Name: Natychmiastowe częściowe usunięcie kompleksów cumulus-oocyty: wyrafinowane podejście do szybkiej obserwacji zapłodnienia in vitro (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-10-18T13:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 6 s
Description: Poznaj zoptymalizowaną metodę częściowego usuwania kompleksów cumulus-oocyt bezpośrednio po pobraniu komórek jajowych w procedurach IVF. To podejście zwiększa efektywność obserwacji zapłodnienia przy jednoczesnym zminimalizowaniu ekspozycji na czynniki środowiskowe.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy wyrażają swoją wdzięczność personelowi Departamentu Medycyny Rozrodu w Szpitalu Ludowym Meizhou w Guangdong, Chiny, za ich aktywny udział w tym badaniu.

Wszystkie procedury zostały przeprowadzone zgodnie ze standardowymi procedurami operacyjnymi Wydziału Medycyny Reprodukcyjnej w Szpitalu Ludowym w Meizhou i podlegały przeglądowi przez Komisję Etyki tego samego departamentu. Uzyskano pisemną świadomą zgodę każdej z uczestniczących par. W badaniu wzięły udział uczestniczki przechodzące pierwszy cykl zapłodnienia in vitro z transferem zarodków w stadium rozszczepienia lub blastocysty, a także kobiety w wieku od 20 do 45 lat. Kryteria wykluczenia obejmowały wykorzystanie komórek jajowych/nasienia dawcy oraz szczególne warunki, takie jak wrodzone lub wtórne nieprawidłowości macicy (np. macica przegrodowa, macica jednorożca, didelphys macicy), adenomioza, mięśniaki podśluzówkowe macicy lub grubość endometrium poniżej 7 mm w dniu transferu zarodka. Łącznie 115 pacjentów włączonych między grudniem 2023 r. a lutym 2024 r. podzielono na dwie grupy w zależności od tego, czy wykonano natychmiastowe częściowe usunięcie OCCC.
1. Przygotowanie przed pobraniem oocytów
<ol>
	<li>Umieścić szalki do pobierania komórek jajowych (tabela materiałów) w inkubatorze w temperaturze 37 °C na noc.</li>
	<li>Inkubować przez noc 12 ml pożywki manipulacyjnej z pęcherzykami (tabela materiałów) w probówkach okrągłodennych o pojemności 14 ml w temperaturze 37 °C. Przenieś probówki do wstępnie ogrzanego stojaka na probówki 30 minut przed pobraniem oocytów.</li>
	<li>Przygotować pożywkę manipulacyjną do pęcherzyków: Dodać 9 ml pożywki do manipulowania pęcherzykami do probówki okrągłodennej o pojemności 14 ml (tabela materiałów) i inkubować przez noc w temperaturze 37 °C. W dniu pobrania komórek jajowych przenieść 4,5 ml pożywki do wstępnie inkubowanego naczynia do pobierania komórek jajowych (tabela materiałów) pokrytego 2 ml 100% oleju parafinowego.</li>
	<li>Przygotować roztwór płuczący OCCC: Dodać 4,5 ml pożywki do nawożenia (tabela materiałów) do naczynia do pobierania oocytów i inkubować w temperaturze 37 °C przez noc.</li>
	<li>Przygotować pożywkę nawozową: Dodać 1 ml pożywki nawozowej do 6 cm naczynia pokrytego 100% olejem parafinowym (tabela materiałów) i inkubować w temperaturze 37 °C przez noc.</li>
	<li>Przygotuj szklane pipety Pasteura (Tabela Materiałów): Delikatnie stępić i zaokrąglić końcówki, paląc je na lampie alkoholowej przez około 5 sekund (<silna klasa="xfig">Rysunek 1). Przymocuj głowicę ssącą do końcówki pipet Pasteura, upewniając się, że może dotykać dna naczynia bez zarysowania. Opłucz szklane pipety Pasteura i 10 cm szalki pożywką do manipulowania mieszkami włosowymi.</li>
</ol>
2. Pobranie oocytów i natychmiastowe częściowe usunięcie OCCC
UWAGA: Użyj stereomikroskopu podczas procedur izolacji oocytów i usuwania OCCC. W celu uzyskania optymalnych rezultatów wszystkie zabiegi powinny być wykonywane na stole grzewczym z regulacją temperatury (37 °C), a cały sprzęt powinien być wstępnie podgrzany na 30 minut przed pobraniem komórek jajowych.
<ol>
	<li>Pobrać przedowulacyjny płyn pęcherzykowy podczas pobierania oocytów zgodnie z zaleceniami ESHRE8.
	<ol>
		<li>Krótko mówiąc, użyj igły 17 G, aby pobrać oocyty pod kontrolą ultrasonograficzną przezpochwową. Odpowiednie podciśnienie waha się w zakresie 120-140 mmHg.</li>
		<li>Wlej płyn pęcherzykowy zebrany w 14 ml probówce okrągłodennej do 10-centymetrowego naczynia (tabela materiałów), utrzymując głębokość płynu mniejszą niż 0,5 cm. Umieść naczynie na platformie o stałej temperaturze (37 °C).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Obserwuj OCCC pod mikroskopem stereoskopowym, aby potwierdzić obecność oocytów i ocenić ich dojrzałość. 
	UWAGA: Dojrzałość OOOC ocenia się na podstawie morfologii komórek wzgórka i widoczności niektórych struktur oocytów9.</li>
	<li>Odessać OCCC za pomocą pipety Pasteura. Przechyl 10 cm szalkę o około 15 stopni i rozłóż wszystkie duże OCCC. Unikać zasysania oocytu i otaczających komórek ziarnistych w promieniu 2500 μm. Odetnij nadmiar komórek ziarnistych za pomocą pipety Pasteura wzdłuż osi podłużnej (<silna klasa="xfig">Rysunek 2). Szczegółowe kroki są następujące:
	<ol>
		<li>Obserwuj gołym okiem, aby zobaczyć, czy w płynie pęcherzykowym znajduje się szarawa, półprzezroczysta masa śluzowata. Jeśli nie zostanie znaleziony, szybko poszukaj szarawej, półprzezroczystej masy śluzowej, obracając zgodnie z ruchem wskazówek zegara od zewnątrz do wewnątrz pod mikroskopem stereoskopowym, OCCC.</li>
		<li>Potwierdź, czy w OCCC znajdują się oocyty i dokonaj wstępnej oceny dojrzałości oocytów.</li>
		<li>Następnie należy wstępnie przygotować silikonową pipetę aspiracyjną z okrągłą, polerowaną płomieniowo pipetą Pasteura, odessać OCCC i jednocześnie delikatnie podnieść naczynie hodowlane w pozycji godziny 9-10 lewym palcem serdecznym ręki trzymającej 10 cm szalkę, przechylając szalkę hodowlaną lekko o około 15° w lewo (umieszczenie palca serdecznego pod naczyniem to w przybliżeniu wymagany kąt).</li>
		<li>Wypluwając zasysany OCCC w pozycji godziny 11 naczynia, delikatnie wydłuż go poziomo w prawo. Następnie obserwuj wielkość komórek ziarnistych wokół rozszerzonego OCCC. Następnie, w odpowiednim położeniu poziomo wydłużonego OCCC, za pomocą pipety Pasteura wykonaj szybkie i delikatne nacięcie w dół na nadmiarze komórek ziarnistych od góry do dołu.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przenieś pocięty OCCC do naczynia zbiorczego zawierającego roztwór płuczący OCCC. Wlej pozostały płyn pęcherzykowy do sterylnego pojemnika na próbkę (tabela materiałów). Powtarzaj te kroki, aż wszystkie kompleksy zostaną zebrane.</li>
</ol>
3. Przygotowanie nasienia i inseminacja in vitro
<ol>
	<li>Próbki nasienia należy pobrać przez wytrysk rano w dniu pobrania komórek jajowych. Oceń koncentrację, ruchliwość i morfologię plemników pod mikroskopem świetlnym zgodnie z kryteriami Światowej Organizacji Zdrowia (WHO, 2010) 10. Następnie przenieś osad nasienia do nowej probówki wirówkowej i umyj go dwukrotnie w pożywce do zapłodnienia11. Inkubować je w temperaturze 6% CO2 i temperaturze 37 °C do momentu, gdy będą potrzebne.</li>
	<li>Inseminować OCCC ruchliwymi plemnikami 1 x 105 do 3 x 105 na mililitr w pojedynczej kropli około 2-3 godziny po pobraniu do naczynia do zapłodnienia (tabela materiałów). Do naczynia nawozowego dodać 6-8 OCCC i 1 ml pożywki nawozowej. 
	UWAGA: Po umyciu lepkiego OCCC przenosi się je do naczynia do nawożenia za pomocą pipety Pasteura. Uwalniaj po jednym OCCC na raz, delikatnie podnosząc pipetę z powierzchni cieczy przed wypuszczeniem następnej, upewniając się, że każdy OCCC jest umieszczony indywidualnie w naczyniu, aby zapobiec grupowaniu.</li>
</ol>
4. Usuwanie komórek kłębka
<ol>
	<li>W przypadku nawożenia krótkoterminowego postępuj zgodnie z instrukcjami opisanymi poniżej.
	<ol>
		<li>Współinkubować OCCC z plemnikami przez 4-6 godzin. Po inkubacji mechanicznie usuń wzgórki otaczające oocyty.</li>
		<li>Odessać oocyty za pomocą pipety o średnicy wewnętrznej nieco mniejszej niż oocyty, aby zapewnić całkowite usunięcie komórek wzgórka.</li>
		<li>Potwierdź zapłodnienie, obserwując obecność dwóch ciał polarnych. Oocyty wykazujące drugie ciało polarne uważa się za zapłodnione.</li>
		<li>Zidentyfikuj te przypadki, które nie pokazują drugiego ciała polarnego jako niepowodzenia zapłodnienia, co wymaga ratunku ICSI.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>W przypadku regularnego zapłodnienia, po 18-20 godzinach wspólnej inkubacji, należy usunąć komórki wzgórka za pomocą pipet do oceny zapłodnienia.</li>
</ol>
5. Hodowla zarodków
<ol>
	<li>Hodowla i monitorowanie zapłodnionych oocytów przez 3-5 dni po pobraniu oocytów. Oceń zapłodnienie po 20 godzinach od inseminacji, aby określić liczbę przedjądrzy. Następnie należy wyhodować każdą zygotę indywidualnie w pożywce kropelkowej i przenieść zarodki po zapłodnieniu do podłoża do rozszczepienia. 
	UWAGA: Idealny zarodek do trzeciego dnia powinien składać się z sześciu lub więcej blastomerów o równej wielkości i wykazywać współczynnik fragmentacji mniejszy lub równy 10%12.</li>
	<li>Decyzja o kontynuowaniu posiewu blastocyst zależy od preferencji pacjenta i konkretnych okoliczności, takich jak ilość i jakość zarodków uzyskanych w 3 dobie. Przenieś zarodki z 3 dnia do pożywki blastocysty i oceń w 5 dniu. Użyj systemu punktacji Gardnera do oceny blastocyst, przy czym blastocysty wysokiej jakości mają wyniki ≥ 4 BB13.</li>
</ol>
6. Pomiary wyników i analiza statystyczna
<ol>
	<li>Podać dane ciągłe jako średnią ± odchylenie standardowe i wyrazić dane porządkowe jako proporcje. Przeprowadź analizę statystyczną za pomocą testu t-Studenta lub testu chi-kwadrat w odpowiednim oprogramowaniu do analizy danych (tutaj IBM SPSS Statistics). Za istotny statystycznie należy uznać poziom istotności P < 0,05.</li>
</ol>

Improving IVF Outcomes with Partial Granulosa Cell Removal Post-Retrieval

<ol><li>Chen, C., Kattera, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rescue+ICSI+of+oocytes+that+failed+to+extrude+the+second+polar+body+6+h+post-insemination+in+conventional+IVF%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Rescue ICSI of oocytes that failed to extrude the second polar body 6 h post-insemination in conventional IVF.</a> Hum Reprod. 18 (10), 2118-2121 (2003).</li>
<li>Barlow, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fertilization+failure+in+IVF%3A+why+and+what+next%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Fertilization failure in IVF: why and what next.</a> Hum Reprod. 5 (4), 451-456 (1990).</li>
<li>Kuczyński, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rescue+ICSI+of+unfertilized+oocytes+after+IVF%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Rescue ICSI of unfertilized oocytes after IVF.</a> Hum Reprod. 17 (9), 2423-2427 (2002).</li>
<li>He, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+early+cumulus+cells+removal+and+early+rescue+ICSI+on+pregnancy+outcomes+in+high-risk+patients+of+fertilization+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Gynecol+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Effect of early cumulus cells removal and early rescue ICSI on pregnancy outcomes in high-risk patients of fertilization failure.</a> Gynecol Endocrinol. 34 (8), 689-693 (2018).</li>
<li>Turathum, B., Gao, E. M., Chian, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+function+of+cumulus+cells+in+oocyte+growth+and+maturation+and+in+subsequent+ovulation+and+fertilization%5BTitle%5D)+AND+%22Cells%22%5BJournal%5D)">The function of cumulus cells in oocyte growth and maturation and in subsequent ovulation and fertilization.</a> Cells. 10 (9), 2292(2021).</li>
<li>Bárcena, P., Rodríguez, M., Obradors, A., Vernaeve, V., Vassena, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Should+we+worry+about+the+clock%3F+Relationship+between+time+to+ICSI+and+reproductive+outcomes+in+cycles+with+fresh+and+vitrified+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Should we worry about the clock? Relationship between time to ICSI and reproductive outcomes in cycles with fresh and vitrified oocytes.</a> Hum Reprod. 31 (6), 1182-1191 (2016).</li>
<li>Telfer, E. E., Grosbois, J., Odey, Y. L., Rosario, R., Anderson, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+a+good+egg%3A+human+oocyte+health%2C+aging%2C+and+in+vitro+development%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Making a good egg: human oocyte health, aging, and in vitro development.</a> Physiol Rev. 103 (4), 2623-2677 (2023).</li>
<li>D'Angelo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+for+good+practice+in+ultrasound%3A+oocyte+pick+up%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod+Open%22%5BJournal%5D)">Recommendations for good practice in ultrasound: oocyte pick up.</a> Hum Reprod Open. 2019 (4), hoz025(2019).</li>
<li>Hu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptomic+profiles+reveal+the+characteristics+of+oocytes+and+cumulus+cells+at+GV%2C+MI%2C+and+MII+in+follicles+before+ovulation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ovarian+Res%22%5BJournal%5D)">Transcriptomic profiles reveal the characteristics of oocytes and cumulus cells at GV, MI, and MII in follicles before ovulation.</a> J Ovarian Res. 16 (1), 225(2023).</li>
<li>Lu, W. H., Gu, Y. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+semen+analysis%3A+a+Chinese+perspective+on+the+fifth+edition+of+the+WHO+laboratory+manual+for+the+examination+and+processing+of+human+semen%5BTitle%5D)+AND+%22Asian+J+Androl%22%5BJournal%5D)">Insights into semen analysis: a Chinese perspective on the fifth edition of the WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen.</a> Asian J Androl. 12 (4), 605-606 (2010).</li>
<li>Delos Santos, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revised+guidelines+for+good+practice+in+IVF+laboratories+%282015%29%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">Revised guidelines for good practice in IVF laboratories (2015).</a> Hum Reprod. 31 (2015), 685-686 (2016).</li>
<li>Nagy, Z. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pronuclear+morphology+evaluation+with+subsequent+evaluation+of+embryo+morphology+significantly+increases+implantation+rates%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil+Steril%22%5BJournal%5D)">Pronuclear morphology evaluation with subsequent evaluation of embryo morphology significantly increases implantation rates.</a> Fertil Steril. 80 (1), 67-74 (2003).</li>
<li>Gardner, D. K., Lane, M., Stevens, J., Schlenker, T., Schoolcraft, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprint+of%3A+Blastocyst+score+affects+implantation+and+pregnancy+outcome%3A+towards+a+single+blastocyst+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil+Steril%22%5BJournal%5D)">Reprint of: Blastocyst score affects implantation and pregnancy outcome: towards a single blastocyst transfer.</a> Fertil Steril. 112 (4), Suppl1 e81-e84 (2019).</li>
<li>Esfandiari, N., Claessens, E. A., Burjaq, H., Gotlieb, L., Casper, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ongoing+twin+pregnancy+after+rescue+intracytoplasmic+sperm+injection+of+unfertilized+abnormal+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil+Steril%22%5BJournal%5D)">Ongoing twin pregnancy after rescue intracytoplasmic sperm injection of unfertilized abnormal oocytes.</a> Fertil Steril. 90 (1), e5-e7 (2008).</li>
<li>Wetzels, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+co-culture+with+human+fibroblasts+on+human+embryo+development+in+vitro+and+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Reprod%22%5BJournal%5D)">The effects of co-culture with human fibroblasts on human embryo development in vitro and implantation.</a> Hum Reprod. 13 (5), 1325-1330 (1998).</li>
<li>Kattera, S., Chen, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short+coincubation+of+gametes+in+in+vitro+fertilization+improves+implantation+and+pregnancy+rates%3A+a+prospective%2C+randomized%2C+controlled+study%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil+Steril%22%5BJournal%5D)">Short coincubation of gametes in in vitro fertilization improves implantation and pregnancy rates: a prospective, randomized, controlled study.</a> Fertil Steril. 80 (4), 1017-1021 (2003).</li>
</ol>

Autorzy deklarują brak sprzecznych interesów.

Natychmiastowe częściowe usunięcie komórek ziarnistych może przyspieszyć wczesny proces rozpadu krótkotrwałego zapłodnienia, skrócić czas obserwacji drugiego ciała polarnego zarówno w przypadku zapłodnienia krótkoterminowego, jak i konwencjonalnego zapłodnienia in vitro i nie zagrozić późniejszemu rozwojowi zarodka. Obecnie laboratoria na całym świecie stosują różne strategie w celu złagodzenia zaburzeń zapłodnienia i niskich wskaźników sukcesu. Preferowana metoda polega na pobraniu komórek ziarnistych w celu obserwacji drugiego ciała polarnego 4-6 godzin po krótkotrwałym zapłodnieniu14. Wyzwaniem jest ścisła adhezja między oocytami a otaczającymi komórkami wzgórka, co utrudnia mechaniczne usunięcie za pomocą pipety. Natychmiastowe pobranie i wycięcie komórek jajowych może złagodzić ten problem poprzez zmniejszenie adhezji i objętości OCCC, a w konsekwencji skrócenie czasu obserwacji. Kluczowym krokiem w protokole jest natychmiastowe częściowe usunięcie OCCC po pobraniu komórek jajowych, co pomaga w rozluźnieniu pozostałych komórek wzgórka wokół oocytów, aby ułatwić wykrycie drugiego ciała polarnego, co ma kluczowe znaczenie dla oceny powodzenia zapłodnienia. Szybkie usunięcie znacznie skraca czas operacji bez uszczerbku dla szybkości rozszczepienia, optymalnego wskaźnika zarodków lub optymalnego wskaźnika blastocyst.
Sugerowane modyfikacje i rozwiązywanie problemów związanych z techniką cięcia są następujące: (i) Mocowanie igły jest uważane za niepotrzebne, ponieważ prowadziłoby to do wydłużenia czasu pozaustrojowego. W praktyce jest to wygodne podejście do cięcia. (ii) Skupienie się na OCCC zaleca się zachowanie 3-4 komórek ziarnistych z każdej strony, które pasują do średnicy oocytu. W przypadku dwustronnego OCCC obie strony muszą zostać odcięte; w przypadku jednostronnego OCCC przeciąć bok z OCCC. Można dążyć do symetrii, choć niekoniecznie idealnej. (iii) Aby zapobiec zwijaniu się mieszków włosowych i zakłócaniu stanu rozprowadzania, płyn mieszków włosowych na wierzchu naczynia powinien być wystarczająco cienki podczas cięcia, aby zapobiec unoszeniu się OCCC. (iv) Płyn pęcherzykowy często zawiera składniki krwi podczas pobierania komórek jajowych. Po pobraniu komórek jajowych należy niezwłocznie przenieść mieszki włosowe do naczynia do mycia, aby złagodzić wpływ zanieczyszczenia krwi i kontynuować mycie po pobraniu komórek jajowych.
Zatrzymanie komórek wzgórka po częściowym usunięciu zapewnia, że oocyty otrzymują substancje niezbędne do wczesnego rozwoju zarodka, takie jak czynniki wzrostu i aminokwasy, co sprzyja rozwojowi zarodka15. Wcześniejsze badania wykazały, że długotrwała kokultura może generować dużą ilość reaktywnych form tlenu (ROS), co prowadzi do stwardnienia zarodka przezroczystego i osłabienia potencjału zarodków. Natychmiastowe częściowe usunięcie komórek ziarnistych, przy jednoczesnym zachowaniu niezbędnych komórek wzgórka ziarnistego, zmniejsza ROS przez komórki ziarniste i zużycie energii w pożywkach hodowlanych16. Obecnie nie ma jednolitego konsensusu co do czasu i proporcji usuwania komórek ziarnistych do krótkotrwałego zapłodnienia w IVF. Dane uzyskane w tym badaniu sugerują, że natychmiastowe usunięcie wybranych oocytów do średnicy OCCC około 2500 μm nie utrudnia późniejszego rozwoju zarodka ani procesu obserwacji pod kątem krótkotrwałego i konwencjonalnego zapłodnienia in vitro.
Istotnym ograniczeniem tej techniki jest możliwość zmienności stopnia adhezji między oocytami a komórkami wzgórka, co może wpływać na spójność wyników. Ponadto, podczas gdy metoda natychmiastowego częściowego usunięcia skraca czas obserwacji, wymaga precyzyjnego wykonania, aby uniknąć uszkodzenia oocytów lub zagrozić późniejszemu rozwojowi zarodka. Potrzebne są dalsze eksperymenty, aby określić optymalną ilość pozostałego OCCC po ścięciu. Na przykład zbadanie, czy przechowywanie około 2000 μm OCCC i wstępne oznaczenie skali na szali do zbioru może poprawić jednolitą ocenę wielkości OCCC i zakresu cięcia.
Podsumowując, ta udoskonalona technika nie wykazuje znaczącego negatywnego wpływu na zapłodnienie lub rozwój zarodka, co czyni ją cenną metodą godną poparcia.

W dziedzinie zapłodnienia in vitro-transferu zarodków (IVF-ET), typowy wskaźnik zapłodnienia mieści się w zakresie od 60% do 80%1. Jednak około 4% do 16% przypadków napotyka albo całkowity brak nawożenia, albo niskie wskaźniki nawożenia, co stanowi wyzwanie w przewidywaniu2,3. Aby poprawić wyniki kliniczne ciąży i zmniejszyć liczbę przypadków całkowitego niezapłodnienia i niskiego zapłodnienia, wykorzystanie zapłodnienia krótkoterminowego w procedurach IVF rośnie4. Podejście to pociąga za sobą natychmiastowe usunięcie komórek ziarnistych w celu monitorowania ekstruzji drugiego ciała polarnego, oceny stanu zapłodnienia i potencjalnego przeprowadzenia naprawczej iniekcji plemnika docytoplazmatycznego (ICSI). Wiązanie między kompleksem komórek wzgórka jajowego (OCCC) a oocytem jest silniejsze podczas krótkotrwałego zapłodnienia w porównaniu z tradycyjnym zapłodnieniem nocnym, co zwiększa wyzwanie związane z usunięciem OCCC5. Czynniki takie jak nadmierna liczba oocytów, duże kompleksy OCCC lub zrosty między oocytami mogą prowadzić do wydłużenia czasu usuwania komórek ziarnistych podczas krótkotrwałego zapłodnienia, wydłużając w ten sposób okres, w którym jaja pozostają poza inkubatorem4. Aby zoptymalizować okres obserwacji zapłodnienia, opracowano zmodyfikowane podejście do pobierania komórek jajowych po pobraniu komórek jajowych, polegające na częściowym wycięciu komórek ziarnistych z oocytów ze znacznymi kompleksami OCCC. Technika ta pomaga w zachowaniu komórek ziarnistych otaczających oocyty, zachowując integralność wczesnej struktury oocytów6 i umożliwiając tym komórkom dalsze dostarczanie niezbędnych czynników do dojrzewania oocytów i późniejszego zapłodnienia-wiązanie zarodków7. 
W związku z tym, to badanie skupia się na pacjentkach poddawanych leczeniu IVF-ET w centrum medycyny reprodukcyjnej jako uczestnikach badania, mając na celu zbadanie wpływu metody natychmiastowego mechanicznego wycinania częściowej ziarnistości komórek na czas trwania procedur zarówno krótkoterminowego nawożenia, jak i monitorowania nawożenia nocnego, a także oceny wyników normalnego zapłodnienia i późnego etapu rozwoju. Badania te mają na celu dostarczenie cennych informacji na temat ulepszenia procedur laboratoryjnych na zarodkach w zapłodnieniu in vitro.

<table><tbody><tr><td>G-IVFT PLUS</td><td>Vitrolife</td><td>10136</td><td></td></tr><tr><td>OVOIL</td><td>Vitrolife</td><td>10029</td><td></td></tr><tr><td>G-MOPS PLUS</td><td>Vitrolife</td><td>10130</td> Falcon 3003 antena Corning 353003 <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Falcon 3001 rurka</td><td>Corning</td><td>353001</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 2001</td><td>Corning</td><td>352001</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 4013 kubek</td><td>Corning</td><td>354013</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 3037 miska</td><td>Corning</td><td>351058</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur pipeta</td><td>Darwin</td><td>D1150-5P</td><td></td></tr></tbody></table>

natychmiastowe częściowe usunięcie kompleksów cumulus-oocyty: wyrafinowane podejście do szybkiej obserwacji zapłodnienia in vitro

The Immediate Partial Removal of Cumulus-Oocyte Complexes: A Refined Approach for Rapid Observation of In Vitro Fertilization

Pomimo szybkiego postępu w klinicznych i laboratoryjnych technologiach zapłodnienia in vitro (IVF), znaczna część (10%-15%) pacjentów nadal doświadcza zaburzeń zapłodnienia, co prowadzi do niskich wskaźników zapłodnienia i produkcji niezdolnych do życia zarodków. Zapłodnienie krótkoterminowe polega na wczesnym usunięciu komórek ziarnistych w celu obserwacji ekstruzji drugiego ciała polarnego, co umożliwia ocenę nawożenia i wczesne środki zaradcze w celu rozwiązania problemu niskich wskaźników nawożenia i całkowitego niepowodzenia nawożenia. Jednak obserwacja krótkotrwałego zapłodnienia w in vitro jest utrudniona przez wyzwania, takie jak zbyt duże nieprzetworzone skupiska kompleksów wzgórek-oocyty i adhezja między komórkami jajowymi, konieczność skomplikowanych procedur zewnętrznych w celu usunięcia komórek ziarnistych oraz wydłużony czas obserwacji. Aby rozwiązać ten problem, w badaniu zaproponowano metodę natychmiastowego częściowego usunięcia komórek ziarnistych po pobraniu komórek jajowych. Takie podejście usprawnia kolejne etapy krótkotrwałego nawożenia i tradycyjnego monitorowania nawożenia, skraca czas potrzebny na ekstruzję oocytów, minimalizuje prawdopodobieństwo zewnętrznego wpływu środowiska na oocyty oraz zmniejsza ryzyko pominięcia krytycznego okna obserwacyjnego zapłodnienia. W związku z tym badanie dostarczyło nowych dowodów klinicznych mających na celu zwiększenie efektywności operacyjnej laboratoriów embrionalnych w zapłodnieniu in vitro.

W grupie poddanej procedurom krótkiej współinkubacji wykluczono pacjentki, które wymagały procedury ratunkowej. spośród 47 pacjentek poddanych krótkoterminowej inseminacji nie zaobserwowano istotnych różnic pod względem wieku pacjentek oraz liczby pobranych oocytów (Tabela 1). Natychmiastowe częściowe usunięcie OCCC doprowadziło do rozluźnienia pozostałego OCCC wokół oocytów (Rysunek 3), co ułatwiło wykrycie drugiego ciałka polarnego. Średni czas procedury był istotnie krótszy w grupie z częściowym usunięciem OCCC (4,42 ± 1,68 min vs. 9,29 ± 5,04 min, P &lt; 0,001) w porównaniu z grupą kontrolną, mimo braku istotnych różnic w odsetku podziałów, odsetku embrionów optymalnych oraz odsetku blastocyst optymalnych.
W innej kohorcie 68 pacjentek poddanych tradycyjnej zapłodnieniu in vitro (IVF), w której kontrolę zapłodnienia przeprowadzono 18-20 h po inseminacji, odnotowano podobieństwa w wieku pacjentek oraz liczbie pobranych oocytów między obiema grupami (Tabela 2). Zwiększony stopień rozluźnienia struktury komórek ziarnistych otaczających oocyt zaobserwowano u pacjentek, u których podczas pobierania komórek jajowych dokonano natychmiastowego częściowego usunięcia OCCC (Rysunek 4). Chociaż w grupie z częściowym usunięciem OCCC odnotowano nieco krótszy średni czas operacji (4,93 ± 0,80 min vs 6,54 ± 7,77 min, P = 0,207), nie stwierdzono statystycznie istotnej różnicy. O ile w niektórych przypadkach silne zrosty mogły prowadzić do wydłużenia procedur obserwacji powyżej 40 min, o tyle zazwyczaj luźne zrosty OCCC w większości przypadków po przechowywaniu przez noc mogły tłumaczyć brak statystycznej wariancji czasów operacji między obiema grupami. Podobnie jak w poprzedniej grupie, nie zidentyfikowano istotnych rozbieżności w tempie podziałów, odsetku embrionów optymalnych oraz odsetku blastocyst optymalnych.
Ogólnie rzecz biorąc, reprezentatywne wyniki wskazują, że natychmiastowe częściowe usunięcie OCCC znacząco skraca czas trwania zabiegu w procedurach zapłodnienia krótkoterminowego, nie wpływając negatywnie na kluczowe wyniki IVF, takie jak wskaźnik podziałów, odsetek embrionów optymalnych oraz odsetek blastocyst optymalnych. Technika ta ułatwia wykrycie drugiego ciałka polarnego poprzez rozluźnienie pozostałego OCCC wokół oocytów, co prawdopodobnie przyczynia się do skrócenia czasu operacji. W kontekście tradycyjnych procedur IVF, mimo że zaobserwowano tendencję do krótszego czasu trwania zabiegu przy natychmiastowym częściowym usunięciu OCCC, różnica ta nie była istotna statystycznie, co może wynikać z naturalnej zmienności adhezji komórek cumulus po przechowywaniu przez noc. Wyniki te sugerują, że choć natychmiastowe częściowe usunięcie OCCC może zwiększyć wydajność procedury, szczególnie w kontekście zapłodnienia krótkoterminowego, jego wpływ na ramy czasowe tradycyjnego IVF może być mniej wyraźny.
<img alt="Mikrobiologiczna technika aseptyczna, sterylizacja płomieniem; zestaw obejmuje palnik Bunsena oraz pipetę." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66951/66951fig01.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: Przygotowanie pipety Pasteura przy użyciu palnika alkoholowego. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66951/66951fig01large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Analiza mikroskopowa próbek tkanek z paskami skali; powiększone widoki z zaznaczonymi strukturami." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66951/66951fig02.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2: Typowy obraz OCCC wymagający przetworzenia. Typowe oocyty o średnicy przekraczającej 2,5 mm od (A i B) dwóch pacjentek poddano częściowemu usunięciu wzdłuż wyznaczonej czerwonej przerywanej linii. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66951/66951fig02large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Obrazy mikroskopowe wzrostu grzybów, skala 3 mm i 1 mm, analiza eksperymentu hodowlanego." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66951/66951fig03.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3: Typowe mikrografie przedstawiające cechy morfologiczne zapłodnienia 4–6 h po wspólnej inkubacji z plemnikami. Typowy oocyt (A) z lub (B) bez częściowego usunięcia OCCC. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66951/66951fig03large.jpg" target="_blank">Aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku, kliknij tutaj.</a>
<img alt="Obrazy mikroskopowe, równowaga statyczna, analiza rozkładu cząstek, skale 3 mm i 1 mm." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66951/66951fig04.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rysunek 4"> 
Rysunek 4: Typowe mikrofotografie przedstawiające cechy morfologiczne oceny pronukleusów 18-20 h po wspólnej inkubacji z plemnikami. Typowy oocyt (A) z lub (B) bez częściowego usunięcia OCCC. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66951/66951fig04large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td></td>
			<td>Częściowe usunięcie grupy OCCC</td>
			<td>Grupa kontrolna</td>
			<td>wartość p</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pacjentki (n)</td>
			<td>26</td>
			<td>21</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wiek (y)</td>
			<td>32.04 ± 4.11</td>
			<td>33.33 ± 3.41</td>
			<td>0.193</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liczba pobranych oocytów</td>
			<td>12.85 ± 9.02</td>
			<td>11.38 ± 5.32</td>
			<td>0.493</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Czas procedury 4 h (min)</td>
			<td>4.42 ± 1.68</td>
			<td>9.29 ± 5.04</td>
			<td>&lt;0.001</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wskaźnik podziału, n (%)</td>
			<td>98.89 ± 0.04, 24</td>
			<td>100.00 ± 0.00, 19</td>
			<td>0.221</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wskaźnik embrionów optymalnych, n (%)</td>
			<td>71.38 ± 35.46, 24</td>
			<td>72.14 ± 35.72, 19</td>
			<td>0.945</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wskaźnik blastocyst optymalnych, n (%)</td>
			<td>58.13 ± 28.29, 19</td>
			<td>65.18 ± 28.09, 12</td>
			<td>0.504</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabela 1: Porównanie wyników zapłodnienia pomiędzy dwiema grupami z natychmiastowym częściowym usunięciem OCCC i bez niego, poddanymi procedurom krótkiej współinkubacji.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td></td>
			<td>Częściowe usunięcie grupy OCCC</td>
			<td>Grupa kontrolna</td>
			<td>pwartość p</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pacjenci (n)</td>
			<td>29</td>
			<td>39</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wiek (lata)</td>
			<td>32.21 ± 4.11</td>
			<td>32.72 ± 4.25</td>
			<td>0.619</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liczba pobranych oocytów</td>
			<td>12.93 ± 7.00</td>
			<td>12.44 ± 7.26</td>
			<td>0.777</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>czas pracy 20 h (min)</td>
			<td>4.93 ± 0.80</td>
			<td>6.54 ± 7.77</td>
			<td>0.207</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wskaźnik fragmentacji, n (%)</td>
			<td>98.81 ± 0.04, 28</td>
			<td>95.93 ± 0.17,37</td>
			<td>0.39</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Optymalny odsetek embrionów, n (%)</td>
			<td>72.07 ± 36.75, 28</td>
			<td>72.62 ± 30.01,36</td>
			<td>0.948</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Optymalny odsetek blastocyst, n (%)</td>
			<td>62.93 ± 28.30, 21</td>
			<td>63.36 ± 24.61, 28</td>
			<td>0.955</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabela 2: Porównanie wyników zapłodnienia pomiędzy dwiema grupami z natychmiastowym częściowym usunięciem OCCC a bez niego w przypadku tradycyjnego zapłodnienia in vitro (IVF).

Tutaj prezentujemy zoptymalizowaną metodę natychmiastowego usuwania części kompleksów cumulus-oocyt po pobraniu komórek jajowych, aby przyspieszyć proces obserwacji IVF, skracając czas potrzebny na usunięcie komórek ziarnistych, minimalizując narażenie oocytów na czynniki zewnętrzne i nie utrudniając rozwoju zarodka, ostatecznie poprawiając efektywność procedur laboratoryjnych IVF.

Natychmiastowe częściowe usunięcie kompleksów cumulus-oocyty: wyrafinowane podejście do szybkiej obserwacji zapłodnienia in vitro

Despite the rapid advancements in clinical and laboratory technologies for in vitro fertilization (IVF), a significant proportion (10%-15%) of patients ...

Nasze badania koncentrują się na poprawie wyników zapłodnienia in vitro poprzez ocenę, czy natychmiastowe częściowe usunięcie wzgórka jajowego powoduje kompresy, zwiększa zapłodnienie. Efektywność obserwacji wpływa na rasę zapłodnienia i jakość zarodków oraz optymalizuje procedury laboratoryjne. Naszym celem jest udoskonalenie technik zapłodnienia in vitro w celu uzyskania lepszych wyników klinicznych.Ustaliliśmy, że w przyśrodkowym częściowym usunięciu wzgórka okopy oocyty znacznie się kompresują, zwiększa skuteczność obserwacji zapłodnienia w IVF. Prowadzi to do poprawy czasu oceny zapłodnienia i potencjalnie optymalizuje jakość zarodków i wyniki zapłodnienia in vitro. Nasz protokół zwiększa skuteczność zapłodnienia in vitro poprzez skrócenie czasu oczekiwania na zapłodnienie in vitro i zminimalizowanie narażenia środowiska oraz potencjalną poprawę jakości zarodków.Oferuje usprawnione i skuteczne podejście w porównaniu z tradycyjnymi technikami. Na początek umieść szalki do pobierania oocytów w inkubatorze w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc. Inkubować 12 mililitrów pożywki manipulacyjnej mieszków włosowych w 14-mililitrowych, okrągłodennych probówkach w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc.Następnie przenieś probówki do wstępnie ogrzanego stojaka na probówki 30 minut przed pobraniem oocytów. Następnie dodaj dziewięć mililitrów pożywki manipulacyjnej mieszków włosowych do 14-mililitrowej probówki z okrągłym dnem i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc. W dniu pobrania oocytów przenieś 4,5 mililitra pożywki do wstępnie inkubowanego naczynia do pobierania oocytów pokrytego dwoma mililitrami 100% oleju parafinowego.Następnie dodaj 4,5 mililitra pożywki do nawożenia do naczynia do pobierania oocytów i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc. Następnie dodaj jeden mililitr pożywki nawozowej do sześciocentymetrowego naczynia pokrytego 100% olejem parafinowym. Aby stępić i zaokrąglić końcówki szklanych pipet Pasteura, spal je na lampie alkoholowej przez około pięć sekund.Przymocuj głowicę ssącą do końcówki pipet Pasteura tak, aby mogła dotykać dna naczynia bez zarysowania. Przepłucz szklankę obok pipet w 10-centymetrowych naczyniach z pożywką do manipulowania mieszkami włosowymi. Krótko mówiąc, użyj igły o rozmiarze 17, aby pobrać oocyty pod kontrolą ultrasonograficzną przezpochwową.Wlej płyn pęcherzykowy zebrany w 14-mililitrowej probówce z okrągłym dnem do 10-centymetrowego naczynia. Umieść naczynie na platformie o stałej temperaturze. Obserwuj OCCC pod mikroskopem stereoskopowym, aby potwierdzić obecność oocytów i ocenić ich dojrzałość.Potwierdź, czy w OCCC znajdują się oocyty i dokonaj wstępnej oceny dojrzałości oocytów. Przygotuj silikonową pipetę aspiracyjną z okrągłą, polerowaną płomieniowo pipetą Pasteura. Zassać OCCC, delikatnie podnosząc naczynie hodowlane w pozycji od dziewiątej do 10:00 lewym palcem serdecznym i przechylając je o około 15 stopni w lewo.Podczas wypluwania zasysanego OCCC w pozycji 11:00 naczynia, delikatnie wydłużone poziomo w prawo. Następnie obserwuj wielkość komórek ziarnistych wokół rozszerzonego OCCC. Teraz użyj pipety Pasteura, aby delikatnie usunąć nadmiar komórek ziarnistości za pomocą szybkiego cięcia w dół w odpowiednim miejscu na wydłużonym OCCC.Przenieś pocięte OCCC do naczynia zbiorczego, zawierającego roztwór płuczący OCCC. Wlej pozostały płyn pęcherzykowy do sterylnego pojemnika na próbkę. Na początek oceń koncentrację, ruchliwość i morfologię pobranej próbki nasienia pod mikroskopem świetlnym.Następnie przenieś osad nasienia do nowej probówki wirówkowej i umyj go dwukrotnie w pożywce do zapłodnienia. Inkubuj je w 6% dwutlenku węgla i 37 stopniach Celsjusza, aż będą potrzebne. Po usunięciu nadmiaru komórek ziarnistości dodaj do naczynia nawozowego sześć do ośmiu OCCC i jeden mililitr pożywki nawozowej.Inseminować OCCC modalnymi plemnikami w jednej kropli, około dwie do trzech godzin po pobraniu do naczynia do zapłodnienia. W przypadku zapłodnienia krótkoterminowego należy inkubować OCCC z plemnikami przez cztery do sześciu godzin. Po inkubacji mechanicznie usuń komórki wzgórka otaczające oocyty.Odessać oocyty za pomocą pipety o średnicy wewnętrznej nieco mniejszej niż oocyty, aby zapewnić całkowite usunięcie komórek. Aby potwierdzić zapłodnienie, obserwuj obecność dwóch ciał polarnych. Oocyty, wykazujące drugie ciało polarne, uważa się za zapłodnione.W celu regularnego zapłodnienia należy usunąć wzgórki za pomocą pipet po 18 do 20 godzinach wspólnej inkubacji w celu oceny zapłodnienia. Hoduj zapłodnione oocyty przez trzy do pięciu dni po pobraniu oocytów. Oceń zapłodnienie po 20 godzinach od inseminacji, aby określić liczbę przedjądrzy.Następnie należy wyhodować każdą zygotę indywidualnie w pożywce kropelkowej i przenieść zarodki po zapłodnieniu do podłoża do rozszczepienia. Przenieś zarodki z trzeciego dnia do pożywki blastocytów i oceń w piątym dniu. Raportuj dane ciągłe jako średnią i odchylenie standardowe, a dane porządkowe wyrażaj jako proporcje.Spośród 47 pacjentek otrzymujących krótkotrwałą inseminację nie zaobserwowano istotnych różnic pod względem wieku i liczby pobranych komórek jajowych. Średni czas zabiegu był istotnie krótszy w przypadku częściowego usunięcia OCC w porównaniu z grupą kontrolną, pomimo braku istotnych różnic w szybkości rozszczepienia, optymalnej częstości zarodków i optymalnej częstości występowania blastocytów. U pacjentek poddawanych tradycyjnemu zapłodnieniu in vitro stwierdzono podobieństwa w wieku pacjentek i liczbie pobranych komórek jajowych między obiema grupami.Chociaż w przypadku częściowego usunięcia grupy OCCC zaobserwowano nieco krótszy średni czas operacji, nie stwierdzono istotnej statystycznie różnicy. Podobnie jak w poprzedniej grupie, nie stwierdzono istotnych rozbieżności w tempie rozszczepienia, optymalnym wskaźniku zarodków i optymalnym wskaźniku blastocytów.

the-immediate-partial-removal-cumulus-oocyte-complexes-refined

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film opisuje metodę mechanicznego usuwania błon kosmówkowych i witelinowych z wcześniej utrwalonych dojrzałych oocytów Drosophila. Przedstawiony protokół przedstawia szczegółową demonstrację procedury, w wyniku której uzyskuje się oocyty kompatybilne z fluorescencyjnymi testami hybrydyzacji in situ.

Mechaniczne usuwanie kosmówki i błony witeliny: metoda przygotowania oocytów Drosophila do bezpośredniej obserwacji

Ten film opisuje technikę izolowania kompleksu wzgórko-oocytów lub COC z jajników świni. Wyizolowany nienaruszony COC może być wykorzystany do przeprowadzenia zapłodnienia in vitro - techniki wspomaganego rozrodu w celu opracowania metod leczenia niepłodności.

Izolacja kompleksu oocytów Cumulusa świni: technika izolacji kompleksu oocytów Cumulus z pęcherzyka jajnika świni w celu zapłodnienia in vitro

W tym filmie pokazujemy, że w obecności inhibitora fosfodiestru, cykl komórkowy oocytów zostaje zatrzymany w profazie-I, podczas której transkrybowane mRNA są przechowywane w przypadku braku translacji. Po uwolnieniu inhibitora dojrzewanie oocytów zostaje wznowione, a komórki wchodzą w metafazę. Sygnał reporterowego mRNA połączonego z docelowym genem w metafazie-I wskazuje na aktywację maszynerii translacyjnej i ekspresji białka.

Test reporterowy pojedynczej komórki jajowej in vitro: technika badania docelowej regulacji translacji mRNA podczas dojrzewania oocytów in vitro

Ten manuskrypt opisuje eksperymentalne podejście do morfologicznego i biochemicznego charakterystyki oocytów koni. W szczególności niniejsza praca ilustruje, w jaki sposób zbierać niedojrzałe i dojrzałe oocyty koni za pomocą ultrasonograficznego pobierania komórek jajowych (OPU) oraz jak badać segregację chromosomów, morfologię wrzeciona, globalną acetylację histonów i ekspresję mRNA.

Analiza segregacji chromosomów, acetylacji histonów i morfologii wrzeciona w oocytach koni

Opisujemy procedury izolacji rosnących oocytów z pęcherzyków jajnikowych we wczesnych stadiach rozwoju, a także tworzenie systemu hodowli in vitro, który może wspierać wzrost i różnicowanie aż do fazy pełnej dojrzałości.

Strategia hodowli in vitro oocytów z wczesnego pęcherzyka antralnego u bydła

Dojrzewanie in vitro (IVM) przed operacją ginekologiczną (OP-IVM) łączy IVM po pobraniu oocytów z rutynową operacją ginekologiczną i służy jako rozszerzenie konwencjonalnych zastosowań IVM dla zachowania płodności.

OP-IVM: Połączenie dojrzewania in vitro po pobraniu komórek jajowych z chirurgią ginekologiczną

Dedykowany zespół może zaoferować pacjentkom Mayer-Rokitansky-Kuster-Hauser możliwość przeprowadzenia kontrolowanej stymulacji jajników i kriokonserwacji oocytów podczas laparoskopowej plastyki pochwy.

Laparoskopowe pobieranie komórek jajowych i kriokonserwacja podczas waginoplastyki w leczeniu zespołu Mayera-Rokitansky'ego-Kustera-Hausera

Protokół ten określa ustandaryzowane metody izolacji i przetwarzania płynu pęcherzykowego, komórek somatycznych oraz niedojrzałych oocytów z procedur IVF, umożliwiając wysokiej jakości analizy molekularne i komórkowe. Te podejścia wspierają badania translacyjne dotyczące płodności, starzenia się reprodukcyjnego i dysfunkcji jajników, wykorzystując materiały zwykle odrzucane w opiece klinicznej.

Pobieranie ludzkiego płynu pęcherzykowego, komórek somatycznych mieszków mieszkowych oraz niedojrzałych oocytów od osób poddawanych zapłodnieniu in vitro

Ten protokół opisuje procedury dotyczące in vitro dojrzewania oocytów mysich, in vitro zapłodnienia i późniejszej kultury embrionów do etapu blastocysty.

Dojrzewanie in vitro komórek jajowych myszy, zapłodnienie i hodowlą zarodków przedimplantacyjnych

Model mysi stwardnienia zanikowego bocznego (ALS) poddano badaniu klinicznemu i behawioralnemu. Jako warunek wstępny dla towarzyszącej analizy immunohistologicznej szczegółowo przedstawiono przygotowanie rdzenia kręgowego.

Badania kliniczne i usuwanie rdzenia kręgowego w modelu mysim stwardnienia zanikowego bocznego (ALS)

Poznaj zoptymalizowaną metodę częściowego usuwania kompleksów cumulus-oocyt bezpośrednio po pobraniu komórek jajowych w procedurach IVF. To podejście zwiększa efektywność obserwacji zapłodnienia przy jednoczesnym zminimalizowaniu ekspozycji na czynniki środowiskowe.

Natychmiastowe częściowe usunięcie kompleksów cumulus-oocyty: wyrafinowane podejście do szybkiej obserwacji zapłodnienia in vitro (Wideo) | JoVE Journal

Natychmiastowe częściowe usunięcie kompleksów cumulus-oocyty: wyrafinowane podejście do szybkiej obserwacji zapłodnienia in vitro

Przeglądaj więcej filmów