9 sierpnia 2024
Tutaj prezentujemy test przesunięcia termicznego, wysokoprzepustową technikę opartą na fluorescencji, używaną do badania wiązania małych cząsteczek z białkami będącymi przedmiotem zainteresowania.
Naszym celem jest zbadanie aktywności biochemicznej białek o nieznanych funkcjach. Wiązanie kofaktora jest nie tylko niezbędne dla aktywności niektórych białek, ale może również wpływać na ich stabilność termiczną. Jednym z praktycznych zastosowań tego zjawiska jest wykorzystanie zmiany stabilności termicznej, mierzonej temperaturą topnienia białka, do analizy wiązania ligandów.
Test przesunięcia termicznego jest wszechstronnym narzędziem do badania interakcji białek z potencjalnymi kofaktorami lub lekami oraz do określania warunków stabilizujących krystalografię. Niektóre z jej zalet w porównaniu z innymi metodami przesiewania to stosunkowo prosta konfiguracja i wysoka przepustowość z płytkami 96 lub 384-dołkowymi. Selenoproteina O lub SelO jest ewolucyjnie konserwatywną pseudokinazą, która przenosi monofosforan adenozyny z ATP do substratów białkowych w modyfikacji potranslacyjnej znanej jako AMPylacja W tym protokole używamy TSA do analizy wiązania nukleotydów i metali z SelO.
Na początek przygotuj roztwór białka SelO za pomocą testu przesunięcia termicznego lub buforu TSA. Dozuj białko, małe cząsteczki i barwnik SYPRO Orange do odpowiednich dołków na płytce 384-dołkowej. Przykryj płytkę optycznie przezroczystą folią samoprzylepną i krótko obracaj płytkę o masie 1000 g przez jedną minutę w wirówce.
Następnie umieść płytkę w maszynie do PCR w czasie rzeczywistym i zaprogramuj ją tak, aby utrzymywała próbkę w temperaturze 20 stopni Celsjusza przez dwie minuty, a następnie wzrost temperatury o 0,5 stopnia na minutę do 95 stopni Celsjusza. Eksportuj dane z maszyny RTPCR dla względnych jednostek fluorescencji lub RFU w odniesieniu do temperatury. Korzystając z wybranego oprogramowania, wyodrębnij i wykreśl punkty danych do najwyższej intensywności zmierzonej dla każdej krzywej topnienia.
Określ temperaturę topnienia za pomocą pasowania sigmoidalnego Boltzmanna, aby uzyskać dane do określenia temperatury topnienia lub Tm. Krzywe denaturacji termicznej wykazały wzrost stabilności termicznej Escherichia coli SelO o 4 stopnie Celsjusza w obecności ATP z jonami magnezu i wzrost o 12 stopni Celsjusza w tym samym dla ATP z jonami manganu. Nie zaobserwowano jednak zmiany w stabilności termicznej po inkubacji z UTP, co wskazuje, że Escherichia coli SelO może nie wykazywać wykrywalnego wiązania z UTP. Kontrole bez białka, jak również bez barwnika, miały niski sygnał fluorescencji, który nie reagował na wzrost temperatury.
Ten artykuł przedstawia test przesunięcia termicznego (TSA), technikę o wysokiej wydajności opartą na fluorescencji do badania wiązania małych cząsteczek z białkami. TSA jest szczególnie przydatny do analizowania wiązania ligandów i określania warunków stabilizujących dla krystalografii.
Thermal shift assay (TSA) enables rapid, high-throughput assessment of ligand binding and protein stability, directly supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in biopharma discovery. By quantifying substrate and cofactor interactions with Selenoprotein O, TSA informs both functional annotation and the identification of stabilizing conditions for downstream structural studies. This approach enhances predictive confidence at critical inflection points in the discovery pipeline, particularly for proteins with previously unknown functions.
TSA is positioned at the interface of early discovery and lead identification, enabling hypothesis-driven target validation and supporting downstream assay development and structural biology workflows.