March 1st, 2024
Ten protokół opisuje unikalną metodę wykrywania wiązania między związkami a cząsteczkami białka, oferując korzyści w postaci minimalnej utraty próbki białka i wysokiej dokładności danych.
Nasz protokół zapewnia znaczną przewagę, umożliwiając użytkowanie bez specjalistycznego sprzętu. W przeciwieństwie do tradycyjnych ilościowych metod PCR fluorozy, po prostu stawia czoła procesowi eksperymentalnemu, który wymaga etapów danych dla widzów i zmniejsza ogólną złożoność, dzięki czemu jest prosty i łatwiejszy do przeprowadzenia. Eksperyment ten wymaga od operatora dokładnego zaznajomienia się z procedurą eksperymentalną i czytnikiem mikropłytek fluorescencyjnych, a także nie marnowania zbyt wiele czasu podczas podgrzewania roztworu i wykrywania fluorescencji.
Skupimy się na mechanizmie molekularnym, dzięki któremu umbelliferon do białka CD40 wywołuje efekty immunologiczne. Na początek dodaj 500x pomarańczowy barwnik do roztworu PBS, aby uzyskać różne proporcje barwnika. Uruchom oprogramowanie do akwizycji danych na pulpicie.
Kliknij na instrument, a następnie wybierz odpowiedni model mikropłytki i wybierz OK. Kliknij ustawienia akwizycji i wybierz fluorescencję. Pod interfejsem długości fali ustaw lambda jeden na 470 nanometrów i 570 nanometrów. Następnie naciśnij przycisk OK. Odpipetować 100 mikrolitrów każdego stężenia pomarańczowego barwnika do dołków 96-dołkowej płytki.
Umieść płytkę w stopniu wykrywania w czytniku mikropłytek fluorescencyjnych. Kliknij ikonę odczytu w oprogramowaniu i zmierz fluorescencję każdego stężenia barwnika 13 razy w temperaturze pokojowej w odstępie dwóch minut. Po każdym ustaleniu kliknij ikonę eksportu, a następnie wybierz Eksportuj do XML, XLS, TXT.
Wybierz wszystkie płyty, a następnie wybierz płytę w formacie wyjściowym i kliknij OK, aby zapisać dane w formacie XLS do dalszej analizy. Teraz włącz cyfrowe ogrzewanie, wytrząsanie suchej kąpieli. Ustaw temperaturę grzania na 35 stopni Celsjusza, a czas nagrzewania na dwie minuty.
Przygotuj optymalny stosunek rozcieńczenia barwnika w 1,5 mililitrowej probówce do mikrowirówki. Następnie umieść go w suchej kąpieli z cyfrowym ogrzewaniem i wytrząsaniem na dwie minuty. Teraz dodaj 100 mikrolitrów zarówno PBS, jak i roztworów barwiących do dołków płytki.
Umieść płytkę w stopniu wykrywającym przyrządu. Kliknij ikonę odczytu w oprogramowaniu do akwizycji danych. Ustaw temperaturę grzania na 40 stopni Celsjusza, a czas nagrzewania na dwie minuty.
Teraz odpipetuj roztwór barwnika z płytki z powrotem do 1,5-mililitrowej probówki mikrowirówkowej. Podgrzej go w suchej kąpieli z wytrząsaniem w cyfrowym ogrzewaniu przez dwie minuty. Powtórz dodawanie roztworów barwników, eksportując wynikowe dane w celu przetestowania absorbancji roztworu barwnika w krokach co pięć stopni temperatury od 35 do 95 stopni Celsjusza.
Połącz roztwór białka CD40 z PBS, aby uzyskać końcowe stężenia 5, 10, 15 i 20 mikrogramów na mikrolitry. Następnie połącz pomarańczowy barwnik z PBS, aby uzyskać końcowe stężenie od jednego do 500. Ocenić absorbancję roztworu białka CD40 w krokach co pięć stopni temperatury od 35 do 95 stopni Celsjusza.
Zapisz dane jako pliki XLS, a następnie oblicz temperaturę topnienia lub wartość TM za pomocą oprogramowania do analizy danych. Następnie wymieszaj CD40 i baldaszkowit z roztworem PBS. Następnie odpipetuj pomarańczowy barwnik do PBS, aby uzyskać roztwór o stężeniu od jednego do 500.
Zmierzyć absorbancję roztworu kompleksów umbelliferonu CD40 w krokach co pięć stopni temperatury od 35 do 95 stopni Celsjusza. Pomarańczowy barwnik konsekwentnie wykazywał stabilne wzbudzenie fluorescencyjne zarówno w temperaturze pokojowej, jak i podwyższonej. Określono optymalny stosunek rozcieńczenia jeden do 500.
Stabilna wartość TM wynosząca 51,82 stopni Celsjusza była wykrywalna przy stężeniu 15 mikrogramów na mililitr, które spadło do 45,79 stopni Celsjusza wraz ze wzrostem stężenia białka CD40.
Ten protokół opisuje unikalną metodę wykrywania wiązań między związkami chemicznymi a cząsteczkami białka, oferując zaletę minimalnej utraty próbki białka i wysokiej dokładności danych. Metoda upraszcza proces eksperymentalny, czyniąc go dostępnym bez specjalistycznego sprzętu.
Differential scanning fluorescence (DSF) enables rapid, quantitative assessment of protein-ligand interactions, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in immunology-focused discovery portfolios. The ability to detect CD40 protein-umbelliferone binding with high sensitivity and minimal sample loss streamlines the evaluation of immune-modulating compounds. This workflow positions DSF as a scalable, accessible tool for advancing protein stability and interaction studies in biopharma R&D.
DSF-based detection of protein-small molecule interactions integrates into the discovery-to-preclinical continuum, bridging early target validation and lead identification for immune pathway modulators.