28 marca 2025
Przedstawiono metodę taniego obrazowania roślin do pomiaru fenotypów, wraz z najlepszymi praktykami przechwytywania obrazów i potokiem analizy obrazu do ilościowego określania cech roślin. Metody te zastosowano do pomiaru fenotypów kukurydzy (Zea mays) w warunkach upałów, suszy i połączonego stresu abiotycznego.
Nasze badania koncentrują się na opracowaniu i zastosowaniu wysokowydajnych narzędzi do fenotypowania roślin. Naszym celem jest dokonywanie pomiarów szybko, tanio i bez zabijania roślin. Ostatnie osiągnięcia w dziedzinie fenotypowania roślin rozszerzyły analizę obrazu na różne typy kamer, takie jak satelity i UAV, a także zastosowały nowe techniki uczenia maszynowego.
Obecne wyzwania eksperymentalne obejmują szeroki zakres i znaczny nakład pracy wymagany do wykonania pomiarów w wielu punktach czasowych, leczenia środowiskowego i genotypów w celu osiągnięcia znaczącego postępu w kwestiach biologicznych. Nasz protokół zapewnia prostą metodę szybkiego i elastycznego przechwytywania i analizowania obrazów roślin bez konieczności korzystania z drogiego sprzętu. Aby rozpocząć, włącz listwę zasilającą za pomocą przełącznika i naciśnij przycisk, aby włączyć monitor.
Ustaw przełącznik na przewodzie zasilającym komputera jednopłytkowego lub kontrolera SBC w pozycji Wł.Umieść aparat na statywie lub stole i podłącz zasilanie do aparatu za pomocą przewodu zasilającego lub baterii. Włącz aparat za pomocą przycisku zasilania aparatu. Podłącz aparat do portu USB w kontrolerze SBC za pomocą dostarczonego do przesyłania danych i do aparatu.
Następnie umieść kawałek ciemnej taśmy na tkaninie fotograficznej, na której zostanie umieszczony garnek. Teraz umieść doniczkę na zaznaczonej taśmie. W przypadku roślin rosnących w płaszczyźnie, takich jak kukurydza i sorgo, ustaw najszerszy kąt rośliny w kierunku aparatu.
Dostosuj kartę kolorów tak, aby znajdowała się w jednej linii z doniczką, ale oddzielona od rośliny, aby nie nakładała się na siebie. Kliknij przycisk Terminal, aby otworzyć terminal na kontrolerze SBC. Wprowadź wiersz kodu, aby otworzyć okno przechwytywania obrazu.
Następnie wpisz ręcznie nazwę obrazu lub zeskanuj kod kreskowy lub kod QR zakładu za pomocą skanera kodów kreskowych. Po zrobieniu zdjęcia wybierz opcję zapisania obrazu lokalnie lub na zamontowanym serwerze lub w chmurze. Kliknij kliknij tutaj, aby zrobić zdjęcie"przycisk, aby zrobić zdjęcie.
Jeśli wybrano pamięć lokalną, otwórz folder Zdjęcia na pulpicie, aby przejrzeć obraz. Jeśli użyto serwera lub magazynu w chmurze, otwórz obraz w tej lokalizacji. Po przechwyceniu wszystkich obrazów użyj preferowanej metody, takiej jak pamięć USB, przeglądarka internetowa lub transfer SSH, aby skopiować wszystkie obrazy z kontrolera SBC na komputer lokalny lub pamięć masową w chmurze.
Pobierz wymagane pliki na komputer lokalny lub serwer. Zainstaluj plantcv za pomocą wiersza poleceń lub menedżera pakietów. Otwórz photo-studio-SV-notebook.
ipynb przy użyciu preferowanego edytora kodu, takiego jak JupyterLab lub Visual Studio Code. Uruchom każdy blok kodu, dokonując niezbędnych zmian w oparciu o parametry określone w kodzie, aby uzyskać czystą maskę rośliny. Jeśli analiza przykładowego obrazu jest zadowalająca, otwórz przepływ pracy.
py w preferowanym edytorze kodu. Edytowanie przepływu pracy. py, aby uwzględnić wszelkie zmiany parametrów wprowadzone w notatniku photo-studio-SV.
ipynb i zapisz plik. Otwórz plik photo-studio-SV-config. json, aby zaktualizować ścieżki plików.
Zmodyfikuj ścieżki do folderu wejściowego zawierającego obrazy roślin i folderu wyjściowego, w którym będą przechowywane przetworzone obrazy i wyniki. Otwórz terminal i aktywuj plantcv za pomocą polecenia conda activate plantcv i naciśnij Enter na klawiaturze. Zmień określony wiersz kodu, aby wskazywał zaktualizowany photo-studio-SV-config.
plik json. W terminalu wpisz zmodyfikowany kod i naciśnij Enter na klawiaturze. Upewnij się, że plantcv jest aktywowany w terminalu.
Następnie uruchom polecenie, aby przekonwertować results-photo-studio. json na csv, odpowiednio aktualizując ścieżkę do pliku. Analiza obrazu w plantcv z powodzeniem podzieliła rośliny kukurydzy na segmenty od tła przy użyciu progu dwukanałowego.
Analiza plantcv dostarczyła 16 cech o pojedynczej wartości, w tym powierzchni liści, wysokości, szerokości i średniej okrągłej odcienia, z cechami wielowartościowymi wykreślonymi jako histogramy. Średnia powierzchni liści, wysokości, szerokości i odcienia koła wyjaśniała ponad 50% wariantów spowodowanych leczeniem, co czyni je kluczowymi wskaźnikami do dalszej analizy. Roślina o największej powierzchni liści miała najwyższy średni odcień i była genotypem B73, dobrze nawodnioną, zestresowaną termicznie.
Najmniejsza powierzchnia liści miała również najmniejszy średni odcień i była genotypem B73, rośliną zestresowaną suszą i upałem. Uzdatnianie wodą istotnie wpłynęło na powierzchnię, wysokość, szerokość i odcień liści, podczas gdy uzdatnianie temperaturą wpłynęło tylko istotnie na wysokość. Stres związany z suszą znacznie zmniejszył powierzchnię liści, wysokość roślin, szerokość roślin i średni okrągły odcień w obu warunkach temperaturowych.
Zmniejszenie średniego odcienia z powodu suszy było spowodowane przejściem z zielonych na żółte piksele. Stres cieplny powodował zarówno żółknięcie, jak i ciemnienie zielonego koloru. Powierzchnia liści mierzona za pomocą analizy obrazowej jest silnie skorelowana z biomasą roślin, co potwierdza słuszność metody fenotypowania opartej na obrazie.
Niniejsze badanie przedstawia niskokosztową metodę obrazowania służącą do analizy fenotypów roślin, ze szczególnym uwzględnieniem kukurydzy (Zea mays) poddanej różnym warunkom stresu abiotycznego, w tym wysokiej temperaturze i suszy. Badania podkreślają skuteczność tej metody w pozyskiwaniu i analizowaniu obrazów w celu ilościowego określenia krytycznych cech roślin.
Ilościowe, nieniszczące obrazowanie fenotypów stresu abiotycznego u kukurydzy umożliwia skalowalny i powtarzalny pomiar cech, co ma kluczowe znaczenie dla wczesnego odkrywania i badań translacyjnych. Fenotypowanie oparte na obrazach zmniejsza nakład pracy ręcznej i zwiększa przepustowość, wspierając rzetelne testowanie hipotez oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego w procesie walidacji cech upraw. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną zespołów badawczo-rozwojowych priorytetyzujących genotypy odporne na stres i optymalizujących procesy selekcji cech.
Ten schemat obrazowania i analizy integruje procesy od wczesnego etapu odkryć, poprzez identyfikację wiodących kandydatów, aż po przedkliniczną walidację cech w potokach badawczo-rozwojowych w uprawach roślin.