16 września 2025
W tym miejscu przedstawiamy protokół budowy systemu narządów na chipie (OOC) mającego naśladować pneumonektomię. System ten bada potencjalną korelację między upośledzeniem glikokaliksu a powikłaniami po pneumonektomii.
Laboratorium Mensah koncentruje się na badaniach naczyniowych i opracowuje nowe techniki badania glikokaliksu śródbłonka i jego roli w chorobach naczyniowych. Ostatnie osiągnięcia obejmują tworzenie bardziej zaawansowanych modeli in vitro do badań nad glikokaliksem oraz badania nad strategiami terapeutycznymi ukierunkowanymi na zdrowie i naprawę glikokaliksu śródbłonka w chorobach. Wyzwania eksperymentalne obejmują niekompletne modele in vitro, które nie są w stanie dokładnie odtworzyć zdrowej glikokaliksu, a także trudne techniki kwantyfikacji i pomiaru.
Nasz obecny wkład w tę dziedzinę poszerzył obecną wiedzę na temat glikokaliksu śródbłonka, szczególnie w zakresie jego roli w przerzutach raka, regeneracji uszkodzonego glikokaliksu i interakcjach z receptorami na powierzchni naczyń krwionośnych. Nasza metoda przedstawia niedrogą i skuteczną metodę tworzenia układów naczyniowych typu narząd na chipie, które wyrażają bardziej rozwinięty i biomimetyczny glikokaliks śródbłonka w porównaniu z konwencjonalnymi technikami. Na początek zważ 10 części bazy z elastomeru silikonowego w 50-mililitrowej probówce wirówkowej.
Wlej jedną część utwardzacza do probówki zawierającej bazę z elastomeru silikonowego do końcowej objętości 30 mililitrów. Dokładnie wymieszaj, aby uzyskać jednolity roztwór. Teraz wlej dobrze wymieszany roztwór do foremek, a następnie umieść foremki w komorze próżniowej, aby odgazować PDMS przez 30 do 60 minut lub do momentu, gdy nie pozostaną żadne pęcherzyki.
Wyjmij odgazowany PDMS z komory próżniowej i pozostaw do utwardzenia w temperaturze pokojowej przez 48 godzin. Wyodrębnij utwardzony PDMS z formy PLA. Następnie umieść dwa kawałki taśmy dwustronnej na każdej płytce do hodowli komórkowej.
Następnie umieść każdą połówkę układu krwionośnego PDMS na wierzchu taśmy we własnym naczyniu do hodowli komórkowych. Umieść kilka 30-mikrolitrowych kropli fibronektyny wzdłuż układu naczyniowego PDMS za pomocą mikropipety. W razie potrzeby przechyl PDMS i użyj końcówki pipety, aby równomiernie pokryć powierzchnię.
Po 30-minutowej inkubacji odessać roztwór fibronektyny z PDMS. Następnie pozwól elementom wyschnąć na powietrzu wewnątrz szafki. Umieść wydrukowane w 3D zatyczki na każdym końcu połówek naczyń krwionośnych PDMS, aby zapobiec wyciekowi zawiesiny komórek, używając dwóch zatyczek na sztukę.
Za pomocą mikropipety wysiew 300 mikrolitrów zawiesiny komórek HLMVEC do każdego elementu PDMS i inkubuj. Następnie włóż połówki z powrotem do szafki i wyjmij cztery wtyczki. Dodaj pożywkę hodowlaną HLMVEC, aby zanurzyć połówki układu krwionośnego PDMS i ponownie inkubować przez sześć do 10 godzin.
Teraz odessać pożywkę HLMVEC z szalki Petriego zawierającej połówki naczyń krwionośnych. Umieść każdą połówkę PDMS w blokach poliwęglanu, zapewniając prawidłowe wyrównanie. Nałóż uszczelniacz silikonowy na końce układu naczyniowego PDMS.
Włóż rurkę o długości cala do obu końców dolnego elementu PDMS. Następnie odwróć górny blok akrylowy zawierający górną połowę PDMS na dolny blok akrylowy. Skręć ze sobą bloki akrylowe, upewniając się, że gwintowany blok znajduje się na dole.
Zatkaj wolne końce rurki za pomocą zatyczek wydrukowanych w 3D. Wyjmij jedną zatyczkę i delikatnie wstrzyknij 500 mikrolitrów pożywki hodowlanej HLMVEC do układu krwionośnego za pomocą mikropipety. Przechyl, aby usunąć pęcherzyki powietrza, a następnie wymień wtyczkę.
Przenieś zmontowany chip i sterylne elementy do szafy bezpieczeństwa biologicznego. Podłącz wszystkie rurki i zmontuj system przepływu, upewniając się, że rurka wlotowa łączy się z dnem zbiornika strzykawki, aby ułatwić przepływ grawitacyjny. Teraz delikatnie zalać układ przepływowy medium HLMVEC.
Użyj 50-mililitrowej pipety serologicznej. Wstrzyknąć 30 mililitrów pożywki do górnej części zbiornika strzykawki i uruchomić pompę perystaltyczną z niską prędkością, aby napełnić rurkę. Myj każdą połówkę układu krwionośnego PDMS w PBS przez pięć minut, dodając tyle roztworu, aby całkowicie zanurzyć odcinek naczyniowy.
Symulacja płynu wykazała znacznie podwyższone naprężenia ścinające przy rozwidleniach naczyń w modelu pneumonektomii w porównaniu z modelem kontrolnym. Mikroskopia w jasnym polu potwierdziła równomierne przyleganie komórek HLMVEC zarówno w warunkach statycznych, jak i przepływowych przy 93,1 mililitrach na minutę po 24 godzinach. Obrazowanie fluorescencyjne bifurkacji wlotu wykazało nienaruszone i dobrze rozmieszczone warstwy komórek zarówno w modelach kontrolnych, jak i pneumonektomii.
Obrazowanie bezpośrednio po drugim rozwidleniu wykazało znaczną utratę komórek zarówno w modelu kontrolnym, jak i w modelu pneumonektomii. Komórki pozostały przylegające i wykazywały spójne barwienie w regionie poniżej drugiego rozwidlenia w obu modelach. Jednolite jądra barwione DAPI w modelach naczyniowych wskazywały, że konfluencja utrzymywała się pomimo ekspozycji na przepływ.
Wczesna próba modelu kontrolnego wykazała nierównomierne rozmieszczenie komórek z powodu pęcherzyków powietrza wprowadzonych podczas zalewania systemu.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia protokół konstrukcji systemu organ-on-chip (OOC), który naśladuje pneumonektomię. System został zaprojektowany w celu zbadania korelacji między uszkodzeniem glikokaliksu a powikłaniami występującymi po pneumonektomii.
Modelowanie glikokaliksu śródbłonkowego po pneumonektomii w trójwymiarowym chipie mikroprzepływowym pozwala wypełnić krytyczną lukę w biologii naczyniowej, umożliwiając precyzyjne badanie wpływu naprężeń ścinających na funkcję naczyń. Ten system organ-on-chip zwiększa pewność predykcyjną w procesie wczesnej walidacji celów terapeutycznych oraz w ograniczaniu ryzyka mechanistycznego związanego z powikłaniami naczyniowymi po interwencjach chirurgicznych. Podejście to wspiera ciągłość translacyjną od modelowania obliczeniowego do walidacji eksperymentalnej, dostarczając danych dla decyzji portfelowych skorygowanych o ryzyko w obszarze badawczo-rozwojowym w zakresie naczyń i płuc.
Ta metoda organ-on-chip integruje etapy od wczesnego odkrywania, przez identyfikację wiodących związków, aż po badania przedkliniczne, łącząc modelowanie obliczeniowe z walidacją eksperymentalną w biologii naczyniowej.