October 11th, 2024
Ten protokół zawiera szczegółowy opis sortowania pęcherzyków zewnątrzkomórkowych (EV) uwalnianych przez mezenchymalne komórki zrębu. W szczególności koncentruje się na ustawieniu urządzeń i optymalizacji warunków sortowania. Celem jest sortowanie pęcherzyków zewnątrzkomórkowych przy jednoczesnym zachowaniu ich cech.
Dlatego głównym celem naszych badań jest zbadanie mezenchymalnych komórek zrębu, pęcherzyków zewnątrzkomórkowych do regeneracji tkanek. Zagadnieniem i celem naszych badań jest przełożenie podejścia bezkomórkowego na zastosowanie kliniczne wraz z terapiami komórkowymi. Charakterystyka ma kluczowe znaczenie, a obecnie posiadanie czystego pęcherzyka do głębokiej charakterystyki jest bardzo trudne, ponieważ nie ma protokołów pozwalających osiągnąć wysoką czystość.
Dlatego chcieliśmy wdrożyć technologię sortowania komórek, aby zbadać, scharakteryzować i ostatecznie przełożyć na praktykę kliniczną to nowe podejście oparte na pęcherzykach zewnątrzkomórkowych, Nasz protokół składa się z czterech części, przygotowania próbki, charakterystyki pęcherzyków zewnątrzkomórkowych, sortowania i analizy po sortowaniu. Skupimy się na części sortującej. Jak zobaczysz, niektóre polecenia będą wykonywane w oprogramowaniu sortującym, a inne na ekranie dotykowym.
Nasz protokół oferuje znaczące korzyści w porównaniu z innymi metodami separacji pojazdów elektrycznych. Po pierwsze, zastosowanie 70 mikrodysz przy ciśnieniu 35 psi pozwala zachować integralność sortowania końcowego EV. Następnie możliwe jest wyizolowanie określonej populacji EV, a na końcu urządzenie pozwala zapisać ustawienia sortowania, aby proces był powtarzalny.
W naszym laboratorium pracujemy nad opracowaniem nowego wielokolorowego panelu do analizy pęcherzyków zewnątrzkomórkowych. W szczególności skupiamy się na ustawieniu aparatury i badaniu fluorochromów. Wierzymy, że możliwość zidentyfikowania i oddzielenia rzadkiej populacji pęcherzyków może zapewnić dobrą poprawę ich charakterystyki, a także badania ich roli w procesach biologicznych.
Aby rozpocząć, otwórz przewód ciśnieniowy i system próżniowy sortera komórek. Włącz urządzenie, otwórz szafę bezpieczeństwa biologicznego i uruchom oprogramowanie sortownika. Zwiększ ciśnienie w układzie hydraulicznym, a następnie włącz układ hydrauliczny.
Aktywuj napęd kroplowy kryształu piezoelektrycznego w dyszy, który wibruje, tworząc kropelki. Wykonaj procedurę usuwania bąbelków, aby wyeliminować pęcherzyki w systemie. Następnie uruchom pięciomililitrową tubkę roztworu czyszczącego na pięć minut przy wysokiej różnicy ciśnień, a następnie pięciomililitrową rurkę z dejonizowaną wodą na pięć minut.
Aby wykonać procedurę ręcznego uruchamiania, przejdź do zakładki sterowania laserem i włącz moc lasera. Sprawdź wyrównanie strumienia w pionie. Aby określić plamkę lasera, naciśnij zaczep przechwytywania strumienia laserowego.
Kliknij przycisk z zieloną strzałką i postępuj zgodnie z instrukcjami wyświetlanymi na monitorze dotykowym. Zainicjuj IntelliSort i ustaw częstotliwość upuszczania wraz z domyślną wartością amplitudy, która powoduje, że strumień tworzy kropelkę. W przypadku procedury precyzyjnego wyrównywania laserowego załaduj pięciomililitrową tubkę koralików wyrównujących QC do próbnika i uruchom ją w protokole QC.
Na karcie precyzyjnego wyrównania wybierz żądane parametry na osiach X i Y, aby wyświetlić dobrze zagęszczone i zestawione ściegi. Po sprawdzeniu ręcznego wyrównania wykonaj automatyczną kontrolę jakości przy średnicy koralików QC ustawionej na trzy mikrometry. Zapisz akwizycję QC w protokole wyrównania oprogramowania.
Aby sfinalizować IntelliSort, umieść płytki odchylające we właściwej pozycji w sortowniku i włącz napięcie na około 3 000 woltów. Wybierz wyjście sortowania z sześcioma probówkami. Wybierz strumienie na wskaźniku strumienia, aby je włączyć, i wykonaj strumień testowy.
Włącz przycisk automatycznego określania opóźnienia upuszczania przez funkcję IntelliSort, aby ustawić prawidłowe opóźnienie upuszczania i ponownie zweryfikować strumienie. Następnie aktywuj tryb utrzymywania funkcji IntelliSort i ręcznie sprawdź opóźnienie upuszczania. Załaduj ręczny protokół opóźnienia zrzutu do oprogramowania sortera i zdobądź fluorescencyjne kulki kontrolne.
Po wstawieniu odpowiedniego uchwytu slajdu wybierz sortowanie, a następnie kreatora opóźnienia upuszczania i logiki sortowania. Sprawdź za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego, czy 97% koralików fluorescencyjnych jest obecnych na piątej kałuży. Aby rozpocząć, skonfiguruj sortowanie komórek i aktywuj funkcję IntelliSort.
Po wykonaniu kalibracji rozproszenia należy wykonać kroki akwizycji próbki dla każdej próbki. Aby utworzyć nowy protokół sortowania próbek, wybierz plik, a następnie protokół i nowy na pasku narzędzi. Kliknij ustawienie akwizycji danych w oprogramowaniu sortującym.
W oknie parametrów akwizycji wybierz interesujące Cię kanały i wyłącz pozostałe. Następnie umieścić pięciomililitrową probówkę z próbką w próbniku. Na ekranie dotykowym kliknij przycisk ładowania.
Na pasku narzędzi oprogramowania sortującego wybierz opcję Pobieranie i naciśnij przycisk Start. Gdy pojawi się okno właściwości próbki, wstaw nazwę próbki i kliknij przycisk OK. Aby utworzyć strategię bramkowania, wybierz histogram, a następnie utwórz histogram.
Utwórz trzy wykresy kropkowe, pierwszy z logarytmem 488-FSC1-Height na osi X i 488-SSC-Height log na osi Y. Drugi z 488-FSC-2 Height log na osi X i 488-SSC-Height log na osi Y, a trzeci z 488 513 X 26 CFSE Height log na osi X i 488-SSC Height log na osi Y. Kliknij pozycję pobieranie, a następnie przycisk Start i wstaw nazwę przykładu.
Podczas akwizycji narysuj region identyfikujący negatywne zdarzenia CFSE i jeden identyfikujący pozytywne zdarzenia CFSE. Następnie na karcie sortowania zidentyfikuj region do sortowania. Gdy natężenie przepływu jest stabilne, wybierz akwizycję, a następnie zatrzymaj.
Rozpocznij sortowanie, wybierając opcję sortowania na pasku narzędzi oprogramowania sortującego. Aby zapisać ustawienia sortowania, wybierz opcję sortuj na pasku narzędzi, a następnie kliknij przycisk Zapisz ustawienia sortowania. Aby sprawdzić czystość posortowanej populacji, najpierw zaopatrz się w pięciomililitrową tubkę roztworu czyszczącego na 10 minut przy wysokiej różnicy ciśnień, a następnie pięciomililitrową probówkę z dejonizowaną wodą przez 10 minut.
Pobrać 0,22-mikrometrowy, przefiltrowany PBS i sprawdzić, czy nie występują żadne pozytywne zdarzenia CFSE. Następnie rozcieńczyć pięć mikrolitrów posortowanej próbki w 100 mikrolitrach 0,22-mikrometrowego, przefiltrowanego PBS. Pobrać posortowane próbki i zapisać objętości Ekspresja CD9, CD63, CD81 i CD44 w pęcherzykach zewnątrzkomórkowych pochodzących z tkanki tłuszczowej nie zmieniła się po sortowaniu CFSE.
Analiza śledzenia nanocząstek wykazała, że rozkład wielkości pęcherzyków pozostał spójny przed i po sortowaniu. Analiza transmisyjnej mikroskopii elektronowej wykazała, że morfologia pęcherzyków nie uległa znaczącym zmianom w procesie sortowania. Dodatkowo leczenie było 0,1%Triton X-100 zmniejszył liczbę pęcherzyków CFSE dodatnich, potwierdzając ich pęcherzykowe pochodzenie.
To badanie koncentruje się na sortowaniu dodatkowych pęcherzyków (EV) pochodzących od komórek mezenchymalnych tkanki łącznej dla regeneracji tkanki. Protokół kładzie nacisk na optymalizację ustawień instrumentu, aby osiągnąć wysoką czystość i zachować integralność posortowanych EV.
High-purity isolation of extracellular vesicles (EVs) from mesenchymal stromal cells is critical for advancing cell-free regenerative medicine and translational research. This protocol addresses the reproducibility and integrity challenges that have limited EV characterization and downstream application in biopharma R&D. Reliable EV sorting enables robust target validation and supports the development of next-generation therapeutic platforms.
This EV sorting protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum, supporting both early mechanistic studies and translational research on cell-free therapies.