Name: Opracowanie taniej elektrody do elektromiografii epimysjalnej: uproszczony przepływ pracy przy produkcji i testowaniu (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-04-12T14:50:00.000+00:00
Duration: 4 min 48 s
Description: Poznaj uproszczoną metodę produkcji i testowania elektrod epimysjalnych EMG do badań elektrofizjologicznych z wykorzystaniem modelu gryzoni. Technika ta umożliwia badanie aktywacji mięśniowej po urazie ACL.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases Grant R01AR081235 (dla L. K. Lepleya). Autorzy dziękują następującym osobom za ich wkład w produkcję i testowanie naszej biokompatybilnej elektrody: Joelowi Pingelowi, Grantowi Guellerowi, Akhilowi Rameshowi, Joe Letnerowi, Jacky'emu Tianowi i Rossowi Brancatiemu.

 Fabricating Epimysial EMG Electrodes for Preclinical Rodent Models 

<ol><li>Grandjean, P. A., Mortimer, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recruitment+properties+of+monopolar+and+bipolar+epimysial+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Recruitment properties of monopolar and bipolar epimysial electrodes.</a> Ann. Biomed. Eng. 14 (1), 53-66 (1986).</li>
<li>Memberg, W. D., Stage, T. G., Kirsch, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fully+implanted+intramuscular+bipolar+myoelectric+signal+recording+electrode%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromodulation+J.+Int.+Neuromodulation+Soc%22%5BJournal%5D)">A fully implanted intramuscular bipolar myoelectric signal recording electrode.</a> Neuromodulation J. Int. Neuromodulation Soc. 17 (8), discussion 799 794-799 (2014).</li>
<li>Loeb, G. E., Gans, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLoeb%2C+GE+%22Electromyography+for+Experimentalists%22">Electromyography for Experimentalists</a>. , University of Chicago Press. Chicago, IL. (1986).</li>
<li>Boehler, C., Carli, S., Fadiga, L., Stieglitz, T., Asplund, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tutorial%3A+guidelines+for+standardized+performance+tests+for+electrodes+intended+for+neural+interfaces+and+bioelectronics%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Tutorial: guidelines for standardized performance tests for electrodes intended for neural interfaces and bioelectronics.</a> Nat. Protoc. 15 (11), 3557-3578 (2020).</li>
<li>Patel, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insertion+of+linear+8.4+%C2%B5m+diameter+16+channel+carbon+fiber+electrode+arrays+for+single+unit+recordings%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neural+Eng%22%5BJournal%5D)">Insertion of linear 8.4 µm diameter 16 channel carbon fiber electrode arrays for single unit recordings.</a> J. Neural Eng. 12 (4), 046009(2015).</li>
<li>Richie, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open-source+toolkit%3A+benchtop+carbon+fiber+microelectrode+array+for+nerve+recording%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Open-source toolkit: benchtop carbon fiber microelectrode array for nerve recording.</a> J. Vis. Exp. (176), e63099(2021).</li>
<li>Impedance measurement of bipolar stimulation electrodes immersed in medium. Sarolic, A., Skalic, I., Deftu, A., Sapunar, D. 2018 EMF-Med 1st World Conf. Biomed. Appl. Electromagn. Fields EMF-Med, , 1-2 (2018).</li>
<li>Pritchett-Corning, K. R., Mulder, G. B., Luo, Y., White, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+rodent+surgery+for+the+New+Surgeon%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp.%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Principles of rodent surgery for the New Surgeon.</a> J. Vis. Exp.: JoVE. (47), e2586(2011).</li>
<li>Zealear, D., Li, Y., Huang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+implantable+system+for+chronic+in+vivo+electromyography%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp.+JoVE%22%5BJournal%5D)">An implantable system for chronic in vivo electromyography.</a> J. Vis. Exp. JoVE. (158), e60345(2020).</li>
<li>Butterfield, T. A., Leonard, T. R., Herzog, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+serial+sarcomere+number+adaptations+in+knee+extensor+muscles+of+rats+is+contraction+type+dependent%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol.+Bethesda+Md+1985%22%5BJournal%5D)">Differential serial sarcomere number adaptations in knee extensor muscles of rats is contraction type dependent.</a> J. Appl. Physiol. Bethesda Md 1985. 99 (4), 1352-1358 (2005).</li>
<li>Farago, E., MacIsaac, D., Suk, M., Chan, A. D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+of+techniques+for+surface+electromyography+signal+quality+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Rev.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">A review of techniques for surface electromyography signal quality analysis.</a> IEEE Rev. Biomed. Eng. 16, 472-486 (2023).</li>
<li>Raez, M. B. I., Hussain, M. S., Mohd-Yasin, F. Techniques of EMG signal analysis: detection, processing, classification and applications. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRaez%2C+MBI+%22Biol.+Proced.+Online%22">Biol. Proced. Online</a>. 8, 11-35 (2006).</li>
<li>Tankisi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standards+of+instrumentation+of+EMG%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Standards of instrumentation of EMG.</a> Clin. Neurophysiol. 131 (1), 243-258 (2020).</li>
<li>Kumar, A., Accorsi, A., Younghwa, R., Mahasweta, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Do%27s+and+don%27ts+in+the+preparation+of+muscle+cryosections+for+histological+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp.+JoVE%22%5BJournal%5D)">Do's and don'ts in the preparation of muscle cryosections for histological analysis.</a> J. Vis. Exp. JoVE. (99), e52793(2015).</li>
<li>Wang, C., Yue, F., Kuang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+histology+characterization+using+H%26E+staining+and+muscle+fiber+type+classification+using+immunofluorescence+staining%5BTitle%5D)+AND+%22Bio-Protoc%22%5BJournal%5D)">Muscle histology characterization using H&E staining and muscle fiber type classification using immunofluorescence staining.</a> Bio-Protoc. 7 (10), e2279(2017).</li>
<li>Kreifeldt, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signal+versus+noise+characteristics+of+filtered+EMG+used+as+a+control+source%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Signal versus noise characteristics of filtered EMG used as a control source.</a> IEEE Trans. Biomed. Eng. BME-18 (1), 16-22 (1971).</li>
<li>Farina, D., Yoshida, K., Stieglitz, T., Koch, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multichannel+thin-film+electrode+for+intramuscular+electromyographic+recordings%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Multichannel thin-film electrode for intramuscular electromyographic recordings.</a> J. Appl. Physiol. 104 (3), 821-827 (2008).</li>
<li>Muceli, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decoding+motor+neuron+activity+from+epimysial+thin-film+electrode+recordings+following+targeted+muscle+reinnervation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neural+Eng%22%5BJournal%5D)">Decoding motor neuron activity from epimysial thin-film electrode recordings following targeted muscle reinnervation.</a> J. Neural Eng. 16 (1), 016010(2018).</li>
<li>Guo, L., Guvanasen, G., Tuthill, C., Nichols, T., Deweerth, S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGuo%2C+L+%22Characterization+of+a+Stretchable+Multielectrode+Array+for+Epimysial+Recording%22">Characterization of a Stretchable Multielectrode Array for Epimysial Recording</a>. , 694(2011).</li>
<li>Zwarts, M. J., Stegeman, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multichannel+surface+EMG%3A+basic+aspects+and+clinical+utility%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Multichannel surface EMG: basic aspects and clinical utility.</a> Muscle Nerve. 28 (1), 1-17 (2003).</li>
<li>Fabrication and test of robust spherical epimysial electrodes for lower limb stimulation. Aalb. Den. Koch, K. P., Leinenbach, C., Stieglitz, T. IFESS 5th Conf, , (2000).</li>
<li>Uhlir, J. P., Triolo, R. J., Davis, J. A., Bieri, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+of+epimysial+stimulating+electrodes+in+the+lower+extremities+of+individuals+with+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans.+Neural+Syst.+Rehabil.+Eng%22%5BJournal%5D)">Performance of epimysial stimulating electrodes in the lower extremities of individuals with spinal cord injury.</a> IEEE Trans. Neural Syst. Rehabil. Eng. 12 (2), 279-287 (2004).</li>
<li>Deer, T. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+appropriate+use+of+neurostimulation%3A+new+and+evolving+neurostimulation+therapies+and+applicable+treatment+for+chronic+pain+and+selected+disease+states%5BTitle%5D)+AND+%22Neuromodulation+Technol.+Neural+Interface%22%5BJournal%5D)">The appropriate use of neurostimulation: new and evolving neurostimulation therapies and applicable treatment for chronic pain and selected disease states.</a> Neuromodulation Technol. Neural Interface. 17 (6), 599-615 (2014).</li>
<li>Ortiz-Catalan, M., Brånemark, R., Håkansson, B., Delbeke, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+viability+of+implantable+electrodes+for+the+natural+control+of+artificial+limbs%3A+Review+and+discussion%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed.+Eng.+OnLine%22%5BJournal%5D)">On the viability of implantable electrodes for the natural control of artificial limbs: Review and discussion.</a> Biomed. Eng. OnLine. 11, 33(2012).</li>
<li>Sando, I. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+peripheral+nerve+interface+for+prostheses+control%3A+electrode+comparison%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Reconstr.+Microsurg%22%5BJournal%5D)">Regenerative peripheral nerve interface for prostheses control: electrode comparison.</a> J. Reconstr. Microsurg. 32 (3), 194-199 (2016).</li>
</ol>

Autorzy oświadczają, że nie są im znane żadne konkurencyjne interesy finansowe ani powiązania osobiste, które mogłyby mieć wpływ na pracę opisaną w tym artykule.

Naszym celem było usprawnienie procesu wytwarzania EMG, umożliwienie szerszego przyjęcia i wdrożenia projektów elektrod epimysjalnych, a tym samym zwiększenie dostępności i postęp w badaniach nerwowo-mięśniowych. W tym celu przedstawiamy przyjazny dla użytkownika przewodnik dotyczący pozyskiwania, wytwarzania i testowania tanich elektrod epimysjalnych we własnym zakresie. W nadziei na wsparcie innych grup badawczych udostępniamy również dodatkowe szablony druku 3D, aby ułatwić produkcję własnych elektrod epimysjalnych dla ich przedsięwzięć badawczych.
Badacze rozważający przyjęcie tych technik wytwarzania powinni wziąć pod uwagę następujące kwestie: 1) parametry elektrody określone w tym procesie pracy (kształt, wymiary, powierzchnia styku, odległość między elektrodami, długość przewodu itp.) zostały wybrane tak, aby pasowały do naszego modelu eksperymentalnego i będą musiały zostać zmodyfikowane pod kątem różnych przypadków użycia, 2) spawanie drutów ołowianych do folii kontaktowych jest kluczowym krokiem, który wymaga praktyki do pomyślnego wykonania; Regulacja szerokości impulsu i energii spawania podczas spawania może zwiększyć sukces, 3) konieczne jest naprężenie drutów ołowianych i ocena wydajności interfejsu po spawaniu w celu przetestowania połączenia powierzchni ołowiu z powierzchnią, 4) Ostatnim etapem produkcji jest powlekanie i uszczelnianie elektrody silikonem, prosty, ale kluczowy proces dla optymalnej wydajności elektrody. Powłoka silikonowa powinna być cienka i stosunkowo gładka, aby zapobiec podrażnieniu tkanki skórnej podczas implantacji, ale zbyt cienka powłoka może pogorszyć działanie elektrody. Naukowcom zaleca się modyfikację stosunku silikonu do toluenu zgodnie z ich specyfikacjami, aby uzyskać wytrzymałą, ale cienką i gładką warstwę szczeliwa silikonowego.
Oceniając wydajność elektrody, inni powinni zwrócić uwagę na następujące kwestie: 1) podaliśmy przykład oceny in vivo , ale zachęcamy czytelnika do skorzystania z procedury testowania in vivo , która naśladuje zamierzony przypadek użycia specjalnie wyprodukowanej elektrody epimysialnej, 2) nasz protokół badań in vivo również nie pozwolił przestrzennie na jednoczesną implantację elektrod wyprodukowanych na zamówienie i standardowych w branży. W związku z tym zgodność sygnału między elektrodami nie mogła być mierzona in vivo , a zatem nie była oceniana, 3) dodatkowo nasza konfiguracja do testowania in vivo nie pozwalała na ocenę impedancji elektrody po implantacji, 4) ważne jest, aby wziąć pod uwagę, że nasze dane były testowane ex vivo przy stosunkowo niskich poziomach napięcia (<1 V) ze względu na nasze potrzeby eksperymentalne. W związku z tym naukowcy, którzy rozważają wprowadzenie tych elektrod, mogą chcieć przetestować ich użyteczność przy wyższych napięciach. Są to kwestie, które inni mogą wziąć pod uwagę podczas testowania własnych elektrod nabłonkowych.
Wcześniejsze prace podkreśliły potencjał wielokanałowych elektrod rejestrujących o dużej gęstości w celu dokładniejszego dekodowania aktywności neuronów ruchowych 17,18,19,20. Zachęcamy osoby zainteresowane opracowywaniem i używaniem wielokanałowych elektrod epimysjalnych do korzystania i rozszerzania zasobów instruktażowych, które tutaj udostępniamy. Oprócz tego, że służą jako elektrody rejestrujące, elektrody epimysjalne są powszechnie stosowane jako elektrody stymulujące w neurostymulacji 21,22,23 i eksperymentach kontrolnych protez 24,25. Osoby zainteresowane wykorzystaniem elektrod epimysjalnych do tych celów zachęcamy do skorzystania z naszej pracy i przetestowania możliwości stymulacyjnych własnych, wykonanych na zamówienie elektrod epimyialnych.
Ogólnie rzecz biorąc, kwantyfikacja aktywności elektrycznej mięśni ma fundamentalne znaczenie dla zrozumienia mechanizmów leżących u podstaw wielu patologii i skuteczności potencjalnych metod leczenia. Ten zaktualizowany przepływ pracy stanowi prosty przewodnik po produkcji własnych, opłacalnych elektrod epimysjalnych, które można wykorzystać do wiarygodnego określenia ilościowego tego ważnego wskaźnika zdrowia układu mięśniowo-szkieletowego. Mamy nadzieję, że ta metodologia może posłużyć jako szablon dla innych grup do wytwarzania i testowania własnych, niestandardowych elektrod epimysjalnych.

Elektromiografia (EMG) to potężne narzędzie do badania aktywności elektrycznej mięśni. Zapisy EMG mogą być szczególnie przydatne w przedklinicznych modelach zwierzęcych do oceny skuteczności interwencji w leczeniu dysfunkcji nerwowo-mięśniowej. W tych modelach wszczepialne biokompatybilne elektrody są powszechnie używane do oceny neurofizjologicznego interfejsu między neuronami ruchowymi a włóknami mięśniowymi. Te wszczepialne elektrody mogą zapewniać zlokalizowane pomiary pobudzenia mięśni i mogą być zróżnicowane pod względem konfiguracji, kształtu i materiału, przy czym optymalna konstrukcja jest ostatecznie podyktowana lokalizacją i przeznaczeniem.
Pomimo ich przydatności do oceny pobudzenia mięśni w modelach przedklinicznych, użycie elektrod epimysial może być ograniczone przez koszty. W rezultacie wielu badaczy korzysta z niestandardowych elektrod epimysjalnych, które są produkowane we własnym zakresie. Chociaż istnieją zasoby szczegółowo opisujące podstawowe zagadnienia związane z produkcją, testowaniem i użytkowaniem elektrod1,2, istnieje potrzeba zaktualizowanego przewodnika instruktażowego szczegółowo opisującego pozyskiwanie, wytwarzanie i walidację elektrod epimysial przy użyciu nowoczesnych metod. Opierając się na fundamentalnych pracach Loeba i Gansa3 i innych w teorii elektrod, przedstawiamy nowoczesne instrukcje dotyczące pozyskiwania i wytwarzania tanich elektrod epimysial i testujemy ich działanie w serii eksperymentów ex vivo i in vivo. Celem jest zaoferowanie przyjaznego dla użytkownika przewodnika dla innych członków społeczności naukowej, który umożliwi pozyskiwanie, wytwarzanie i testowanie we własnym zakresie tanich elektrod epimysjalnych do użytku u zwierząt, umożliwiając szerszą ocenę ilościową pobudzenia mięśni w modelach przedklinicznych.
W tym protokole udostępniamy przewodnik instruktażowy dotyczący pozyskiwania, produkcji i testowania elektrod epimysial do użytku u zwierząt w nowoczesnym laboratorium elektrofizjologii. Parametry elektrody wybrane do produkcji, takie jak kształt, wymiary, powierzchnia styku, odległość między elektrodami, długość przewodu itp., zostały dobrane do naszych potrzeb eksperymentalnych i były porównywalne z dostępną na rynku standardową elektrodą epimysjalną (patrz tabela materiałów). Zachęcamy inne grupy do modyfikowania tych parametrów zgodnie z ich potrzebami, a także do wyboru niezawodnej elektrody zgodnej ze standardem branżowym, która pasuje do ich przypadku użycia.
Aby dać czytelnikom względnie szybkie zrozumienie wydajności elektrody, podajemy również przykład protokołu testowania ex vivo z opcją pomiaru impedancji elektrody. Dodatkowo podajemy przykładową ocenę działania elektrod in vivo. W eksperymencie ex vivo porównano specjalnie wyprodukowaną elektrodę ze standardem przemysłowym w kąpieli solankowej, aby naśladować stabilne warunki fizjologiczne. Impedancję oceniano również ex vivo za pomocą elektrochemicznej spektroskopii impedancyjnej (EIS). Eksperyment in vivo polegał na chirurgicznym wszczepieniu specjalnie wyprodukowanej elektrody do mięśnia obszernego bocznego (VL) 16-tygodniowej samicy szczura Long Evans (HsdBlu: LE, Envigo) w celu zmierzenia sygnału EMG w warunkach, o których wiadomo, że wywołują wysoki lub niski sygnał (chodzenie pod górę, w dół). Aby ocenić niezawodność specjalnie wykonanej elektrody, sygnalizację EMG uzyskano podczas poziomego chodzenia po pełnej rekonwalescencji chirurgicznej i przed ofiarą (odpowiednio 14 i 56 dni po implantacji). Barwienie hematoksyliną-eozyną (H&E) przeprowadzono na oprzyrządowanym mięśniu w celu oceny biokompatybilności specjalnie wyprodukowanej elektrody.

<table><tbody><tr><td><mocne>Materiały elektrodowe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Ilość i cena za elektrodę</mocny></td></tr><tr><td>Powierzchnia</td><td>styku Prince and Izant PT90/IR10 folia 1,25 mm x 5 mm</td><td>Katalog #1040055&nbsp;</td><td>2 za elektrodę 7,50 USD za folię 15,00 USD za elektrodę</td></tr><tr><td>Drut elektrodowy ze stali nierdzewnej pokryty PFA&nbsp;</td><td>A-M Systems Wielożyłowy drut ze stali nierdzewnej powlekany PFA 50,8 i mikro; m średnica pasma&nbsp;</td><td>Katalog #793500</td><td>W zależności od pożądanej długości przewodu (np. 9-calowe druty ołowiane x2) $128 za szpulę 25 ft $5.12 za stopę $0.42 za cal (x18) $7.68 za elektrodę</td></tr><tr><td>Składany przyrząd&nbsp;</td><td>Druk 3D (patrz plik .gcode)</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>NA Uszczelniacz do korpusu elektrody</td><td>Płynny silikon Nusil Med-1137</td><td>Katalog #MED-1137</td><td>1 gram 344.66 USD za 2 uncje (59.15 mL) 5.83 USD za elektrodę</td></tr><tr><td>Podstawa silikonowa</td><td>Implantech Alliedsil Arkusz silikonowy wzmocniony, długotrwale wszczepialny (8 "x 6") o grubości .007 Katalog</td><td>#701-07&nbsp;</td><td>Arkusz 10 mm x 5 mm 225,00 USD za 8 x 6 cali 0,36 USD za elektrodę (10 mm x 5 mm)</td></tr><tr><td>&nbsp; Rozcieńczalnik do mieszanki uszczelniającej</td><td>Toluen 99,5% odczynnik ACS 500 ml lub ksylen ACS 99,5%</td><td>Katalog #179418-500 ML</td><td>0,75 ml 25,53 USD za 500 ml 0,38 USD za elektrodę</td></tr><tr><td>Szablon do perforacji podstawy silikonowej</td><td>Przyrząd do cięcia &ndash; Druk 3D (patrz plik CAD)</td><td>NA</td><td>NA</td></tr><tr><td>Elektroda wykonana na zamówienie: <mocna> 29,25 USD/<></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Standardowa elektroda przemysłowa (elektroda krosowa EMG EP105, 2-stykowa, jednostronna, 7 mm x 4 mm, mikrosonda dla nauk przyrodniczych): 305,00</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>USD<mocny>Dodatkowe materiały produkcyjne&nbsp; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Ilość i cena za elektrodę</mocny></td></tr><tr><td>Oprogramowanie do druku 3D&nbsp;</td><td>Solidworks (Solidworks, 2022)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spawarka Micro-Tig&nbsp;</td><td>Spawarka Micro-TIG (CD1000SPM, zgrzewarka punktowa z pojedynczym impulsem i odpornością na produkcję światła, kamień słoneczny)</td><td>SKU&nbsp; 301010</td><td>$3,500</td></tr><tr><td>Kąpiel ultradźwiękowa</td><td>Kąpiel ultradźwiękowa (Kąpiel ultradźwiękowa serii CPX, Fisherbrand).&nbsp;</td><td>15-337-403</td><td>NA</td></tr><<tr><td>strong>Ex Vivo Materiały testowe&nbsp; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Ilość i cena za elektrodę</mocny></td></tr><tr><td>Platforma i oprogramowanie do akwizycji danych</td><td>DigitalLynx 4sX Base Cheetah wersja 6.0 (Neuralynx Inc.)&nbsp;</td><td>NA</td><td>Sprzęt i oprogramowanie do akwizycji EMG</td></tr><tr><td>Płytka interfejsu elektrod (EIB)</td><td>EIB, EIB16-QC, Neuralynx Inc.</td><td>31-0603-0007</td><td></td></tr><tr><td>NA Generator</td><td>sygnału 5 MHz Generator funkcyjny, B& K Precyzja&nbsp;</td><td>&nbsp; 4005DDS220V</td><td>$387.46</td></tr><tr><td>Potencjostat</td><td>PGSTAT1 potencjostat (EcoChemie, Utrecht, Holandia)</td><td>NA</td><td>NA</td></tr><tr><td>Śruba ze stali nierdzewnej</td><td>Fine Science Tools</td><td>19010-00</td><td>$98</td></tr><tr><td><mocny>Materiały testowe Ex Vivo&nbsp; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Ilość i cena za elektrodę</mocny></td></tr><tr><td>Bieżnia dla gryzoni&nbsp;</td><td>Bieżnia otwarta Exer 3/6, Columbus Instruments</td><td>NA</td><td>NA</td></tr><tr><td>Cement dentystyczny</td><td>Excel Formula&reg; Nalewany materiał dentystyczny, St. George Technology Inc.</td><td>#24211$</td><td>125.60</td></tr><tr><td>Mikroskop świetlny</td><td>Keyence BZ-X800, Keyence Corporation, Osaka, Japonia&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>System przechwytywania ruchu</td><td>Optitrack Color Camera, Optitrack, NaturalPoint Inc.</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>NA Algorytm wykrywania</td> <td>szczytu" SciPy.signal.find_peaks - SciPy v1.8.1 Manual", 2022</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>NA Oprogramowanie Python</td><td>Python Software Foundation. Dokumentacja języka Python, wersja 3.9. Dostępne pod adresem http://www.python.org</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>NA</td><td>Rat HsdBlu: LE, Envigo</td><td>140</td><td>NA</td></tr><tr><td>Statistical sotware</td><td>GraphPad Prism version 10.0.0 (GraphPad Software, Boston, Massachusetts USA)</td><td>NA</td><td>NA</td></tr></tbody></table>

opracowanie taniej elektrody do elektromiografii epimysjalnej: uproszczony przepływ pracy przy produkcji i testowaniu

Development of a Low-cost Epimysial Electromyography Electrode: A Simplified Workflow for Fabrication and Testing

Elektromiografia (EMG) jest cennym narzędziem diagnostycznym do wykrywania nieprawidłowości nerwowo-mięśniowych. Wszczepialne elektrody epimysjalne są powszechnie stosowane do pomiaru sygnałów EMG w modelach przedklinicznych. Chociaż istnieją klasyczne źródła opisujące zasady wytwarzania elektrod epimysjalnych, istnieje niewiele informacji ilustracyjnych przekładających teorię elektrod na praktykę. Aby temu zaradzić, udostępniamy zaktualizowany, łatwy do naśladowania przewodnik dotyczący wytwarzania i testowania taniej elektrody epimysjalnej. 
Elektrody zostały wykonane przez złożenie i włożenie dwóch folii platynowo-irydowych do wstępnie przyciętej silikonowej podstawy, aby utworzyć powierzchnie kontaktowe. Następnie powlekane druty ze stali nierdzewnej zostały przyspawane do każdej powierzchni styku, aby utworzyć przewody elektrod. Na koniec użyto mieszanki silikonu do uszczelnienia elektrody. Przeprowadzono testy ex vivo w celu porównania naszej elektrody wyprodukowanej na zamówienie ze standardową elektrodą w kąpieli solankowej, w której stwierdzono wysoki poziom zgodności sygnału (sinus [korelacja wewnątrzklasowa - ICC= 0,993], kwadrat [ICC = 0,995], trójkąt [ICC = 0,958]) i synchronizacja czasowa (sinus [r = 0,987], kwadrat [r = 0,990], trójkąt [r = 0,931]) we wszystkich przebiegach. Niskie poziomy impedancji elektrod określono również ilościowo za pomocą elektrochemicznej spektroskopii impedancyjnej. 
Przeprowadzono również ocenę wydajności in vivo, gdzie mięsień obszerny boczny szczura został chirurgicznie oprzyrządowany za pomocą specjalnie wyprodukowanej elektrody, a sygnalizacja została uzyskana podczas chodzenia pod górę i w dół. Zgodnie z oczekiwaniami, szczytowa aktywność EMG była znacznie niższa podczas chodzenia w dół (0,008 ± 0,005 mV) niż pod górę (0,031 ± 0,180 mV, p = 0,005), co potwierdza ważność urządzenia. Niezawodność i biokompatybilność urządzenia zostały również poparte spójną sygnalizacją podczas chodzenia po poziomie po 14 dniach i 56 dniach od implantacji (odpowiednio 0,01 ± 0,007 mV, 0,012 ± 0,007 mV; p > 0,05) oraz brakiem histologicznego stanu zapalnego. Wspólnie zapewniamy zaktualizowany przepływ pracy w zakresie wytwarzania i testowania tanich elektrod epimysjalnych.

Ex vivo wydajność 
Współczynniki korelacji wewnątrzklasowej (ICC) wykazały wysoki poziom zgodności między elektrodami wykonanymi na zamówienie a elektrodami standardowymi dla wszystkich kształtów fal (sinusoidalna [ICC = 0.993], prostokątna [ICC = 0.995], trójkątna [ICC = 0.958]; p &lt; .001). Wykresy Blanda-Altmana również wykazały wysoki stopień zgodności sygnału między elektrodami. Wykresy Blanda-Altmana oraz korelacje Persona zostały podsumowane na Rysunku 3, wskazując na silne korelacje dodatnie między elektrodami wykonanymi na zamówienie a elektrodami standardowymi. Korelacje Persona wykazały wysoki poziom synchronizacji czasowej między elektrodą wykonaną na zamówienie a elektrodą standardową dla wszystkich kształtów fal (sinusoidalna [r = 0.987], prostokątna [r = 0.990], trójkątna [r = 0.931]).
<img alt="Analiza kształtu fali: sinus, prostokąt, trójkąt; korelacja elektrod; wykresy Blanda-Altmana; dane napięciowe." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66744/66744fig03.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3: Wyniki testów ex vivo. Surowe dane z elektrod autorskich oraz standardowych elektrod przemysłowych dla powtarzalnej fali (A) sinusoidalnej, (D) prostokątnej i (G) trójkątnej przy 0.1 V i 5 Hz. (B,E,H) Korelacja między pomiarami napięcia dla elektrod autorskich i MicroProbe dla 8 000 próbek poszczególnych kształtów fal. (C,F,I) Wykres Blanda-Altmana oceniający procentową różnicę między elektrodą autorską a MicroProbe w odniesieniu do średnich wartości poszczególnych kształtów fal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/66744fig03large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
Reprezentatywne widmo impedancji dla specjalnie wykonanej elektrody epimizjalnej przedstawiono na Rysunku 4. Pomiary impedancji przeprowadzono w zakresie od 10 Hz do 31 kHz, jednak wyniki podano dla częstotliwości 1 kHz, która jest istotna dla akwizycji EMG. Standard przemysłowy (elektroda referencyjna) wykazał impedancję 2 kΩ. Dla porównania, średnia impedancja 10 specjalnie wykonanych elektrod epimizjalnych wyniosła odpowiednio 3,61 ± 7,95 kΩ oraz 1,63 ± 1,59 kΩ przy 1 kHz dla powierzchni styku 1 i 2.
<img alt="Wykresy odpowiedzi częstotliwościowej; amplituda względem częstotliwości dla dwukanałowej analizy danych." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66744/66744fig04.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 4"> 
Rycina 4: Impedancja. Wykres modułu Bode przedstawiający wartość impedancji w omach (Ω) przy ~ 1 kHz dla reprezentatywnej, specjalnie wykonanej elektrody epimysjalnej. Kanały 1 i 2 odnoszą się odpowiednio do powierzchni styku 1 i 2. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/66744fig04large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
In vivo wydajność (Wideo uzupełniające S1) 
Wytworzona na zamówienie elektroda skutecznie zarejestrowała fizjologiczne wahania aktywności EMG mięśnia VL indukowane podczas różnych warunków chodzenia na bieżni. Warto zauważyć, że średnia szczytowa aktywność EMG była istotnie niższa podczas chodzenia pod górę (0,008 ± 0,005 mV) niż pod górę (0,031 ± 0,180 mV, p = 0,005), co jest zgodne z poprzednimi znaleziskami10. Ponadto test t- sparowany wykazał, że wartości szczytowej amplitudy EMG w 14. dniu (0,01 ± 0,007 mV) nie wykazywały istotnej różnicy w stosunku do wartości w 56. dniu (0,012 ± 0,007 mV, p &gt; 0,05), co potwierdza długoterminową niezawodność urządzenia (Rycina 5). Istotnie różne wartości wielkości EMG w tych samych warunkach rejestracji mogą wskazywać na uszkodzenie lub awarię elektrody.
<img alt="Wykres pudełkowy porównujący szczytową amplitudę EMG (mV) w T14 i T56; uwzględniono analizę statystyczną." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66744/66744fig05.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 5"> 
Rycina 5: Niezawodność elektrod in vivo. Wykres pudełkowy Tukeya szczytowej amplitudy EMG (mV) mięśnia obszernobocznego podczas marszu na bieżni z jednostajną prędkością (16 m/min) 14 dni (T14) i 56 dni (T56) po implantacji instrumentacji. Skróty: EMG = elektromiografia; ns = brak istotności statystycznej. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/66744fig05large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.</a>
Biokompatybilność 
Barwienie H&amp;E nie wykazało oznak stanu zapalnego w mięśniu kontrolnym (Rycina 6, panel lewy) w porównaniu z mięśniem z implantem (Rycina 6, panel prawy). Nie stwierdzono wyraźnych dowodów na infiltrację komórek odpornościowych, wewnątrzmięśniową akumulację jąder komórkowych, fibrogenesę i/lub fragmentację sarkolemmy w przekrojach pobranych z mięśnia kontrolnego lub mięśnia z implantem.
<img alt="Porównanie mikroskopowe tkanki mięśniowej; kontrolna vs. instrumentowana; struktura komórkowa; skala 100μm." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66744/66744fig06.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rysunek 6"> 
Rysunek 6: Biokompatybilność. Porównanie histologiczne kontrolnego (lewo) i instrumentowanego (prawo) mięśnia obszernego bocznego barwionego hematoksyliną i eozyną (40x). Paski skali = 100 µm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/66744fig06large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
Plik uzupełniający 1: Catch_tray.gcode. Szablon druku 3D tacy odbiorczej, zaprojektowanej jako część przyrządu do składania, służącej do przechwytywania złożonych folii z przyrządu do składania. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/Supplementary%20File%201.zip" target="_blank">Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.</a>
Plik uzupełniający 2: Cutting_jig.gcode. Szablon do druku 3D szablonu do wycinania, który zawiera równomiernie rozmieszczone szczeliny służące jako prowadnica do spójnego perforowania silikonowej podstawy. Szablon do wycinania jest skonfigurowany do umieszczenia dwudziestu folii w celu utworzenia dziesięciu bipolarnych elektrod epimysjalnych. Obecnie używamy jednak szablonu do wycinania w celu wytworzenia partii sześciu elektrod bipolarnych, ponieważ sugerujemy pozostawienie odstępu między elektrodami. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/Supplementary%20File%202.zip" target="_blank">Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.</a>
Plik uzupełniający 3: Folding_jig.gcode. Szablon do druku 3D przyrządu do zginania, który umożliwia łatwiejsze zginanie folii platynowo-irydowych w celu uzyskania pożądanego kształtu litery U. W razie potrzeby zginanie folii można przeprowadzić również ręcznie. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/Supplementary%20File%203.zip" target="_blank">Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.</a>
Wideo uzupełniające S1: Badania in vivo. Sygnały EMG mięśnia VL podczas chodzenia po nachyleniu (-16°) na bieżni z napędem elektrycznym z prędkością 16m/min przy użyciu wykonanej na zamówienie elektrody EMG epimysjalnej. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66744/Supplemental_Video.zip" target="_blank">Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.</a>

Naszym celem było dostarczenie zaktualizowanego, łatwego do zrozumienia przewodnika na temat produkcji i testowania elektrod do elektromiografii epimysalnej. W tym celu udostępniamy instrukcje dotyczące pozyskiwania materiałów oraz szczegółowy przewodnik po procesie produkcji i testowania.

Opracowanie taniej elektrody do elektromiografii epimysjalnej: uproszczony przepływ pracy przy produkcji i testowaniu

Electromyography (EMG) is a valuable diagnostic tool for detecting neuromuscular abnormalities. Implantable epimysial electrodes are commonly used to ...

Staramy się zrozumieć nerwowo-mięśniowe i elektryczne fizjologiczne konsekwencje uszkodzenia ACL za pomocą przedklinicznego modelu gryzoni. Nasze obecne eksperymenty wykorzystują wszczepialne epimysjalne elektrody EMG, aby zbadać, w jaki sposób nieinwazyjne uszkodzenie ACL zmienia aktywację mięśnia czworogłowego. Chociaż istnieją podstawowe zasoby szczegółowo opisujące kwestie związane z wytwarzaniem i testowaniem elektrod, naszym celem jest dostarczenie zaktualizowanego, łatwego do zrozumienia przewodnika po wytwarzaniu i testowaniu elektrod epimysjalnych dla nowoczesnego laboratorium elektrofizjologii.Naszym celem było usprawnienie procesu wytwarzania i testowania epimysial EMG, ułatwiając szersze zastosowanie elektrod epimysial w postępie badań nerwowo-mięśniowych. Na początek użyj taśmy, aby zabezpieczyć silikonową podstawę na przyrządzie do cięcia. Perforuj silikon za pomocą prowadnic przyrządów tnących i noża X-ACTO do umieszczania folii kontaktowych.Za pomocą składanego przyrządu zegnij biokompatybilne, wstępnie pocięte folie kontaktowe z platyny lub radu w kształt litery U. Włóż folie w perforowane szczeliny w silikonowej podstawie, aby skonstruować powierzchnie styku elektrody, zapewniając odpowiednie odstępy między elektrodami. Umieść kawałek taśmy chirurgicznej na powierzchniach kontaktowych, aby utrzymać folie na miejscu.Usuń silikonową podstawę z przyrządu tnącego. Odwróć silikonową podstawę, aby odsłonić ramiona foliowe w kształcie litery U. Przytrzymaj jedno ramię każdej folii w kształcie litery U równo z silikonową podstawą.Przytnij drut ze stali nierdzewnej pokrytej perfluoroalkoksy na żądaną długość. Za pomocą zapalniczki oddenuuj jeden koniec drutu. Umieść obnażony koniec drutu po wewnętrznej stronie rozłożonego ramienia folii i zspawaj go za pomocą mikrospawarki TIG.Aby przetestować połączenie folii drucianej, napnij drut ze stali nierdzewnej. Jeśli połączenie się utrzyma, złóż ramię foliowe w dół, zrównaj się z silikonową podstawą i usuń taśmę obramowującą arkusz silikonowy. Następnie wymieszaj biokompatybilny płynny silikon z toluenem, aż do uzyskania pożądanej rozcieńczalszej lub przypominającej syrop konsystencji.Upuść mieszaninę za pomocą strzykawki z końcówką w rozmiarze 18 i nałóż ją na tył spawanych elektrod, aby ją uszczelnić. Po 72 godzinach za pomocą nożyczek pokrój silikonową podstawę na pojedyncze elektrody. Po wyprodukowaniu elektrody przymocuj każdy przewód ołowiany elektrody do kanału na płytce interfejsu elektrody.Podłącz standardową elektrodę przemysłową do tej samej płyty w celu porównania. Teraz podłącz płytkę interfejsu elektrody do platformy akwizycji danych za pomocą systemu magnetycznych na uwięzi. Usuń jeden koniec drutu ze stali nierdzewnej pokrytego perfluoroalkoksylem i przyspawaj go punktowo do źródła uziemienia.Przypnij przewód uziemiający do wyznaczonej pozycji uziemienia na płycie. W szklanej zlewce o pojemności 250 mililitrów dodaj 180 mililitrów 0,9% sterylnej soli fizjologicznej. Zanurz zarówno wykonane na zamówienie, jak i standardowe elektrody epimysjalne w kąpieli solankowej i zabezpiecz je w stabilnej pozycji.Następnie umieść źródło uziemienia w kąpieli solankowej i zabezpiecz jego pozycję. Zanurz dwie stymulujące elektrody igłowe w kąpieli solankowej i podłącz je do generatora sygnału. W generatorze sygnału ustaw napięcie na 0,1 wolta, a częstotliwość na pięć herców.Dostarczaj powtarzające się przebiegi do kąpieli solankowej, aby porównać zarejestrowane sygnały między elektrodami wyprodukowanymi na zamówienie a standardowymi elektrodami przemysłowymi. Oceniaj wydajność nieformalnie i wizualnie w czasie rzeczywistym, aby ocenić zmienność sygnału między elektrodami. Korelacje wewnątrzklasowe wykazały wysoki poziom zgodności między elektrodami wytwarzanymi na zamówienie a standardowymi elektrodami przemysłowymi we wszystkich kształtach fal.Kształty fal sinusoidalnych wykazały korelację wewnątrzklasową 0,993, kształty fali prostokątnej 0,995, a formy fal trójkątnych 0,958. Wykresy Blanda-Altmana wykazały również wysoki stopień zgodności sygnału między elektrodami. Podobnie, korelacje Pearsona wykazały silne dodatnie korelacje między elektrodami produkowanymi na zamówienie a standardowymi elektrodami przemysłowymi.

development-low-cost-epimysial-electromyography-electrode-simplified

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neuronauka

Niniejszy protokół opisuje sposób przygotowania elektrod z włókna węglowego. Elektrody te są następnie wykorzystywane do detekcji uwalniania katecholamin z pęcherzyków za pomocą amperometrii włóknem węglowym.

Wytwarzanie elektrod amperometrycznych

Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje konstrukcję multipleksowego czujnika opartego na mikroiigłach. Urządzenie to jest opracowywane w celu prowadzenia pobierania próbek in situ oraz analizy elektrochemicznej wielu analitów w sposób szybki i selektywny. Przewidujemy zastosowanie tych czujników opartych na mikroigłach w medycynie klinicznej oraz badaniach biomedycznych.

Czujnik oparty na pustych mikroiğłach do multipleksowego transdermalanego detekcji elektrochemicznej

Mikrourządzenie o wysokim potencjale przepustowości jest używane do demonstracji trójwymiarowej (3D) dielektroforezy (DEP) z wykorzystaniem nowych materiałów. Papier z nanopłytek grafenu i taśma dwustronna były na przemian układane w stosy; Wykonano mikrostudnię o średnicy 700 μm w kierunku poprzecznym do warstw. W mikrostudzience wykazano zachowanie DEP kulek polistyrenowych.

Opracowanie urządzenia dielektroforetycznego do elektrod grafenowych 3D

Ten artykuł zawiera szczegółowy opis procesu produkcji płaskiej elektrody nerwowej o wysokiej gęstości kontaktu (FINE). Elektroda ta jest zoptymalizowana pod kątem selektywnego rejestrowania i stymulowania aktywności neuronalnej w nerwach obwodowych.

Wytwarzanie elektrod nerwowych o płaskim interfejsie o dużej gęstości kontaktowej do zastosowań związanych z rejestracją i stymulacją

Instrukcje dotyczące taniego konstruowania i chirurgicznego wszczepiania myszom przewlekłego przezczaszkowego montażu elektroencefalograficznego o dużej gęstości są dostarczone. Opisano również techniki nagrywania, ekstrakcji i przetwarzania sygnału.

Akwizycja elektroencefalograficzna o dużej gęstości w modelu gryzoni przy użyciu tanich zasobów typu open source

Ten protokół opisuje strategię produkcji opartą na rozwiązaniach dla wysokowydajnych, elastycznych, przezroczystych elektrod z w pełni wbudowaną, grubą metalową siatką. Elastyczne przezroczyste elektrody wytwarzane w tym procesie wykazują jedne z najwyższych zgłoszonych parametrów, w tym bardzo niską rezystancję arkusza, wysoką przepuszczalność optyczną, stabilność mechaniczną przy zginaniu, silną przyczepność podłoża, gładkość powierzchni i stabilność środowiskową.

Skalowalna strategia produkcji oparta na roztworze dla wysokowydajnych, elastycznych i przezroczystych elektrod z wbudowaną metalową siatką

Metoda wytwarzania cienkich elektrod międzypalcowych (szczelina i szerokość: 20 μm) na końcu igły podskórnej (średnica: 720 μm) jest demonstrowana przy użyciu powłoki natryskowej i elastycznej folii fotomaski w procesie fotolitografii.

Wytwarzanie cienkich elektrod na końcówce igły podskórnej przy użyciu powłoki Photoresist Spray Coating i elastycznej fotomaski do zastosowań biomedycznych

Tutaj opisujemy metodologię produkcji konfigurowalnych układów elektrod z włókna węglowego do nagrywania in vivo w nerwach i mózgu.

Zestaw narzędzi typu open source: laboratoryjny zestaw mikroelektrod z włókna węglowego do nagrywania nerwów

Dwie najnowsze technologie - tatuaż i tekstylia - wykazały obiecujące wyniki w zakresie czucia skóry. W tym miejscu przedstawiamy metody wytwarzania i oceny elektrod do tatuażu i elektrod tekstylnych do elektrofizjologicznego wykrywania skóry. Te interfejsy elektroniczne wykonane z przewodzących polimerów przewyższają istniejące standardy pod względem komfortu i czułości.

Dopasowane elektrody do noszenia: od produkcji do oceny elektrofizjologicznej

Przedstawiono protokół instalacji i przygotowania elektrod domięśniowych, wraz z montowanym na zwierzętach, zminiaturyzowanym urządzeniem pomiarowym do analizy elektromiografii (EMG) w badaniach lokomocji. System ten umożliwia bezprzewodową transmisję danych EMG w czasie rzeczywistym w celu zbadania regeneracji lokomocji u szczurów po udarze.

Przenośny system pomiarowy elektromiograficzny dla małych zwierząt w czasie rzeczywistym

Poznaj uproszczoną metodę produkcji i testowania elektrod epimysjalnych EMG do badań elektrofizjologicznych z wykorzystaniem modelu gryzoni. Technika ta umożliwia badanie aktywacji mięśniowej po urazie ACL.

Opracowanie taniej elektrody do elektromiografii epimysjalnej: uproszczony przepływ pracy przy produkcji i testowaniu

Przeglądaj więcej filmów