20 grudnia 2024
Ten protokół opisuje, w jaki sposób połączenie infekcji EcoHIV z myszami Tmem119-EGFP oferuje cenny system biologiczny do badania zmian mikrogleju i rezerwuarów wirusa w modelach gryzoni zaburzeń neuropoznawczych związanych z HIV.
Protokół ten opisuje, w jaki sposób połączenie zakażenia EcoHIV z myszami Tmem119-EGFP stanowi cenny system biologiczny do badania zmian mikrogleju i rezerwuarów wirusa w modelach gryzoni zaburzeń neuropoznawczych związanych z HIV. Skojarzona terapia przeciwretrowirusowa znacznie poprawiła jakość życia osób żyjących z wirusem HIV. Aby zrozumieć, w jaki sposób HIV wpływa na ośrodkowy układ nerwowy, niezbędny jest wiarygodny i wykonalny model HIV.
Wcześniej na modelu szczurzym opracowano nowy system biologiczny wykorzystujący chimeryczny wirus HIV, EcoHIV w koacji, w celu zbadania zaburzeń neuropoznawczych i dysfunkcji synaptycznych. Istotnym wyzwaniem pozostaje wyjaśnienie neuroanatomicznego rozmieszczenia EcoHIV, a w szczególności jego zróżnicowanej ekspresji w różnych typach komórek mózgu. W obecnym badaniu EcoHIV ze znakowaniem fluorescencyjnym mScarlet został zmodyfikowany i wstrzyknięty po orczole myszom knock-in Tmem119-EGFP w celu ustalenia, czy mikroglej jest głównym typem komórek odpowiedzialnych za ekspresję wirusa i rezerwuarem HIV w mózgu.
Na początek przenieś zdysocjowane komórki mózgowe płodu szczura na wstępnie pokrytą poli-L-lizyną 12-dołkową płytkę ze szklanymi wkładkami zawierającymi jeden mililitr DMEM-F12 plus 10% FBS. Inkubuj komórki przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla. Następnego dnia zastąp pożywkę pożywką Neurobasel uzupełnioną witaminą B27 i kontynuuj hodowlę komórek w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla przez trzy tygodnie.
Następnie dodaj 60 mikrolitrów EcoHIV-mScarlet do hodowli komórek mózgowych i inkubuj przez sześć dni. Po inkubacji utrwal komórki za pomocą 4% paraformaldehydu. Wykonaj barwienie immunologiczne na zakażonych komórkach mózgowych przy użyciu specyficznych przeciwciał pierwotnych i zobrazuj je pod mikroskopem konfokalnym pod obiektywem 40x.
Mikroglej został zidentyfikowany jako główny zakażony typ komórek w hodowlach komórek mózgowych szczurów, o czym świadczy kolokalizacja mScarlet z markerami CD11b/c i Iba1. Na początek otwórz skórę głowy dorosłej myszy pozbawionej głowy i przenieś tkankę mózgową na inną szalkę Petriego zawierającą pięć mililitrów wysterylizowanego HBSS. Oderwij opony mózgowe i przenieś korę czołową do dwóch mililitrów HBSS.
Następnie dodaj do mieszaniny 20 mikrolitrów 0,25% trypsyny-EDTA. Inkubować przez 15 minut w temperaturze pokojowej, obracając probówkę co kilka minut. Przenieś zdysocjowane komórki do wstępnie pokrytej poli-L-lizyną kolby o powierzchni 75 centymetrów kwadratowych zawierającej 10 mililitrów pożywki DMEM-F12 i 10% FBS.
Hoduj komórki w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla, aż osiągną 90% konfluencji. Następnie strawij komórki mózgowe dwoma mililitrami 0,25% trypsyny-EDTA. Subkulturuj strawione komórki mózgowe w 35-milimetrowym szklanym naczyniu zawierającym pięć mililitrów pożywki wzrostowej DMEM-F12, aż osiągną 80% konfluencji.
Następnie dodaj osiem mikrolitrów EcoHIV-mScarlet do komórek glejowych myszy i inkubuj przez dwa dni. Dorosłe pierwotne komórki glejowe myszy zostały pomyślnie zakażone EcoHIV-mScarlet po dwóch dniach leczenia. Aby rozpocząć, zabezpiecz znieczuloną mysz Tmem119-EGFP w pozycji bocznej.
Rozmrozić EcoHIV-mScarlet na lodzie. Wlać roztwór wirusa do strzykawki do wstrzykiwania wewnątrzgałkowego za pomocą igły o rozmiarze 33. Umieść mysz w prawej pozycji bocznej z głową skierowaną w lewo.
Zidentyfikuj obszar wstrzyknięcia wokół oka. Powoli i delikatnie wprowadzić igłę do przyśrodkowej kości oka. Następnie wsuń igłę do naczyń za gałką oczną.
Wstrzyknąć 6,5 mikrolitra EcoHIV-mScarlet do zatoki zaoczodołowej. Po wstrzyknięciu należy ostrożnie wyjąć igłę. Umieść znieczuloną mysz w pozycji leżącej na plecach w okapie oparów chemicznych.
Otwórz skórę wzdłuż linii środkowej klatki piersiowej. Następnie oddziel przeponę i otwórz klatkę piersiową nożyczkami. Teraz włóż półtoragórską igłę o rozmiarze 22 do lewej komory.
Otwórz prawe przedsionek nożyczkami. Wykonaj perfuzję prawego przedsionka za pomocą 50 mililitrów wstępnie schłodzonego 100-milimolowego PBS, a następnie przepełnij 100 mililitrami wstępnie schłodzonego 4% paraformaldehydu. Usuń cały mózg myszy.
Po utrwaleniu mózgu w 4% paraformaldehydzie, zabezpiecz tkankę mózgową za pomocą kleju tkankowego na metalowej platformie Vibratome. Wytnij sekcje koronalne o grubości 50 mikrometrów za pomocą ostrzy ze stali węglowej. Następnie umieść plastry mózgu na szklanych szkiełkach za pomocą pędzla.
Natychmiast dodaj 0,1 mililitra środka montażowego zapobiegającego blaknięciu do każdej sekcji. Umieść szkiełko nakrywkowe o wymiarach 22 na 50 milimetrów na sekcjach mózgu i susz szkiełka Superfrost w ciemności przez jeden dzień. Następnego dnia użyj mikroskopu konfokalnego o długości fali 488 nanometrów i 594 nanometrów, aby uzyskać wielokanałowe obrazy interesującego obszaru mózgu.
Sygnały EcoHIV-mScarlet obserwowano przede wszystkim w komórkach mikrogleju znakowanych EGFP w mózgu myszy Tmem119-EGFP. Nie wykryto istotnego zakażenia neuronów w hodowanych komórkach mózgowych szczurów leczonych EcoHIV-mScarlet.
W niniejszym badaniu wykorzystano myszy Tmem119-EGFP zainfekowane wirusem EcoHIV w celu zbadania zmian w mikrogleju oraz obecności rezerwuarów wirusa w modelach gryzoni dla zaburzeń neuropoznawczych związanych z HIV. Dzięki zastosowaniu zaawansowanych technik obrazowania badanie to wyjaśnia rozkład EcoHIV w obrębie ośrodkowego układu nerwowego oraz jego interakcję z komórkami mikrogleju.
Wyjaśnienie kwestii komórkowych rezerwuarów HIV w mózgu ma kluczowe znaczenie dla minimalizacji ryzyka w modelach zaburzeń neuropoznawczych oraz rozwoju badań translacyjnych nad patologią OUN powiązaną z HIV. System myszy Tmem119-EGFP zakażonych szczepem EcoHIV umożliwia precyzyjną identyfikację infekcji mikrogleju, co zwiększa wiarygodność prognostyczną w walidacji celów i badaniach mechanistycznych. Model ten usprawnia proces przechodzenia od odkryć do etapu przedklinicznego w badaniach nad neuro-HIV oraz pozwala na lepszą priorytetyzację interwencji ukierunkowanych na OUN.
Model ten łączy wczesny etap odkryć z badaniami przedklinicznymi, umożliwiając prowadzenie studiów opartych na hipotezach dotyczących neurobiologii HIV oraz walidację celów w systemie istotnym z punktu widzenia choroby.