28 czerwca 2024
Ta metoda opisuje protokół immunofluorescencji i proces kwantyfikacji do oceny dystrybucji białek z różnymi wzorcami organizacji jądra w ludzkich limfocytach T. Protokół ten zapewnia wskazówki krok po kroku, począwszy od przygotowania próbki, a skończywszy na wykonaniu półautomatycznej analizy na Fidżi, a kończąc na obsłudze danych przez notebook Google Colab.
Nasze główne zainteresowania badawcze to mechanizm epigenetyczny, który reguluje plastyczność komórkową człowieka i adaptację do środowiska. Obecnie skupiam się na badaniu, w jaki sposób zmiany w organizacji chromatyny w kondensatach jądrowych wywołują patologiczne stany komórkowe. Uważam, że badanie biofizycznych właściwości organizacji chromatyny otwiera nową dziedzinę i oferuje unikalne możliwości rozwoju nowatorskich podejść terapeutycznych.
Testy immunofluorescencyjne są cenne dla badań przesiewowych organizacji białek w kondensatach jądrowych. Jednak analiza obrazu może być trudna ze względu na problemy z doborem parametrów i dużą ilość danych podczas badania wielu warunków. Oferujemy kompleksową metodę wraz ze wskazówkami, jak używać odpowiednich parametrów i zautomatyzowanego potoku analizy, aby usprawnić proces.
Nasz protokół prowadzi użytkowników od przygotowania próbki do analizy danych. Zapewniamy półautomatyczny projekt rurociągu dla osób o ograniczonej wiedzy specjalistycznej w zakresie obliczeń i analizy obrazu. Przepływ pracy jest dostępny dla wszystkich bez żadnych kosztów, wykorzystując szeroko stosowane oprogramowanie typu open source, takie jak Imager w Pythonie i bezpłatną usługę w chmurze Google Colab.
Aby rozpocząć, pobierz i zainstaluj najnowszą wersję Fiji na komputerze. Po pobraniu convert_to_TIFF. py, przeciągnij i upuść skrypt na Fidżi i uruchom kod.
Przejdź do ścieżki, w której jest przechowywany eksperyment. Przekonwertowane pliki TIFF są tworzone w tym samym folderze eksperymentalnym. Kliknij Wtyczki, a następnie 3D Suite i otwórz Opcje Menedżera 3D.
W oknie Menedżer 3D zaznacz pola wyboru odpowiadające Objętości w jednostce, Średnia wartość szarości, Obwiednia w pikselach, Odchylenie standardowe Wartość szarości, Środek ciężkości w pikselu i Środek ciężkości w jednostce. Zaznacz opcje Wyklucz obiekty na krawędziach XY i Wyklucz obiekty na krawędziach Z.Następnie kliknij przycisk OK. Otwórz obraz fluorescencyjny ludzkich limfocytów T. Kliknij Control Shift D, aby zduplikować kanał białkowy, w tym stos.
Zaznacz pole wyboru hyperstack. Określ odpowiedni numer kanału w polu kanałów i odpowiednio zmień jego nazwę. Aby uruchomić rejestrator makr Fidżi, przejdź do Wtyczki, a następnie Makra i wybierz Nagraj.
Następnie, aby otworzyć wtyczkę FindFoci, kolejno kliknij Wtyczki, GDSC, FindFoci i FindFoci GUI. Z menu rozwijanego obrazu wybierz obraz, który ma zostać przeanalizowany. Ustaw Rozmycie gaussowskie na 1,5, metodę tła na odchylenie standardowe powyżej średniej, parametr tła na dziewięć, metodę wyszukiwania na ułamek szczytowego tła, parametr wyszukiwania na 0,7, metodę szczytową na względną nad tłem, parametr pik na 0,2 i minimalny rozmiar na pięć.
Ustaw maksymalne wartości szczytowe na wysokie liczby, aby uwzględnić wszystkie ogniska na obrazie. Aby poprawić identyfikację ognisk, dostosuj rozmycie gaussowskie blisko średnicy ognisk i zwiększ wartości parametru tła, aby nałożyć bardziej rygorystyczne progi. Następnie zmniejsz wartości parametru wyszukiwania, aby uwzględnić obszary bardziej oddalone od piku fluorescencji i zmniejsz wartości parametru piku dla separacji pików.
Uruchom FindFoci i skopiuj ciąg, który pojawi się w oknie rejestratora. Ciąg zawiera wybrane parametry, z wyłączeniem cudzysłowów. Po pobraniu nuclear_prod_q.
py, przeciągnij i upuść skrypt na Fidżi i kliknij Uruchom, aby wykonać kod. W kanale jądra wprowadź numer odpowiadający kanałowi dapE. W przypadku rozmycia gaussowskiego jądra wprowadź wartość sigma potrzebną do rozmycia obrazu na potrzeby segmentacji.
Następnie wprowadź liczbę odpowiadającą kanałowi barwienia będącego przedmiotem zainteresowania dla kanału białkowego. W parametrze FindFoci wklej ciąg reprezentujący zapis makra wybranych parametrów. Zaznacz pole wyboru wizualizacji i kliknij przycisk Przeglądaj, aby wybrać katalog, w którym przechowywane są obrazy.
Po skompilowaniu wszystkich pól kliknij przycisk OK, aby kontynuować wykonywanie. Z listy ROI w oknie Menedżer ROI 3D wybierz kanał jądra i kliknij opcję Live ROI to On.Wybierz ROI należący do tego samego jądra i naciśnij przycisk Merge. A w przypadku niepożądanych jąder naciśnij Delete.
Ponownie kliknij opcję Aktywny zwrot z inwestycji na Wł., zaznacz wszystko i potwierdź, że wszystkie jądra są poprawnie podzielone na segmenty. W folderze kwantyfikacji otwórz plik TXT z zapisami parametrów użytych do analizy. Otwórz Google Colab w przeglądarce.
Następnie z pliku wybierz pozycję Otwórz notes i przekaż skrypt final_nuclear_protein_metrics. ipymb. Prześlij wszystkie foldery zawierające pliki csv z każdego pola obrazu do preferowanego folderu na Dysku Google.
W notesie wskaż ścieżkę do folderu, w którym są przechowywane podfoldery wyników, i uruchom wszystkie komórki. Po zakończeniu kompilacji kodu otwórz końcowy plik arkusza kalkulacyjnego zawierający wszystkie skompilowane dane.
Niniejsza metoda opisuje protokół immunofluorescencji oraz potok kwantyfikacji służący do oceny dystrybucji białek o różnych wzorcach organizacji jądrowej w ludzkich limfocytach T. Protokół zawiera instrukcje krok po kroku, począwszy od przygotowania próbek, poprzez przeprowadzenie półautomatycznej analizy w programie Fiji, aż po przetwarzanie danych za pomocą notatnika Google Colab.
Ilościowa analiza dynamiki ciałek jądrowych ma kluczowe znaczenie dla ograniczania ryzyka związanego z hipotezami na wczesnym etapie odkryć oraz wyjaśniania szlaków mechanistycznych w kontekście specyficznym dla danego typu komórek. Ten rurociąg analityczny umożliwia standaryzowaną i powtarzalną kwantyfikację immunofluorescencji w różnych typach komórek, co zwiększa pewność predykcyjną w walidacji celów oraz genomice funkcjonalnej. Dzięki usprawnieniu zarządzania danymi i analizy, rozwiązanie to wspomaga podejmowanie decyzji dotyczących portfolio w kluczowych punktach zwrotnych procesu odkrywania.
Ten proces integruje etapy od wczesnego odkrywania po opracowanie testów, umożliwiając rzetelną weryfikację hipotez oraz uzyskanie ilościowych wyników niezbędnych do identyfikacji wiodących związków i badań przedklinicznych.