicznej. Sprawdź zastawkę aortalną, aby potwierdzić prawidłową koaptację.Umieść cztery zastawione szwy wokół dystalnego odcinka aorty wstępującej. Następnie włóż odpowiednią kaniulę aortalną i przymocuj ją za pomocą opaski zaciskowej. Następnie włóż 30 francuskich kaniuli tętnic płucnych.Zabezpiecz go szwem sznurkowym 4/0 do torebki. Na koniec umieść miskę śródsercową przez otwór mitralny, aby odpowietrzyć lewą komorę. Podnieś maszynę do perfuzji o 25 centymetrów za pomocą platformy.Obróć go o 90 stopni w lewo. Zalać maszynę perfuzyjną 500 mililitrami roztworu zalewowego. Następnie dodaj 1 500 mililitrów zebranej krwi świni.Natlenić krew za pomocą oksygenatora membranowego. Następnie podgrzej krew do 34 stopni Celsjusza za pomocą chłodnicy grzejnej. Pobrać wstępną próbkę krwi do analizy gazometrii i poziomu mleczanu.Zmniejsz przepływ pompy perfuzyjnej do 1000 mililitrów na minutę. Następnie usuń zastawkę między linią aortalną a żylną. Teraz de przewietrzyć aortę.Podłącz kaniulę aorty do linii aorty. Delikatnie masuj serce, aż się rozgrzeje. Umieść serce, aby uzyskać optymalną normalną termikę XC do perfuzji.Użyj zewnętrznego rozrusznika serca, aby przyspieszyć pracę serca z prędkością 80 uderzeń na minutę. Powoli zwiększaj przepływ pompy do ciśnienia w aorcie wynoszącego 65 mililitrów rtęci. Zamknij żyłę główną dolną za pomocą polipropylenowego szwu biegowego 4/0.Oczyść i podłącz kaniulę tętnicy płucnej do linii żylnej, aby w sposób ciągły oceniać przepływ wieńcowy. Następnie przepłucz 5 francuskich wprowadzaczy i 5 francuskich judkinsów prawego cewnika koronarowego 3,5 koronarowego surowicą. Włóż 5 francuski wprowadzacz przez otwór zaworu maszyny.Wsuń przewód prowadnikowy do cewnika koronarowego do dystalnego otworu. Następnie wykonaj koronarografię. Cewnikować prawą tętnicę wieńcową, korzystając z podanych widoków.Następnie uchwyć obrazy prawej tętnicy wieńcowej, proksymalnej prawej tętnicy wieńcowej i dystalnej prawej sieci tętnic wieńcowych. Podobnie cewnikuj lewą tętnicę wieńcową i uchwyć obrazy lewej przedniej tętnicy zstępującej, widoku pająka i brzeżnych sieci tętnic wieńcowych.

coronary-angiography-during-ex-situ-heart-perfusion-in-a-porcine-model

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film opisuje technikę ex situ do konserwacji izolowanego serca świni poprzez perfuzję za pomocą natlenionego, bogatego w składniki odżywcze roztworu perfuzatu. Technika ta pozwala na kompleksową ocenę wydolności serca w warunkach fizjologicznych.

Perfuzja serca ex situ: technika zachowania izolowanej funkcji serca świni

Ten protokół opisuje model zawału mięśnia sercowego (MI) świni za pomocą 90-minutowej zamkniętej klatki piersiowej zamknięcia balonu wieńcowego lewej tętnicy zstępującej przedniej (LAD), po której następuje reperfuzja. Ponadto przedstawiono również protokół dla kilku parametrów końcowych, takich jak czynność serca, hemodynamika, opór mikronaczyniowy i wielkość zawału.

Zawał mięśnia sercowego i ocena wyników funkcjonalnych u świń

Rzetelna i dokładna ocena wyników jest kluczem do przełożenia terapii przedklinicznych na leczenie kliniczne. W niniejszej pracy opisano, w jaki sposób można ocenić trzy klinicznie istotne pierwszorzędowe parametry końcowe dotyczące wydolności i uszkodzenia serca w modelu ostrego zawału mięśnia sercowego u świni.

Pierwszorzędowa ocena wyniku w świńskim modelu ostrego zawału mięśnia sercowego

Tutaj demonstrujemy protokół standaryzacji procedur pobierania próbek z ustalonego modelu ostrego zawału mięśnia sercowego u świń, aby zwiększyć jego wartość translacyjną w zrozumieniu patofizjologii niedokrwienia mięśnia sercowego/uszkodzenia reperfuzyjnego i przetestować nowych kandydatów na leki.

Udoskonalenie modelu zawału mięśnia sercowego u świń w zamkniętej klatce piersiowej poprzez standaryzację procedur pobierania próbek tkanek i krwi

Celem tego badania było ustalenie metody badania dynamiki serca za pomocą translacyjnego modelu zwierzęcego. Opisane podejście eksperymentalne obejmuje optokardiografię podwójnej emisji w połączeniu z badaniem elektrofizjologicznym w celu oceny aktywności elektrycznej w izolowanym, nienaruszonym modelu serca świni.

Badania optokardiograficzne i elektrofizjologiczne serca perfundowanego ex vivo Langendorffem

Opisujemy nowatorską, opłacalną i efektywną technikę przezskórnego dostarczania trójwymiarowo drukowanych implantów wieńcowych do tworzenia modeli choroby niedokrwiennej serca u świń z zamkniętą klatką piersiową. Implanty zostały zamocowane za pomocą cewnika przedłużającego matkę i dziecko z wysokim wskaźnikiem skuteczności.

Nowatorskie przezskórne podejście do wdrażania drukowanych w 3D implantów zwężenia choroby wieńcowej w modelach choroby niedokrwiennej serca u świń

Ogólnym celem obecnego badania jest przedstawienie technik indukcji zawału mięśnia sercowego (MI) i niewydolności serca po zawale mięśnia sercowego (post-MI HF) u dorosłych miniświnek z Getyngi z zamkniętą klatką piersiową oraz charakterystyka modelu post-MI HF u miniświnek z Getyngi w porównaniu do świń rasy Landrace.

Niewydolność serca po zawale mięśnia sercowego w modelu niedrożności/reperfuzji wieńcowej z zamkniętą klatką piersiową u świń miniaturowych i landrace

Modele zwierzęce zawału mięśnia sercowego (MI), które naśladują naturalny proces choroby u ludzi, są kluczowe dla zrozumienia mechanizmów patofizjologicznych i testowania bezpieczeństwa i skuteczności nowych terapii. W tym miejscu opisujemy model trzody chlewnej MI utworzony przez zastosowanie przezskórnej cewki embolizującej.

Zawał mięśnia sercowego przez przezskórne wprowadzenie cewki embolizacyjnej w modelu trzody chlewnej

Ten protokół opisuje technikę chirurgiczną używaną do umieszczania cewnika termorozcieńczającego przez żyłę szyjną u świń w celu oszacowania pojemności minutowej serca i zapewnienia odpowiedniej perfuzji płuc podczas perfuzji płuc ex vivo (EVLP).

Oznaczanie rzutu serca w modelu świniowym do perfuzji płuc ex vivo

Ten artykuł opisuje nowatorski nonocklazyjny łącznik zespolenia wieńcowego w modelu pomostowania tętnic wieńcowych (OPCAB) u świń. Ten łatwy w użyciu łącznik wieńcowy ma wewnętrzny potencjał, aby ułatwić minimalnie inwazyjną operację OPCAB.

Ocena nowatorskiego łącznika zespolenia wieńcowego wspomaganego laserem - klipsa Trinity - w modelu pomostowania poza pompą u świń

Poznaj metodę koronarografii podczas perfuzji serca ex situ w modelu świni. Ta technika umożliwia szczegółowe obrazowanie naczyń wieńcowych i może poprawić skrining serc dawców marginalnych, zwiększając dostępność narządów do transplantacji.

Koronarografia podczas perfuzji serca ex situ w modelu świni

Przeglądaj więcej filmów